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猪场批次管理模式设计与实施方案

董林松, 吴珍芳, 蔡更元, 郑恩琴

董林松, 吴珍芳, 蔡更元, 郑恩琴. 猪场批次管理模式设计与实施方案[J]. 华南农业大学学报, 2019, 40(S1): 162-166.
引用本文: 董林松, 吴珍芳, 蔡更元, 郑恩琴. 猪场批次管理模式设计与实施方案[J]. 华南农业大学学报, 2019, 40(S1): 162-166.
DONG Linsong, WU Zhenfang, CAI Gengyuan, ZHENG Enqin. Design and implement strategies for batch management in pig farms[J]. Journal of South China Agricultural University, 2019, 40(S1): 162-166.
Citation: DONG Linsong, WU Zhenfang, CAI Gengyuan, ZHENG Enqin. Design and implement strategies for batch management in pig farms[J]. Journal of South China Agricultural University, 2019, 40(S1): 162-166.

猪场批次管理模式设计与实施方案

基金项目: 

国家重点研发计划 2017YFD0502001

中国博士后科学基金 2019M653093

详细信息
    作者简介:

    董林松(1986-), 男, 博士, E-mail:linsong325@163.com

    通讯作者:

    郑恩琴(1981-), 女, 高级实验师, 硕士, E-mail:eqzheng@scau.edu.cn

Design and implement strategies for batch management in pig farms

  • 摘要:

    猪场批次管理模式除较常用的单周节律之外,也有相邻批次间隔为多周的生产模式。相比单周节律,多周节律模式可降低疾病防控压力,提高生产效率,但同时需要考虑栏舍利用率和母猪返情的问题。本文对猪场批次管理模式的细节进行探讨。

    Abstract:

    Besides the common one-week system, batch management also allows the interval between adjacent batches to be multiple weeks in pig farms. Compared with the one-week system, multiple-week system can reduce pressures of disease control and increase production efficiency. However, some problems such as facility utilization and sow re-service need to be considered. This paper discussed some details for batch management in pig farms.

  • α干扰素(IFN-α)具有广谱抗病毒活性[1],其主要作用是抑制病毒繁殖、抗肿瘤活性、加强NK细胞杀伤病毒感染细胞的能力从而抑制病毒的增殖和扩散、增强机体细胞免疫应答水平等[2].白细胞介素18(IL-18)是20世纪80年代发现的一类细胞因子,由单核巨噬细胞系统的细胞分泌,在细胞的活化、增殖和分化中起调节作用.ChIL-18除了能明显诱导IFN-γ基因表达外,还可诱导诸如IL-2、TNF-α及GM- CSF等多种细胞因子的产生,同时,IL-18也可增强CTL细胞和NK细胞的活性,上调细胞毒活性作用,促进T细胞增殖,在细胞免疫反应中发挥重要作用[3].近年来有关IL-18的研究非常活跃,其应用领域包括抗肿瘤、抗感染及作为免疫调节剂治疗一些免疫性疾病,具有重要的临床应用价值.

    本研究采用融合PCR(Fusion PCR)方法,将鸡ChIFN-αChIL-18基因构建成ChIFN-α-ChIL-18融合基因并克隆入pET-28a原核表达载体中进行表达,该蛋白具有很好的免疫原性和很强的抗水泡性口炎病毒(VSV)和新城疫病毒(NDV)活性.这项研究可有效地降低研制成本,易于生产,且具有叠加的ChIFN-α和ChIL-18抗病毒功能,为生产高活性及高效基因工程重组复合抗病毒制剂奠定了基础.

    大肠埃希菌Escherichia coli BL21、DH5α菌株由华南农业大学兽医学院动物传染病实验室保存;VSV由广东省农业科学院惠赠;NDV及质粒载体pET-28a均由华南农业大学兽医学院动物传染病实验室保存.

    PCR扩增用试剂、内切酶、T4连接酶、dNTP均为大连(宝)生物(TaKaRa)工程有限公司产品;DNA回收试剂盒、琼脂糖凝胶DNA纯化试剂盒等试剂均为Omega公司产品;TRIzol试剂为Invitrogen公司产品;淋巴细胞分离液为杭州灏洋生物工程公司产品;DM EM培养基和小牛血清均为Hyclone公司产品.

