OsCdc48与Pik1-H4的互作机制及对稻瘟病抗性的调控

    黄其伟, 张丽娜, 王加峰, 陈淳

    黄其伟, 张丽娜, 王加峰, 等. OsCdc48与Pik1-H4的互作机制及对稻瘟病抗性的调控[J]. 华南农业大学学报, 2025, 46(2): 164-174. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202402018
    引用本文: 黄其伟, 张丽娜, 王加峰, 等. OsCdc48与Pik1-H4的互作机制及对稻瘟病抗性的调控[J]. 华南农业大学学报, 2025, 46(2): 164-174. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202402018
    HUANG Qiwei, ZHANG Lina, WANG Jiafeng, et al. Interaction mechanism between OsCdc48 and Pik1-H4, and its regulation on rice blast disease resistance[J]. Journal of South China Agricultural University, 2025, 46(2): 164-174. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202402018
    Citation: HUANG Qiwei, ZHANG Lina, WANG Jiafeng, et al. Interaction mechanism between OsCdc48 and Pik1-H4, and its regulation on rice blast disease resistance[J]. Journal of South China Agricultural University, 2025, 46(2): 164-174. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202402018

    OsCdc48与Pik1-H4的互作机制及对稻瘟病抗性的调控

    基金项目: 广东省科技计划(2023B0202010003);广东省自然科学基金(2023A1515012101)
    详细信息
      作者简介:

      黄其伟,硕士研究生,主要从事水稻抗病遗传育种研究,E-mail: huangqiweihqw@stu.scau.edu.cn

      通讯作者:

      王加峰,副研究员,博士,主要从事水稻抗病遗传育种研究,E-mail: jfwang@scau.edu.cn

      陈 淳,高级农艺师,硕士,主要从事水稻遗传育种与推广研究,E-mail: chchun@scau.edu.cn

    • 中图分类号: Q78;S435.111.1

    Interaction mechanism between OsCdc48 and Pik1-H4, and its regulation on rice blast disease resistance

    • 摘要:
      目的 

      探究Pik1-H4与细胞周期蛋白OsCdc48的互作机制,明确其在稻瘟病抗性中的作用。

      方法 

      首先,分别利用酵母双杂交试验和荧光素酶互补试验验证Pik1-H4与OsCdc48的相互作用;然后,通过RT-qPCR分析OsCdc48在稻瘟病菌侵染后的表达情况及组织表达特异性;其次,分析OsCdc48的序列保守性、蛋白结构域、系统进化关系、蛋白质三维结构预测及其亚细胞定位;最后,利用CRISPR/Cas9创制OsCdc48突变体,并对其进行稻瘟病抗性鉴定和病程相关基因表达分析。

      结果 

      证实了Pik1-H4与OsCdc48的互作,且OsCdc48受稻瘟病菌侵染诱导表达。OsCdc48在各组织中均有表达,其编码蛋白定位于细胞核与细胞质。OsCdc48在不同物种中序列保守,与玉米和高粱的亲缘关系最近,预测会形成同源六聚体。OsCdc48功能缺失突变体ko-oscdc48病程相关基因上调表达,对稻瘟病抗性增强。

      结论 

      本研究为深入揭示OsCdc48与NLR蛋白Pik1-H4调控稻瘟病抗性的机制及水稻抗病育种提供了理论基础。

      Abstract:
      Objective 

      To investigate the interaction mechanism between Pik1-H4 and cell division cycle protein OsCdc48, clarify its role in rice blast disease resistance.

      Method 

      Firstly, the interactions between Pik1-H4 and OsCdc48 were verified using yeast two-hybrid and luciferase complementation assays. Then, the expression patterns of OsCdc48 after infection of Magnaporthe oryzae and its tissue-specific expression were analyzed by RT-qPCR. Next, the determination of OsCdc48’s sequence conservation, protein domains, phylogenetic relationships, protein 3D structure prediction and subcellular localization were performed. Finally, OsCdc48 mutant was created using CRISPR/Cas9 technology, the resistance identification of transgenic mutant to rice blast disease and expression analysis of pathogenesis-related genes were also conducted.

      Result 

      The interactions between Pik1-H4 and OsCdc48 were confirmed, and OsCdc48 was induced by rice blast fungus infection. OsCdc48 was expressed in all tissues and was localized to the nucleus and cytoplasm. The sequence of OsCdc48 was conserved across different species, with the closest phylogenetic relationship to maize and sorghum, and it might form homologous hexamers. The OsCdc48 loss-of-function mutant ko-oscdc48 up-regulated the expression of disease-related genes and enhanced the resistance to rice blast disease.

      Conclusion 

      This study lays a theoretical basis for further elucidating the mechanism of OsCdc48 and NLR protein Pik1-H4 regulating blast disease resistance and rice disease-resistant breeding.

