同源四倍体黑皮冬瓜的诱导与倍性鉴定

    万正林, 周艳霞, 武鹏, 邓俭英, 李立志, 龙明华

    万正林, 周艳霞, 武鹏, 等. 同源四倍体黑皮冬瓜的诱导与倍性鉴定[J]. 华南农业大学学报, 2018, 39(3): 31-38. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2018.03.006
    引用本文: 万正林, 周艳霞, 武鹏, 等. 同源四倍体黑皮冬瓜的诱导与倍性鉴定[J]. 华南农业大学学报, 2018, 39(3): 31-38. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2018.03.006
    WAN Zhenglin, ZHOU Yanxia, WU Peng, DENG Jianying, LI Lizhi, LONG Minghua. Induction and ploidy identification of autotetraploid black wax gourd[J]. Journal of South China Agricultural University, 2018, 39(3): 31-38. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2018.03.006
    Citation: WAN Zhenglin, ZHOU Yanxia, WU Peng, DENG Jianying, LI Lizhi, LONG Minghua. Induction and ploidy identification of autotetraploid black wax gourd[J]. Journal of South China Agricultural University, 2018, 39(3): 31-38. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2018.03.006

    同源四倍体黑皮冬瓜的诱导与倍性鉴定

    基金项目: 广西科学研究与技术开发项目(桂科攻1222009-3D);广西科技基地和人才专项(桂科AD17129042);国家现代农业产业技术体系广西大宗蔬菜创新团队专项(nycytxgxcxtd-10-03);广西农业科学院科技发展基金项目(桂农科2012JZ12)
    详细信息
      作者简介:

      万正林(1983—),男,副研究员,博士研究生,E-mail:wanzhenglin0700227@163.com

      通讯作者:

      龙明华(1961—),男,教授,博士,E-mail: longmhua@163.com

    • 中图分类号: S642.3

    Induction and ploidy identification of autotetraploid black wax gourd

    • 摘要:
      目的 

      探索高效的同源四倍体黑皮冬瓜Benincasa hispida诱变方法组合和寻求简便、快速、大通量、准确的倍性鉴定方法。

      方法 

      以二倍体自交系幼苗为材料,利用不同浓度的秋水仙素和Oryzalin在06:00—07:00、12:00—13:00、17:00—18:00 共3个时间段“剥滴”处理幼苗生长点来诱变产生同源四倍体黑皮冬瓜,利用植株形态学、细胞学及流式细胞术鉴定法与根尖染色体计数鉴定法对变异株进行倍性鉴定。

      结果 

      不同浓度的秋水仙素和Oryzalin在不同时间段处理幼苗,均有一定的诱变效果,但秋水仙素的诱变率整体高于Oryzalin处理,且以2 g·L–1的秋水仙素在06:00—07:00处理的诱变率最高,达32.18%;集成植株形态学、细胞学及流式细胞术鉴定的结果与根尖染色体计数法倍性鉴定的结果一致。

      结论 

      2 g·L–1的秋水仙素在06:00—07:00“剥滴”处理为最高效的诱变组合方法;集成植株形态学、细胞学及流式细胞术鉴定方法能简便、快速、大通量、准确地进行倍性鉴定。

      Abstract:
      Objective 

      To explore efficient induction method of autotetraploid Benincasa hispida and seek a simple, convenient, large flux and accurate method of ploidy level identification.

      Method 

      The seedlings of diploid B. hispida inbred lines were used as materials. Autotetraploid B. hispida was induced using different concentrations of colchicine and oryzalin at different times including 06:00 to 07:00, 12:00 to 13:00 and 17:00 to 18:00 to treat the growth points of seedlings. Ploidy levels of mutated plants were determined by using the methods based on plant morphology, cytology, flow cytometric analysis and chromosome numbers of root tips.

      Result 

      There were certain induction effects by using different concentrations of colchicine and oryzalin at different times, but the induction rate of colchicine was overall higher than that of oryzalin, and the highest induction rate was 32.18% using 2 g·L–1 colchicine from 06:00 to 07:00. The ploidy identification result from the combination of methods based on plant morphology, cytology and flow cytometric analysis was the same as the result based on chromosome numbers of root tips.