    PTC-200型PCR仪为美国MJ ReSearch公司产品;凝胶成像分析系统为英国Gyndene公司产品;Galaxy 300 L CO2培养箱为英国Rsbiotech公司产品;分光光度计(ND-1000)为NanoDrop公司产品;恒温CO2培养箱为英国Rsbiotech公司产品;超声波裂解仪为美国Scientz公司产品.

    参照GenBank登录的ChIFN-α基因序列(DQ226092)、ChIL-18基因序列(AJ277865)及pET-28a (+)多克隆位点,用Oligo 7 (Molecular Biology Insights Inc.,Cascade,CO)辅助设计2对具有互补末端的引物,分别为P1/P2、P3/P4引物对,引物均由英潍捷基(广州)贸易有限公司(Life technologies)合成.本试验所用引物见表 1.

    表  1  试验所用引物1)
    Table  1.  PCR primers used in this study
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    参照李敏等[4]报道的方法进行ChIFN-α-ChIL-18融合基因的构建.首先采用P1/P2引物对,以rpMD19-T/ChIFN-α质粒为模板对ChIFN-α基因片段进行扩增后,采用P3/P4引物对,以rpMD19-T/ChIL-18质粒为模板扩增ChIL-18基因片段.使用低熔点琼脂糖凝胶回收试剂盒分别回收ChIFN-αChIL-18基因片段,将上述2个回收产物混合,取0.5 μg混合物用于ChIFN-αChIFN-γ基因的融合反应.采用P2/P3引物对,依据上述融合反应片段为模板进行ChIFN-αChIL-18融合片段的PCR扩增.回收约996 bp的PCR产物.

    将“1.2.2”回收的996 bp左右的PCR产物定向克隆至pMD19-T载体,后筛选阳性克隆质粒(pMD19-T/ ChIFN-α-ChIL-18)送英潍捷基(上海)贸易有限公司测序,阳性克隆质粒经EcoRⅠ和Hind Ⅲ双酶切后连接到经相同酶双切后的表达载体pET-28a(+),将构建好的重组pET-28a/ ChIFN-α-ChIL-18表达质粒分别转入宿主菌E.coli BL21中,筛选阳性重组菌送英潍捷基(广州)贸易有限公司(Life technologies)测序.选取核苷酸序列和插入方向都正确的重组菌、pET-28a/ChIFN-α-ChIL-18空载体菌对照、BL21空菌对照进行IPTG诱导表达,采用SDS-PAGE分析表达蛋白.

    将测序正确的pET-28a/ChIFN-α-ChIL-18于10 mL含Kna+的LB液体培养基中,37 ℃、150 r/min扩大培养12 h.取培养物5 mL接种于500 mL LB液体培养基中,37 ℃、150 r/min振荡培养至D600 nm达到0.6~0.8时,加入IPTG至终浓度为0.5 mmol/L,16 ℃诱导表达10 h,同时,设立37 ℃诱导表达(IPTG至终浓度为1.0 mmol/L)的对照组、未诱导的菌液和pET-28a/BL21空载体菌作为阴性对照.制备12%分离胶和5%浓缩胶,利用SDS-PAGE电泳检查目的蛋白表达情况.将凝胶上的蛋白转印至硝酸纤维素膜(NC),将His标签抗体(1: 2 000)作为一抗,然后用辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠(1: 10 000)作二抗,进行Western-blot反应.

    通过试验证明pET-28a/ ChIFN-α-ChIL-18原核表达载体表达的融合蛋白于上清液中以可溶性形式存在,按GE公司Ni-NTA纯化系统说明书的Native purify-cation方法纯化融合蛋白.

    用紫外分光光度计分别测定D260 nmD280 nm,根据下式计算蛋白质质量浓度[ρ(蛋白质)][5]ρ(蛋白质)=(1.45×D280 nm-0.74×D260 nm).