    • 白叶枯是水稻生产中的三大传统细菌性病害(稻瘟病、白叶枯、纹枯病)之一,流行范围广,其发生流行会造成水稻10%~30%的减产,严重者减产90%以上[1-3]。近年来,随着无人机技术在农业生产领域的广泛应用,利用无人机搭载成像或非成像传感器组成的无人机遥感系统具有成本低、精准快速、非接触式等优点,在作物病虫害监测与识别方面显示出巨大潜力[4-6]。利用高分辨率RGB无人机获取可见光区域的真彩色图像,采用传统机器学习或深度学习方法提取图像的颜色、梯度、纹理、形状等视觉特征,构建模型可对植物疾病严重程度进行预测。Dehkordi等[7]研究发现根据绿、红、蓝光谱波段的不同组合可以鉴定小麦条锈病和叶锈病的感染等级;王震等[8]利用多旋翼无人机采集可见光图像,对水稻病害白穗图像提取Haar-like 特征,使用 Adaboosts 算法训练识别白穗,准确率达 93.62%;Wei等[9]基于无人机低空遥感图像,采用神经网络方法和机器学习方法监测水稻纹枯病的严重程度,效果较好; Dang等[10]利用无人机搭载1200万像素的RGB相机获取萝卜田图像,通过提取分割出的ROI图像的Lbp特征和Lab颜色特征构建Softmaxt分类器,获得令人满意的分类结果。随着光谱技术的发展,人们将多光谱技术应用于农作物病虫害识别,多光谱能反映除可见光以外的其他光谱段,应用在作物病虫害识别中准确率较高[11-14]。无人机多光谱遥感系统多使用约120万像素的多光谱相机,相比千万级像素的RGB成像系统,分辨率较低[15-16],许多研究人员采用高分辨率RGB图像辅助多光谱图像的方法识别作物疾病[17-19]。通过高分辨率图像与无人机图像结合,可以弥补分辨率不足的问题,实现作物病虫害更准确的监测效果。

      然而,不同飞行高度对无人机遥感系统影像的处理及识别影响较大。飞行高度越低,图像分辨率越高,获得的稻田图像越多,对图像进行初始化、辐射校正、特征点匹配等处理量也越大,虽然精度较高但处理速度较慢,效率低下。飞行高度越高,图像分辨率越低,获得的待处理稻田图像越少,处理速度较快,但是大量重要信息捕获不到,识别精度降低[20-22]。以上研究基本都没有说明无人机飞行高度的选择依据,也没有提及无人机不同飞行高度对监测结果的影响。

      综上,为了实现根据水稻白叶枯感染等级从而进行农药精准喷施,及确定无人机的最佳飞行高度。本文通过装备高分辨率RGB的无人机获取受白叶枯胁迫的水稻冠层高分辨率图像,通过提取颜色和纹理特征构建白叶枯感染等级预测模型。基于高分辨率RGB遥感图像,进一步构建不同地面分辨率(Ground sampling distances,GSD)的白叶枯回归模型,以期为无人机可见光及多光谱遥感监测田间水稻白叶枯提供理论依据。

      试验点位于广东省广州市增城区朱村街的试验田(23°17′33″N,113°49′45″W),南亚热带海洋性季风气候,气候温和,日照充足,雨量充沛,年均日照量1906 h,年降雨量1800 mm。以自然条件下感染了白叶枯的水稻为研究对象,水稻品种为‘丝苗’,于4月初移栽到试验田,8月上旬收获。

      本文使用的无人机低空遥感系统由 DJI Mavic 3T(DJI Company, 深圳)搭载可见光传感器组成。试验于2023年6月展开,无人机飞行高度为5 m,速度为1.6 m/s,于当地时间10:00—16:00,针对水稻试验田的白叶枯感染区进行成像操作。其中,可见光传感器尺寸为1/2 英寸,分辨率为4000×3000,焦距为29.9 mm,以JPG 24 bit格式记录,无损压缩方式存储。

      双边滤波可以在去除噪音的同时保留图像的细节和边缘信息。对获取的无人机图像进行裁剪、双边滤波等预处理后,获得覆盖面积约为50 cm×50 cm的子图像,并通过重采样将图片像素尺寸缩放到500×500的图像,总共获得92张GSD为0.1 cm的图像。RGB色彩空间中3个分量相关性较高,不利于白叶枯信息的提取,多通过转换成HSV空间或者Lab颜色空间提取感染信息。色彩空间变换可以改善图像信息,更有利于发现作物生长发育的异常,尤其在作物病虫害的识别与监测方面[23]。本文将RGB图像转换为Lab颜色空间,采用自适应阈值法对L分量进行二值化,将获得的二值图像分为感染和未感染区域。参考文献[18]中对棉花叶片枯萎病的感染级别划分方法,并综合考虑水稻叶片及白叶枯疾病的特点,对水稻白叶枯感染等级进行划分:健康(感染率为0)、轻微感染(0<感染率≤5%)、中度感染(5<感染率≤10%)、严重感染(感染率>10%)。最后提取图像颜色和纹理特征构建回归模型,并对模型进行评估。

      本文选择2类图像特征监测水稻白叶枯。首先,将RGB图像转换成HSV颜色空间,提取水稻白叶枯图像的一阶矩阵和二阶矩阵作为颜色特征,计算公式见式(1)~(6)。

      $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}}=\dfrac{1}{N}{\displaystyle\sum} _{P=1}^{N}{{\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}}\text{,} $$ (1)
      $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}}=\dfrac{1}{N}\displaystyle\sum\nolimits _{P=1}^{N}{{\boldsymbol{S}}}_{{\boldsymbol{P}}} \text{,} $$ (2)
      $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{V}}}=\dfrac{1}{N}{\displaystyle\sum} _{P=1}^{N}{{\boldsymbol{V}}}_{{\boldsymbol{P}}} \text{,} $$ (3)
      $$ {{{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{H}}}}=\Bigg[\dfrac{1}{N}{\displaystyle\sum} _{P-1}^{N}{({\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}}-{{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}}{)}^{2}\Bigg]^{1/2} \text{,} $$ (4)
      $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{S}}}=\Bigg[\dfrac{1}{N}{\displaystyle\sum} _{P-1}^{N}{({\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}}-{{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}}{)}^{2}\Bigg]^{1/2} \text{,} $$ (5)
      $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{V}}}=\Bigg[\dfrac{1}{N}{\displaystyle\sum} _{P-1}^{N}{({\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}}-{{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}}{)}^{2}\Bigg]^{1/2} \text{,} $$ (6)