      Conclusion 

      The optimum method of obtaining autotetraploid was using 2 g·L–1 colchicine from 06:00 to 07:00. The combination of plant morphology, cytology and flow cytometric analysis was a simple, convenient, large flux and accurate way to identify ploidy level.

    • 图  1   苗期变异株生长点丛生形态特征

      Figure  1.   The morphology characteristics of clustering growth points in mutated seedlings

      图  2   苗期叶片形态特征

      Figure  2.   The morphology characteristics of leaves in seedlings

      图  3   抽蔓期相同节位叶片形态

      Figure  3.   The morphology characteristic of leaves at vine growth stage

      图  4   叶片表皮上气孔保卫细胞中的叶绿体

      Figure  4.   Chloroplast in stomata guard cell on leaf epidermis

      图  5   流式细胞仪测定细胞核DNA含量峰值分布图

      细胞核总数为5 000,变异系数<5%

      Figure  5.   Peak distribution of nuclear DNA content by flow cytometry

      图  6   冬瓜根尖细胞染色体

      Figure  6.   Choromosomes in root tip cells of Benincasa hispida

      表  1   秋水仙素和Oryzalin不同处理组合对二倍体冬瓜的诱变效果1)

      Table  1   Induction effect on diploid Benincasa hispida by different treatments of colchicine and Oryzalin

      处理时间 处理 变异率/% 四倍体诱导率/%
      06:00—07:00 对照 0±0e 0±0d
      1 g·L–1秋水仙素 32.56±1.63c 13.95±1.72c
      2 g·L–1秋水仙素 70.11±3.45a 32.18±2.35a
      4 g·L–1秋水仙素 22.99±1.51d 11.49±1.31c
      20 μmol·L–1 Oryzalin 26.74±1.62d 12.79±1.25c
      40 μmol·L–1 Oryzalin 41.38±1.93b 22.99±1.78b
      60 μmol·L–1 Oryzalin 42.22±1.95b 12.22±1.14c
      12:00—13:00 对照 0±0e 0±0f
      1 g·L–1秋水仙素 11.63±0.37d 4.65±1.03c
      2 g·L–1秋水仙素 25.29±0.59a 9.20±0.75a
      4 g·L–1秋水仙素 12.94±0.45d 1.18±0.32e
      20 μmol·L–1 Oryzalin 17.44±1.14c 3.49±0.95d
      40 μmol·L–1 Oryzalin 24.10±0.47b 8.43±0.34b
      60 μmol·L–1 Oryzalin 29.41±1.06a 2.35±0.21de
      17:00—18:00 对照 0±0d 0±0e
      1 g·L–1秋水仙素 17.86±1.64c 9.52±1.23c
      2 g·L–1秋水仙素 32.94±2.07a 17.64±1.57a
      4 g·L–1秋水仙素 19.54±1.79c 6.90±0.89d
      20 μmol·L–1 Oryzalin 25.29±3.42b 9.20±1.17c
      40 μmol·L–1 Oryzalin 35.63±2.15a 14.94±1.05b
      60 μmol·L–1 Oryzalin 37.50±2.37a 5.68±0.75d
       1)相同处理时间、同列数据后凡具有一个相同小写字母者,表示差异不显著(P>0.05,Duncan’s 法)
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      表  2   抽蔓期变异株与正常株气孔保卫细胞大小、密度及叶绿体数比较1)

      Table  2   The comparison on size, density and number of chloroplast of stomata guard cell between normal and mutated plants at vine growth stage

      材料 保卫细胞纵径/μm 保卫细胞横径/μm 保卫细胞密度2) 叶绿体个数
      二倍体 11.28±1.35 7.17±0.58 30.0±2.5 8.1±1.8
      变异株 16.57±1.58* 9.57±0.89* 18.0±2.1* 14.6±2.1*
       1) “*”表示与二倍体差异显著(P<0.01,t 检验);2)保卫细胞密度为单个视野内的保卫细胞个数
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    图(6)  /  表(2)
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    出版历程
    • 收稿日期:  2017-08-28
    • 网络出版日期:  2023-05-17
    • 刊出日期:  2018-05-09

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