    采用微量细胞病变抑制法在鸡胚成纤维(CEF)细胞上测定rChIFN-α-ChIL-18蛋白的抗VSV及NDV活性.同时设rChIFN-α、rChIL-18蛋白对照.CEF细胞在96孔细胞培养板培养至单层后,将纯化的ChIFN-α-ChIL-18、rChIFN-α、rChIL-18用维持液(DMEM+体积分数为2%的FCS)进行4倍倍比稀释,每个稀释度重复8孔,于37 ℃,体积分数为5%CO2培养箱中培养12 h后,弃上清液,用PBS洗涤后,分别加入100 μL 100TCID50 VSV和100 μL 100TCID50NDV的病毒稀释液,同时设置只用病毒攻毒对照组和正常细胞对照组,继续培养48~72 h后观察细胞病变情况,待阳性对照细胞出现明显细胞病变时判定结果,能抑制50%细胞病变的细胞因子的最高稀释度的倒数作为其抗VSV、NDV活性单位.采用Reed-Muench法[6]计算rChIFN-α-ChIL-18蛋白抗VSV及NDV活性,同时与rChIFN-α、rChIL-18蛋白进行比较.

    以重组质粒pMD19-T/ChIFN-α和pMD19-T/ChIL-18为模板PCR扩增IFN-α和IL-18片段,得到ChIFN-αChIL-18 PCR扩增产物,大小分别为489和510 bp;采用P2/P3引物对扩增到了大小为996 bp左右的ChIFN-α-ChIL-18融合基因,这些扩增产物大小均与预期的相一致(图 1).说明采用融合PCR方法成功构建了ChIFN-α-ChIL-18融合基因.

    图  1  融合PCR扩增ChIFN-α-ChIL-18融合基因
    M:DNA marker DL5000;1:ChIFN-α;2:ChIL-18;3:ChIFN-α-ChIL-18融合基因.
    Figure  1.  Fusion PCR amplification of ChIFN-α-ChIL-18 fusion gene

    ChIFN-α-ChIL-18融合基因成功克隆入pMD19-T载体,测序结果表明,融合基因序列全长为996 bp,对比原模板质粒中的ChIFN-αChIL-18核苷酸序列没有发生变异.对阳性rpET-28a/ChIFN-α-ChIL-18质粒测序表明,插入pET-28a载体中的ChIFN-α-ChIL-18融合基因长度为996 bp,与pMD19-T/ChIFN-α-ChIL-18克隆质粒中的相应基因序列完全一致.以上结果表明成功构建了pET-28a/ChIFN-α-ChIL-18表达质粒.

    重组菌BL21(pET-28a/ ChIFN-α-ChIL-18)经IPTG诱导后,经SDS-PAGE和Western-blot分析,结果表明,表达的重组蛋白相对分子质量为38 000左右,与预期大小相一致;且该融合蛋白具有可溶性,由SDS-PAGE电泳结果可知,16 ℃比37 ℃更利于蛋白在上清液中的表达.对照BL21空菌和含pET-28a空载体的BL21菌在相应位置均无条带(图 2).

    图  2  pET28a-ChIFN-α-ChIL18/BL21 SDS-PAGE和Western-blot分析
    M:相对分子质量低的蛋白Marker;1:pET28a/BL21空载体菌表达对照;2:BL21诱导表达对照;3:pET28a-ChIFN-α-ChIL18/BL21诱导后包涵体沉淀;4:37 ℃ pET28a-ChIFN-α-ChIL18/BL21诱导后上清液;5:16 ℃ pET28a-ChIFN-α-ChIL18/BL21诱导后上清液;6:Western-blot分析.
    Figure  2.  SDS-PAGE and Western-blot analyses of pET28a-ChIFN-α-ChIL18

    将诱导后的菌体超声裂解,纯化后经SDS-PAGE电泳检测,结果显示目的蛋白由Native-100的咪唑洗涤液洗脱下来,用凝胶扫描分析,蛋白纯度高达90%以上(图 3).经紫外分光光度计测定融合蛋白ChIFNα-IL18质量浓度为0.350 mg/mL.

    图  3  rChIFN-α-ChIL18蛋白纯化结果
    M:相对分子质量低的蛋白Marker;1:纯化后的rChIFN-α-ChIL-18蛋白.
    Figure  3.  SDS-PAGE analyses of the purified protein rChIFN-α-ChIL18

    将抑制50%细胞病变的干扰素稀释度的倒数作为干扰素抗VSV活性单位.计算得rChIFN-α-ChIL-18、rChIFN-α以及rChIL-18的活性分别约为4.67×106、2.58×105、5.9×103IU/mg.试验结果表明,分别经rChIFN-α-ChIL-18、rChIFN-α及rChIL-18蛋白作用后感染VSV的正常CEF细胞,正常的CEF细胞均无细胞病变,而病毒对照组感染VSV的CEF细胞基本死亡(图 4).说明rChIFNα-IL18和rChIFN-α、rChIL-18均有明显的抗病毒活性,且融合蛋白的抗病毒效果要高于单一蛋白.