      式中,$ {{\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}} $$ {{\boldsymbol{S}}}_{{\boldsymbol{P}}} $$ {{\boldsymbol{V}}}_{{\boldsymbol{P}}} $分别表示图像H、S、V颜色分量,$ {\boldsymbol{\mu}} $表示HSV各分量的一阶矩阵,$ {\boldsymbol{\delta}} $表示HSV各分量的二阶矩阵。提取到的水稻白叶枯图像H、S、V一阶矩阵、二阶矩阵结果如表1所示。

      表  1  水稻白叶枯HSV颜色特征参数1)
      Table  1.  HSV color features parameters of rice bacterial blight
      叶片感染等级
      Infection level of rice leaves
      $ {{\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}} $ $ {{\boldsymbol{S}}}_{{\boldsymbol{P}}} $ $ {{\boldsymbol{V}}}_{{\boldsymbol{P}}} $
      $ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}} $ $ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{H}}} $ $ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}} $ $ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{S}}} $ $ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{V}}} $ $ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{V}}} $
      健康 Healthy 44.33 1110.57 129.16 8109.449 95.41 7645.89
      轻微 Slight 41.73 1241.46 139.03 9516.93 83.03 7882.55
      中度 Moderate 40.59 1164.32 143.80 9241.22 88.44 8289.44
      严重 Serious 39.62 1166.58 148.84 9263.31 89.82 8817.79
       1) $ {{\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}} $、$ {{\boldsymbol{S}}}_{{\boldsymbol{P}}} $、$ {{\boldsymbol{V}}}_{{\boldsymbol{P}}} $分别表示图像H、S、V颜色分量;$ {\boldsymbol{\mu}} $表示HSV各分量的一阶矩阵;$ {\boldsymbol{\delta}} $表示HSV各分量的二阶矩阵。
       1) $ {{\boldsymbol{H}}}_{{\boldsymbol{P}}} $, $ {{\boldsymbol{S}}}_{{\boldsymbol{P}}} $ and $ {{\boldsymbol{V}}}_{{\boldsymbol{P}}} $ represent the color components H, S, and V of the image, respectively; μ represents the first-order moment of each HSV component, and δ represents the second-order moment of each HSV component.
      下载: 导出CSV 
      | 显示表格

      其次,根据灰度共生矩阵(Gray-level co-occurrence matrix, GLCM),从图像R、G、B 3个分量中分别提取对比度(Contrast,CON)、自相关(Correlation,COR)、能量 (Energy,EN) 以及同质性(Homogeneity,HO)4个纹理特征,总共12个特征。CON 能反映出图像的灰度分布均匀程度和纹理粗细度,COR 能反映出矩阵元素在行或列方向上的相似程度,EN为矩阵中所有元素的平方和,HO表示矩阵元素相对于对角线分布的紧密度。GLCM 的参数采用3个不同距离1、2、3和4个不同角度0、$ {\text{π}}/4 $$ {\text{π}}/2 $、3$ {\text{π}}/4 $,最后总共获得144个纹理特征。提取的144个纹理特征为CON_R(ij)、CON_G(ij)、CON_B(ij)、COR_R(ij)、COR_G(ij)、COR_B(ij)、EN_R(ij)、EN_G(ij)、EN_B(ij)、HO_R(ij)、HO_G(ij)、HO_B(ij)。其中,CON、COR、EN、HO分别后缀R、G、B,表示不同颜色通道的不同特征;i为1~3;j表示1~4;ij表示不同距离和角度的组合。

      根据“1.3.2”可获得6个颜色特征和144个纹理特征。通过降维去除纹理特征中的冗余信息,提取出对白叶枯较敏感的纹理特征,减少数据的存储和处理量,进而降低模型的复杂度,提升模型性能。降维方法采用随机森林(Random forest,RF)和自动编码器(Autoencoder,AE)2种方法,最终提取5个纹理特征。RF是一种基于决策树的集成学习方法,从多个决策树模型中选取一个最佳模型进行预测。RF可以评估每个特征对模型的重要性,在数据维度较高时,可以通过特征数据对模型的重要性筛选出较为重要的特征。AE是一种无监督学习的神经网络模型,用于实现数据的降维和特征提取。AE主要包括编码器和解码器2个部分。编码器通过多个隐藏层和激活函数来实现非线性变换,将输入特征数据映射到潜在空间非线性变换,将输入特征数据映射到潜在空间的低维表示。解码器则将低维表示映射回原始输入的重构,其结构与编码器相似[10, 24-25]。本文根据RF获得纹理特征之间的相互作用,确定每个特征对模型的重要程度,筛选出较重要的特征。进一步通过AE将这些特征映射到低维空间中,以减少特征数量和计算成本。通过RF选出34个重要性大于0.01的纹理特征,然后通过AE降维后,获得5个对白叶枯较为敏感的纹理特征作为模型输入。

      本文利用颜色和纹理特征对水稻白叶枯进行监测,探究了不同特征对白叶枯监测的重要性,并建立白叶枯感染不同等级评估模型。将上节中的特征作为自变量(X),水稻白叶枯的感染率作为因变量($ \gamma $),构建多元回归模型,公式如下所示:

      $$ \gamma ={\beta }_{0}+{\beta }_{1}{X}_{1}+{\beta }_{2}{X}_{2}+{\beta }_{3}{X}_{3}+...+{\beta }_{n}{X}_{n} \text{,} $$ (7)

