张传利,桂雪梅,朱媛,刘雅婷,毛孝强,林良斌. 芝麻菜下胚轴原生质体的分离培养及再生植株[J]. 华南农业大学学报, 2008, 29(2): 63-68. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2008.02.015
    引用本文: 张传利,桂雪梅,朱媛,刘雅婷,毛孝强,林良斌. 芝麻菜下胚轴原生质体的分离培养及再生植株[J]. 华南农业大学学报, 2008, 29(2): 63-68. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2008.02.015
    ZHANG Chuan-li,GUI Xue-mei,ZHU Yuan,LIU Ya-ting,MAO Xiao-qiang,LIN Liang-bin. Plant Regeneration and Hypoeotyl Protoplasts Isolation of Eruca sativa[J]. Journal of South China Agricultural University, 2008, 29(2): 63-68. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2008.02.015
    Citation: ZHANG Chuan-li,GUI Xue-mei,ZHU Yuan,LIU Ya-ting,MAO Xiao-qiang,LIN Liang-bin. Plant Regeneration and Hypoeotyl Protoplasts Isolation of Eruca sativa[J]. Journal of South China Agricultural University, 2008, 29(2): 63-68. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2008.02.015

    芝麻菜下胚轴原生质体的分离培养及再生植株

    Plant Regeneration and Hypoeotyl Protoplasts Isolation of Eruca sativa

    • 摘要: 以芝麻菜 Eruca sativa Mill 无菌苗下胚轴为材料,研究了光照条件、苗龄、酶液组合、酶解时间、酶液中甘露醇浓度及纯化条件对其原生质体分离制备的影响.以附加不同激素组合的改良KM8p培养基进行液体浅层培养.结果表明,无菌苗的下胚轴酶解10 h,用"过滤-离心-漂浮法"进行纯化后,可高效分离出有活力的原生质体;在改良的KMSp培养基的进行原生质体培养,当密度为7×104mL-1时,分裂频率最高,为24.8%.4周后形成大量的细胞团和肉眼可见的小愈伤组织,植板率为5.6%.然后转移到培养基上使其增殖,当愈伤组织长至3~5 mm时,将其转到分化培养基上诱导芽的分化,芽分化率为33.6%.当芽长2~3cm 时,将其切下插入生根培养基上诱导生根,可获得完整植株.

       

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