    图  4  rChIFN-α-ChIL-18蛋白对VSV的抑制作用
    A:未感染VSV的正常CEF细胞;B:经rChIFN-α-ChIL-18处理后感染VSV的CEF细胞;C:经rChIFN-α处理后感染VSV的CEF细胞;D:经rChIL-18处理后感染VSV的CEF细胞;E:病毒对照组CEF细胞.
    Figure  4.  rChIFN-α-ChIL-18 antiviral activities against VSV

    将可以抑制50%细胞病变的干扰素的稀释浓度的倒数作为干扰素抗NDV活性单位.计算得rChIFN-α-ChIL-18、rChIFN-α及rChIL-18抗NDV的活性分别约为3.17×106、2.0×103、1.19×103 IU/mg.试验结果表明,分别经rChIFN-α-ChIL-18、rChIFN-α及rChIL-18蛋白作用后感染NDV的正常CEF细胞,正常的CEF细胞均无细胞病变,而病毒对照组感染VSV的CEF细胞基本死亡(图 5).说明rChIFNα-IL18和rChIFN-α、rChIL-18均有明显的抗病毒活性,且融合蛋白的抗病毒效果要高于单一蛋白.

    图  5  rChIFN-α-ChIL-18蛋白对NDV的抑制作用
    A:未感染NDV的正常CEF细胞;B:经rChIFN-α-ChIL-18处理后感染NDV的CEF细胞;C:经rChIFN-α处理后感染NDV的CEF细胞;D:经rChIL-18处理后感染NDV的CEF细胞;E:病毒对照组CEF细胞.
    Figure  5.  rChIFN-α-ChIL-18 antiviral activities against NDV

    目前禽类病毒性传染病依然严重威胁着养禽业,但是仍然没有有效的药物可以预防,人们的防控依然主要依靠疫苗免疫.由于疫苗的单一血清型而导致无法有效地对快速变异的病毒进行防控,而大量药物的使用,引起一系列的药物残留和抗药性的问题.因此研发广谱、高效、安全、无毒副作用的抗病毒药物对促进养鸡业健康发展具有重要意义.干扰素因具有广谱的抗病毒活性,一方面可以促进机体加强对病毒的抵抗,另一方面也能促进疫苗的免疫效果.因此重组干扰素的研究和应用将成为病毒性疾病防治的重要方向.

    rIFN-α具有广谱的抗病毒活性,基因工程rIFN-α作为抗病毒制剂对多种病毒性疾病的疗效已明确[7].rChIFN-α蛋白对NDV[8]、禽流感H9N2型病毒及马立克氏病毒[9-11]均具有抑制作用,rChIL-18蛋白可调节机体免疫功能,明显诱导IFN-γ基因表达,增强疫苗的免疫效果.本研究通过融合PCR方法成功将ChIFN-αChIL-18基因融合成ChIFN-α-ChIL-18融合基因并进行了融合表达,经对比rChIFN-α-ChIL-18融合蛋白进行生物学活性测定结果表明,rChIFN-α-ChIL-18蛋白在CEF细胞上具有明显优于单一rChIFN-α和rChIL-18的生物学活性,说明rChIFN-α-ChIL-18具有单一rChIFN-α蛋白和rChIL-18蛋白的双重生物学活性,调动了机体强大的免疫功能,发挥抗病毒效果,这与闫若潜等[7]的相关报道一致.

    本研究采用的融合PCR方法,与传统利用酶切位点将各个片段逐个连接到载体上的方法相比,此技术在不需要内切酶消化和连接酶处理的条件下实现DNA片段的体外连接,大大缩短了反应时间,降低了操作难度.

    重组蛋白绝大部分以可溶的形式存在于上清液中.正常的诱导表达中,蛋白主要以包涵体的形式存在,由于包涵体纯化难度高、纯化产物不易保存,本试验经过多次探索,发现在16 ℃低温诱导条件下,上清液中可检测到可溶性蛋白表达.

    本研究证明,rChIFN-α-ChIL-18蛋白对NDV和VSV具有有效的抑制效应,本试验为临床上新城疫的防治提供了新的思路和方法,对病毒性疫病的防控具有重要意义[10].同时为下一步将rChIFN-α-ChIL-18蛋白用于鸡体内抗病毒感染研究奠定了基础.