      式中,$ {\beta }_{0} $为截距,$ {\beta }_{i} $$ {X}_{i} $(i=0,1,2,...,n)分别是斜率系数和自变量。为了建立稳定的白叶枯评估模型,以决定系数(R2)、均方根误差(Root mean square error,RMSE)和相对均方根误差(Relative RMSE,RRMSE)为参数对模型精度进行评估,相关计算公式如下所示。

      $$ {R}^{2}=1-\dfrac{{\displaystyle\sum} _{i=1}^{n}{({y}_{i}-{y}_{i}')}^{2}}{{\displaystyle\sum} _{i=1}^{n}{({y}_{i}-\bar {{y}_{i}})}^{2}} \text{,} $$ (8)
      $$ {\mathrm{RMSE}}=\sqrt{\dfrac{1}{n}{\displaystyle\sum} _{i=1}^{n}{({y}_{i}-{y}_{i}')}^{2}} \text{,} $$ (9)
      $$ {\mathrm{RRMSE}}=\dfrac{{\mathrm{RMSE}}}{\bar {{y}_{i}}}\times 100{\text{%}} \text{,} $$ (10)

      式中,$ {y}_{i} $$ {y}_{i}' $$ \bar {{y}_{i}} $分别表示真实的、预测的以及平均测量的白叶枯感染等级,n是样本数。

      自适应阈值法是数字图像处理中的一种二值化方法,可以自动找到最佳的阈值,从而使得将原始图像转换成二值图像后,将目标区域的像素点尽可能地保留,而背景区域的像素点尽可能地过滤掉。本文将图像转换为Lab色彩空间,采用自适应阈值法获得叶片与病害的mask图像,通过与原始图像相乘获得去背景图像。对去背景图片进行分割获得感染白叶枯叶片的二值图像,将像素分为感染像素(白色区域)和未感染像素(黑色区域),流程图如图1所示。将白叶枯感染像素占总像素的比例作为感染率,将病害严重程度分为健康、轻微、中度、严重共4个等级,如图2所示。

      图  1  白叶枯分割操作流程图
      Figure  1.  Rice bacterial blight Segmentation Operation Flowchart
      图  2  水稻白叶枯4个感染等级样本
      Figure  2.  Samples of four infection levels in rice bacterial blight

      统计所有图像中白叶枯感染率,将92张图像根据感染等级分为4组,其中,健康组包含12张图片,轻度组包含27张图片,中度组包含28张图片,重度组包含25张图片。将其按照2∶1的数量比例划分成训练集和验证集,分别包含图像60、32张图片。

      数据集划分成训练集和测试集,包含健康、轻度、中度、重度组,其样本数分别为8、18、18、16,总共60个样本。采用皮尔逊相关性分析法获得感染率与颜色特征的相关系数和显著性。测得多重相关系数约为 0.97,表示自变量与因变量之间存在较强的线性相关性;R2为 0.93,说明模型可以解释因变量约 93% 的变异性,回归方程对数据的拟合程度较高。

      通过皮尔逊相关性分析得到白叶枯的感染率与颜色特征$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}} $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}} $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{H}}} $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{V}}} $的相关性P<0.001,说明显著相关,选取这几个特征作为白叶枯感染率的敏感特征,建立回归模型。使用验证集中28个白叶枯感染图像对模型的预测精度进行验证,得到的R2、RMSE和RRMSE分别为86.12%、1.42和15.1%。使用$ {{{X}}}_{1} $$ {X}_{2} $$ {X}_{6} $,即$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}} $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}} $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{V}}} $作为自变量,多元回归模型如方程(11)所示,得到的R2、RMSE和RRMSE分别为85.9%、1.43和19.1%,与$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}} $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}} $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{H}}} $$ {{\boldsymbol{\delta}}}_{{\boldsymbol{V}}} $作为自变量时的结果相差不大,此时白叶枯感染率的测量值与预测值的拟合结果如图3a所示。

      图  3  基于颜色特征(a)、纹理特征(b)和两者融合(c)的白叶枯感染率预测模型精度检验
      Figure  3.  Accuracy evaluation of prediction model of bacterial blight infection rate based on color features (a), texture features (b) and their fusion (c)
      $$\begin{split} Y= & -20.437\;9-0.637\;77{X}_{1}+0.165\;06{X}_{2}+ \\ & 0.003\;66{X}_{6} 。 \end{split} $$ (11)

      采用皮尔逊相关性分析法获得感染率与纹理特征的相关系数和显著性。测得多重相关系数约为 0.95,表示自变量与因变量之间存在较强的线性相关性;R2为 0.90,说明模型可以解释因变量约 90% 的变异性,表明回归方程对数据的拟合程度很高。通过皮尔逊相关性分析得到白叶枯的感染率与5个纹理特征的相关性P<0.001,说明显著相关,将5个纹理特征作为自变量,建立回归模型。

      $$ \begin{split} Y=& -7.928-0.018\;42{X}_{1}+0.022\;75{X}_{2}-0.012\;22{X}_{3}+\\ & 0.007\;43{X}_{4}-0.011\;94{X}_{5} 。 \end{split} $$ (12)

      使用验证集中28个白叶枯感染图像对模型的预测精度进行验证,得到的R2、RMSE和RRMSE分别为83.5%、1.02和14.45%,拟合结果如图3b所示。

      已知无人机图像的颜色特征${{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}} $${{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}} $${{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{V}}} $和5个纹理特征对水稻白叶枯感染等级较为敏感,选取3个颜色特征和5个纹理特征,构建特征与白叶枯感染等级间的多元回归模型,测得多重相关系数和R2分别为 0.977和0.954,拟合程度较高,回归模型如式(13)所示。使用验证集中28个白叶枯感染图像对模型的预测精度进行验证,得到的R2RMSE和RRMSE分别为89.6%、1.06和15.1%,拟合结果如图3c所示。

      $$\begin{split} Y=& -23.48-0.417\;8{X}_{1}+0.134\;2{X}_{2}+0.002\;8{X}_{3}-\\ & 0.003\;4{X}_{4}+0.005\;4{X}_{5}-0.008\;6{X}_{6}+\\ & 0.005\;5{X}_{7}-0.004\;4{X}_{8} 。 \end{split} $$ (13)

      上述3个回归模型的结果证明了HSV颜色空间的一阶矩阵和二阶矩阵特征与水稻白叶枯为害等级相关,通过$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{H}}} $$ {{\boldsymbol{\mu}} }_{{\boldsymbol{S}}} $$ {{\boldsymbol{\delta}} }_{{\boldsymbol{V}}} $3个颜色特征能实现白叶枯的准确预测(R2=0.859,RMSE=1.43,RRMSE=19.1%)。与基于颜色特征的预测相比,基于灰度共生矩阵获得纹理特征的预测(R2=0.835,RMSE=1.02,RRMSE=14.14%)的R2减少2.4个百分点,准确率有所下降。然而,无论是仅使用颜色特征还是纹理特征都能获得较令人满意的预测结果。基于颜色和纹理特征融合的预测(R2=0.896,RMSE=1.06,RRMSE=15.1%)与仅颜色特征的预测相比,R2提高了3.7个百分点,RMSE降低了0.37,RRMSE减少了4.0个百分点;与仅纹理特征的预测相比,R2提高了6.1个百分点,预测精度有较大的提升。这些结果说明基于无人机低空遥感图像的颜色和纹理特征监测水稻白叶枯具有巨大潜力。

      要实现稻田快速无损的检测,需要对无人机的飞行高度进行合理设置,不合理的飞行高度不仅会增加后续无人机遥感数据处理的工作量,还会严重影响识别效率和准确度。为了解决这个问题,将“1.3.1”预处理后的图像(GSD为0.1 cm)重采样至GSD分别为0.2、0.5、0.8、1.0 cm,图像大小依然调整为500×500,重采样后的部分图像样本如图4所示。根据得到的对白叶枯较敏感特征,提取不同GSD图像颜色和纹理特征,分别构建颜色特征、纹理特征、颜色和纹理特征融合的白叶枯预测模型,结果如表2所示。由表2可知基于颜色特征的白叶枯感染等级模型的整体预测精度高于基于纹理特征的,2种特征相融合的预测模型比单一种类特征的精度更高。颜色、纹理以及融合特征3种模型预测精度随着GSD的增加,呈先增后减趋势。GSD不大于0.8 cm时,能得到较好的预测结果,特别是在GSD为0.2 cm时,与0.1 cm相比有所提升,可能高分辨率图像包含大量冗余信息和噪音,重采样GSD至0.2 cm后改善了图像质量,从而提高了预测精度。当图像重采样GSD至0.5和0.8 cm后,图像中的部分信息丢失,预测精度有所下降,但是基本都在80%以上,结果依然令人满意。重采样GSD至1.0 cm后,信息大量丢失,颜色特征、纹理特征和2种特征融合3种模型预测精度分别为74.0%,68.8%和73.8%,精度较低,RRMSE甚至达到62%。

      图  4  不同GSD条件下白叶枯4个感染等级样本
      Figure  4.  Samples of four infection levels in rice bacterial blight under different GSD conditions
      表  2  不同GSD条件下白叶枯感染等级预测精度
      Table  2.  Prediction accuracy of bacterial blight infection levels under different GSD conditions
      特征
      Feature
      地面分辨率/cm
      GSD
      决定系数/%
      R2
      均方根误差
      RMSE
      相对均方根误差/%
      RRMSE
      颜色
      Color
      0.1 85.9 1.43 19.1
      0.2 88.1 1.19 18.6
      0.5 85.8 0.86 25.9
      0.8 80.9 0.51 28
      1.0 74.0 0.43 62.0
      纹理
      Texture
      0.1 83.5 1.02 14.5
      0.2 84.6 0.93 13.2
      0.5 82.4 0.67 19.1
      0.8 74.6 0.17 12.1
      1.0 68.8 0.15 22.6
      颜色和纹理融合
      Fusion of color and texture
      0.1 89.6 1.06 15.1
      0.2 91.9 1.15 14.7
      0.5 86.6 0.32 10.1
      0.8 84.9 0.98 41.7
      1.0 73.8 0.12 23.1
      下载: 导出CSV 
      | 显示表格

      以上试验结果说明,在使用无人机搭载RGB相机尤其是多光谱相机快速监测整个稻田的白叶枯流行状况时,可设置无人机在合适的高度获得图像GSD为0.8 cm的图像进行数字正射影像图(Digital orthophoto map,DOM)的构建,提取图像颜色纹理2种特征融合后构建多元回归模型对白叶枯的感染等级进行预测,预测精度可达80%以上;如果能够融合多光谱中除R、G、B的其他波段以及一些常用的植被指数,将会获得更高的预测精度。以本文所用无人机遥感系统为例,根据以上研究计算出DJI Mavic 3T监测水稻白叶枯时较佳的飞行高度为23 m。

      为了验证前面试验结果对于稻田白叶枯的快速无损检测的可行性,根据“2.4”获得的白叶枯敏感特征以及最佳地面分辨率,对水稻田块进行区域尺度的白叶枯感染等级监测。无人机飞行高度设为22 m,焦距为4.4 mm,获得地面分辨率约为0.8 cm的高分辨率图像。对图像进行裁剪,去除背景(裸地)等预处理后,获得尺寸为2600×1900的图像。