  • 表  1   批次管理模式及相关参数指标1)

    批次管理模式哺乳期/d母猪繁殖周期/d相邻批次间隔时间/d推荐产房数量/栋全场母猪批次数量
    单周节律21或28140或14774, 5或620或21
    10 d节律2814010414
    双周节律2114014210
    16 d节律251441629
    18 d节律251441828
    三周节律281472127
    24 d节律251442426
    四周节律211402815
    五周节律211403514
    36 d节律251443614
    七周节律281474913
    十周节律211407012
    1)批次间隔时间低于2周都能找到相应的批次管理模式
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    表  2   单周节律转变为五周节律策略1)

    单周批次1周2周3周4周5周6周
    1断奶此时发情但
    不配种
    在此期间开始喂药第5批母猪断奶时停止喂药发情配种
    2断奶发情但不配种
    也不喂药
    发情配种
    3断奶前3 d
    开始喂药
    第5批母猪断奶时停止喂药发情配种
    4断奶前3 d开始喂药第5批母猪断奶时停止喂药发情配种
    5断奶发情配种
    后备猪2)为避免后备猪提前发情,在推断其发情时间前5 d左右开始喂药第5批母猪断奶时停止喂药发情配种
    1)所饲喂药物为与同期发情相关的激素类药物; 2)后备猪要确保曾经有过发情记录后再饲喂药物,否则可能没有效果
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    表  3   四周节律模式中母猪返情的处理策略1)

    第1周第4周第5周第6周第8周第9周
    第1批次
    配种
    第1批次配种的部分母猪返情但此时不配种第2批次
    配种
    对第1批次返情母猪喂药,避免其在第7周发情在第3批次母猪断奶时,第1批次返情母猪停止喂药第3批次和第1批次返情母猪同时发情,并配种
    1)第8周时,第2批次配种的部分母猪发生返情,处理方法与第1批次相同
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    表  4   五周节律模式中母猪返情的处理策略1)

    方案第1周第4周第6周第7周第8周第10周第11周
    方案1第1批次配种第1批次配种的部分母猪返情但此时不配种第2批次配种第1批次返情母猪再次发情,但依然不配种对第1批次返情母猪喂药,避免其在第10周发情在第3批次母猪断奶时第1批次返情母猪停止喂药第3批次和第1批次返情母猪同时发情,并配种
    方案2第1批次配种第1批次配种的部分母猪返情但此时不配种第2批次配种第1批次母猪再次发情时配种
    1)第6周和第7周配种的母猪都归为第2个大批次
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    表  5   三周节律模式中母猪在分娩舍的运作方式

    时间产房1产房2
    第0天第1批次母猪进入产房1)
    第7天第1批次母猪开始分娩
    第14天第1批母猪哺乳期上一批仔猪断奶,产床开始清洗消毒
    第21天第2批次母猪进入产房
    第28天第2批次母猪开始分娩
    第35天第1批次仔猪断奶,产床开始清洗消毒第2批母猪哺乳期
    第42天第3批次母猪进入产房
    第49天第3批次母猪开始分娩
    第56天第3批母猪哺乳期第2批次仔猪断奶,产床开始清洗消毒
    第63天第4批次母猪进入产房
    第70天第4批次母猪开始分娩
    $ \vdots $$ \vdots $$ \vdots $
    第140天第7批母猪哺乳期第6批次仔猪断奶,产床开始清洗消毒
    第147天第1批次母猪进入产房1)
    第154天第1批次母猪开始分娩
    1)属于同一批次的母猪
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  • [1] 高勤学, 杨文科, 李虎生.批次化生产导入及效果评价[J].猪业科学, 2017, 34(1):48-50. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/dwkxydwyx201701023
    [2] 刘学陶, 孙群超, 龙迪银.批次生产之猪场应用[J].养殖与饲料, 2015(1):23-25. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/yzysl201501008
    [3]

    FALCONER D S, MACKAY T F C. Introduction to quantitative genetics[M]. Essex:Longman Group, 1996:100-108.

表(5)
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出版历程
  • 收稿日期:  2019-08-27
  • 网络出版日期:  2023-05-17
  • 刊出日期:  2019-12-09

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