      对预处理后的图像划分成尺寸为100×100的栅格,并根据栅格将图像裁剪为100×100的子图像,共获得子图像494张。构建白叶枯感染回归模型,获得子图像中白叶枯感染率,进而推断出子图像感染严重程度,最终获得整个区域水稻白叶枯的分布结果(图5)。由图5可知,在整个区域中,22.9%的区域为无感染区域,37.4%的区域为轻度感染区域,21.1%的区域为中度感染区域,18.6%的区域为严重感染区域。由图5可知,严重感染区域主要分布在裸地较多的区域,此时白叶枯感染严重已造成水稻植株枯萎。中度感染区域分布在严重感染区域周围,符合白叶枯从点到面的感染规律。结果说明通过多元回归模型可以实现区域尺度的白叶枯感染预测。

      图  5  区域尺度水稻白叶枯感染等级分布
      Figure  5.  Regional scale distribution of rice bacterial blight infection levels

      本文通过利用高分辨率RGB无人机获取白叶枯胁迫的水稻冠层高分辨率图像,通过提取颜色特征和纹理特征构建白叶枯感染等级模型,实现对白叶枯感染等级的预测。通过构建不同GSD的白叶枯监测模型,对合适的GSD进行探究。结论如下:

      从无人机高分辨率图像中提取的颜色特征和纹理特征对水稻白叶枯病感染等级的预测都能取得到较好的效果。基于颜色特征的监测模型的R2、RMSE、RRMSE分别为85.9%、1.43、19.1%,R2比基于纹理特征的模型高出2.4个百分点,RRMSE高了4.6个百分点。基于颜色和纹理特征融合的预测模型(R2=0.896,RMSE=1.06,RRMSE=15.1%)与仅颜色特征的预测模型相比,$ {R}^{2} $提高了3.7个百分点,RMSE降低了0.37,RRMSE减少了4.0个百分点;与仅纹理特征的预测模型相比,R2提高了6.1个百分点,预测精度有较大的提升。

      将图像进行重采样,得到GSD分别为0.2、0.5、0.8、1.0 cm的水稻冠层图像,对不同GSD的图像提取颜色和纹理特征,分别构建单一种类特征模型和2类特征融合模型,发现当GSD为0.2、0.5或0.8 cm时,模型精度与直接提取特征构建的模型精度相差不大,R2均在80%以上,当GSD为1.0 cm时,模型精度大幅下降,不能对水稻白叶枯进行准确监测。

      基于无人机低空遥感图像的颜色和纹理特征监测水稻白叶枯具有巨大潜力;利用无人机遥感监测水稻白叶枯时,可根据最佳GSD以及所搭载传感器型号,获得适宜的无人机飞行高度,研究可为无人机遥感系统快速监测水稻田白叶枯提供依据。

    • 图  1   酵母双杂交试验验证

      Figure  1.   Validation of yeast two-hybrid assay

      图  2   荧光素酶互补试验验证

      Figure  2.   Validation of luciferase complementation assay

      图  3   稻瘟病菌侵染过程中OsCdc48的表达分析

      图中数据是3次独立试验的平均值±标准差,各图中柱子上方的不同小写字母表示在P < 0.05水平差异显著(单因素方差分析)。

      Figure  3.   Analysis of OsCdc48 expression during infection with Magnaporthe oryzae

      Data presented in two figures are means ± standard deviations of three independent experiments, different lowercase letters above the columns in each figure indicate significant differences at P < 0.05 (One-way ANOVA).

      图  4   OsCdc48序列分析

      图C中,黑色圆点为OsCdc48;图D中,第1个序列为OsCdc48,第2个序列为AtCdc48。

      Figure  4.   Sequence analysis of OsCdc48

      In figure C, the black dot represents OsCdc48; In figure D, the first sequence represents OsCdc48, the second sequence represents AtCdc48.

      图  5   OsCdc48的亚细胞定位

      Figure  5.   Subcellular localization of OsCdc48

      图  6   OsCdc48在水稻各组织中的相对表达量

      图中数据是3次独立试验的平均值±标准差,柱子上方的不同小写字母表示在P < 0.05水平差异显著(单因素方差分析)。

      Figure  6.   Relative expression of OsCdc48 in various rice tissues

      Data presented in figure are means ± standard deviations of three independent experiments, different lowercase letters above the columns indicate significant differences at P < 0.05 (One-way ANOVA).

      图  7   ko-oscdc48突变体的靶位点和突变序列

      Figure  7.   Target sites and mutation sequences of ko-oscdc48 mutant

      图  8   ko-oscdc48突变体的株型

      Figure  8.   Plant type of ko-oscdc48 mutant

      图  9   接种GUY11和GDYJ7后ko-oscdc48与野生型Pik-H4 NIL的表型

      Figure  9.   Phenotype of ko-oscdc48 compared to the wild type Pik-H4 NIL after inoculation with GUY11 and GDYJ7

      图  10   接种GUY11和GDYJ7后ko-oscdc48与野生型Pik-H4 NIL的病斑长度

      图中数据为平均值±标准差,n > 6,**表示突变体与野生型在P < 0.01水平差异显著(t检验)。

      Figure  10.   Lesion length of ko-oscdc48 compared to the wild type Pik-H4 NIL after inoculation with GUY11 and GDYJ7

      Data presented in two figures are means ± standard deviations, n > 6, ** indicates significant differences between the mutant and wild type at P < 0.01 level (t test).

      图  11   接种GUY11和GDYJ7后ko-oscdc48与野生型Pik-H4 NIL病程相关基因的表达

      图中数据是3次独立试验的平均值±标准差,*和***分别表示在P < 0.05和P < 0.001水平差异显著(t检验)。

      Figure  11.   Expression of disease-related genes in ko-oscdc48 compared to the wild type Pik-H4 NIL after inoculation with GUY11 and GDYJ7

      Data presented in three figures are means ± standard deviations of three independent experiments, * and *** indicate significant differences at P < 0.05 and P < 0.001 levels respectively (t test).

      表  1   本研究用到的引物

      Table  1   Primers used in this study

      名称
      Name
      正向序列(5′→3′)
      Forward sequence
      反向序列(5′→3′)
      Reverse sequence
      OsCdc48-target TAGGTCTCCTTATGGACCCCC GTTTTAGAGCTAGAA CGGGTCTCAATAAAGCAGTATTGCACCAGCCGGGAA
      OsCdc48-test AGACCTTTTCCTTGTTAGGGG AGCTTTGAGCCCATCCATAAG
      OsActin TGTATGCCAGTGGTCGTACCA CCAGCAAGGTCGAGACGAA
      OsCdc48-qPCR GAATGCTCTTGCCAAATACACC TCCTCCGCTTCTCCATCTCG
      PR10 CGCCGCAAGTCATGTCCTA GCTTCGTCTCCGTCGAGTGT
      OsPAL1 AGGAGCTCGGCTGCGTATT ATGCCGAGGAACACCTTGTT
      PR1a GGAAGTACGGCGAGAACATC TGGTCGTACCACTGCTTCTC
      OsCdc48-AAA2-CLuc agaacacgggggacgagctcATGTCCAAAGGTGTTCTGTT atcgagtacgcggaccggccATCAGGCAGAGGAATGTAGA
      OsCdc48-AAA1-CLuc agaacacgggggacgagctcCCTCCAAAGGGCATACTGCTT atcgagtacgcggaccggccCATCAGGAACACCAATGTCAA
      AD-OsCdc48-AAA2 taccagattacgctcatatgATGTCCAAAGGTGTTCTGTT gctcgagctcgatggatcccCATCAGGAACACCAATGTCAA
      AD-OsCdc48-AAA1 taccagattacgctcatatgCCTCCAAAGGGCATACTGCTT gctcgagctcgatggatcccTTTAGGCTTGAAGGTAAGCC
      Pik1 H4-NLuc ggacgagctcggtacccATGGAGGCGGCTGCCATG gtacgagatctggtcgacGCTAGTAGTTTCTGTTTGAATTTCAAT
      BD-Pik1 H4 gaggaggacctgcatATGATGGAGGCGGCTGCCATG gcaggtcgacggatccctaGCTAGTAGTTTCTGTTTGAATTTCAAT
      下载: 导出CSV
    • [1]

      BIRLA D S, MALIK K, SAINGER M, et al. Progress and challenges in improving the nutritional quality of rice (Oryza sativa L.)[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2017, 57(11): 2455-2481. doi: 10.1080/10408398.2015.1084992

      [2]

      MISHRA R, JOSHI R K, ZHAO K J. Genome editing in rice: Recent advances, challenges, and future implications[J]. Frontiers in Plant Science, 2018, 9: 1361. doi: 10.3389/fpls.2018.01361

      [3]

      LIU W, WANG G. Plant innate immunity in rice: A defense against pathogen infection[J]. National Science Review, 2016, 3(3): 295-308. doi: 10.1093/nsr/nww015

      [4]

      BOUTROT F, ZIPFEL C. Function, discovery, and exploitation of plant pattern recognition receptors for broad-spectrum disease resistance[J]. Annual Review of Phytopathology, 2017, 55: 257-286. doi: 10.1146/annurev-phyto-080614-120106

      [5]

      NGOU B P M, DING P T, JONES J D G. Thirty years of resistance: Zig-zag through the plant immune system[J]. The Plant Cell, 2022, 34(5): 1447-1478. doi: 10.1093/plcell/koac041

      [6]

      BOLLER T, FELIX G. A renaissance of elicitors: Perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by pattern-recognition receptors[J]. Annual Review of Plant Biology, 2009, 60: 379-406. doi: 10.1146/annurev.arplant.57.032905.105346

      [7]

      JONES J D G, DANGL J L. The plant immune system[J]. Nature, 2006, 444(7117): 323-329. doi: 10.1038/nature05286

      [8]

      SPOEL S H, DONG X. How do plants achieve immunity? Defence without specialized immune cells[J]. Nature Reviews Immunology, 2012, 12(2): 89-100. doi: 10.1038/nri3141

      [9] 刘文德, 代玉立, 邵小龙, 等. 我国主要农作物病害灾变机制与综合防控研究进展: 2018年—2022年[J]. 植物保护, 2023, 49(5): 1-31.
      [10] 闫影, 王凯, 周锋利, 等. 长三角地区粳稻种质的稻瘟病抗性基因鉴定及其抗性评价[J]. 核农学报, 2022, 36(1): 14-23.
      [11]

      BÈGUE H, JEANDROZ S, BLANCHARD C, et al. Structure and functions of the chaperone-like p97/CDC48 in plants[J]. Biochimica et Biophysica Acta-General Subjects, 2017, 1861(1): 3053-3060. doi: 10.1016/j.bbagen.2016.10.001

      [12]

      STOLZ A, HILT W, BUCHBERGER A, et al. Cdc48: A power machine in protein degradation[J]. Trends in Biochemical Sciences, 2011, 36(10): 515-523. doi: 10.1016/j.tibs.2011.06.001

      [13]

      RIENTIES I M, VINK J, BORST J W, et al. The Arabidopsis SERK1 protein interacts with the AAA-ATPase AtCDC48, the 14-3-3 protein GF14λ and the PP2C phosphatase KAPP[J]. Planta, 2005, 221(3): 394-405. doi: 10.1007/s00425-004-1447-7

      [14]

      HU H, XIONG L, YANG Y. Rice SERK1 gene positively regulates somatic embryogenesis of cultured cell and host defense response against fungal infection[J]. Planta, 2005, 222(1): 107-117. doi: 10.1007/s00425-005-1534-4

      [15]

      COPELAND C, WOLOSHEN V, HUANG Y, et al. AtCDC48A is involved in the turnover of an NLR immune receptor[J]. The Plant Journal, 2016, 88(2): 294-305. doi: 10.1111/tpj.13251

      [16]

      SHI L, ZHANG X, SHI Y, et al. OsCDC48/48E complex is required for plant survival in rice (Oryza sativa L.)[J]. Plant Molecular Biology, 2019, 100(1/2): 163-179.

      [17]

      LI W, WANG K, CHERN M, et al. Sclerenchyma cell thickening through enhanced lignification induced by OsMYB30 prevents fungal penetration of rice leaves[J]. New Phytologist, 2020, 226(6): 1850-1863. doi: 10.1111/nph.16505

      [18]

      LIVAK K J, SCHMITTGEN T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method[J]. Methods, 2001, 25(4): 402-408. doi: 10.1006/meth.2001.1262

      [19] 刘维, 刘浩, 董双玉, 等. 水稻叶鞘原生质体转化体系的构建及Pik-H4和AvrPik-H4蛋白的瞬时表达[J]. 中国农业科学, 2017, 50(23): 4575-4584. doi: 10.3864/j.issn.0578-1752.2017.23.010
      [20] 林春姿, 黄其伟, 侯艳, 等. 水稻多胺氧化酶基因(OsPAO4) CRISPR/Cas9编辑突变体的创制[J]. 广东农业科学, 2023, 50(3): 1-10.
      [21]

      LIU W, LIU J, NING Y, et al. Recent progress in understanding PAMP- and effector-triggered immunity against the rice blast fungus Magnaporthe oryzae[J]. Molecular Plant, 2013, 6(3): 605-620. doi: 10.1093/mp/sst015

      [22]

      JOSHI R K, NAYAK S. Perspectives of genomic diversification and molecular recombination towards R-gene evolution in plants[J]. Physiology and Molecular Biology of Plants, 2013, 19(1): 1-9. doi: 10.1007/s12298-012-0138-2

      [23]

      ZHAI K, LIANG D, LI H, et al. NLRs guard metabolism to coordinate pattern- and effector-triggered immunity[J]. Nature, 2022, 601(7892): 245-251. doi: 10.1038/s41586-021-04219-2

      [24]

      WANG J, WANG R, FANG H, et al. Two VOZ transcription factors link an E3 ligase and an NLR immune receptor to modulate immunity in rice[J]. Molecular Plant, 2021, 14(2): 253-266. doi: 10.1016/j.molp.2020.11.005

      [25]

      XIAO N, WU Y, ZHANG X, et al. Pijx confers broad-spectrum seedling and panicle blast resistance by promoting the degradation of ATP β subunit and OsRbohC-mediated ROS burst in rice[J]. Molecular Plant, 2023, 16(11): 1832-1846. doi: 10.1016/j.molp.2023.10.001

      [26]

      XIE Y, WANG Y, YU X, et al. SH3P2, an SH3 domain-containing protein that interacts with both Pib and AvrPib, suppresses effector-triggered, Pib-mediated immunity in rice[J]. Molecular Plant, 2022, 15(12): 1931-1946. doi: 10.1016/j.molp.2022.10.022

      [27]

      LIU H, DONG S, SUN D, et al. CONSTANS-like 9 (OsCOL9) interacts with receptor for activated C-kinase 1(OsRACK1) to regulate blast resistance through salicylic acid and ethylene signaling pathways[J]. PLoS One, 2016, 11(11): e0166249. doi: 10.1371/journal.pone.0166249

      [28]

      LIU H, DONG S, GU F, et al. NBS-LRR protein Pik-H4 interacts with OsBIHD1 to balance rice blast resistance and growth by coordinating ethylene-brassinosteroid pathway[J]. Frontiers in Plant Science, 2017, 8: 127. doi: 10.3389/fpls.2017.00127

      [29]

      JABS T, TSCHÖPE M, COLLING C, et al. Elicitor-stimulated ion fluxes and O2 from the oxidative burst are essential components in triggering defense gene activation and phytoalexin synthesis in parsley[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1997, 94(9): 4800-4805.

      [30]

      FRIEDMAN A R, BAKER B J. The evolution of resistance genes in multi-protein plant resistance systems[J]. Current Opinion in Genetics & Development, 2007, 17(6): 493-499.

      [31]

      DANGL J L, JONES J D G. Plant pathogens and integrated defence responses to infection[J]. Nature, 2001, 411(6839): 826-833. doi: 10.1038/35081161

      [32]

      BENDAHMANE A, KANYUKA K, BAULCOMBE D C. The Rx gene from potato controls separate virus resistance and cell death responses[J]. The Plant Cell, 1999, 11(5): 781-792. doi: 10.1105/tpc.11.5.781

      [33]

      ZHANG X, GASSMANN W. RPS4-mediated disease resistance requires the combined presence of RPS4 transcripts with full-length and truncated open reading frames[J]. The Plant Cell, 2003, 15(10): 2333-2342. doi: 10.1105/tpc.013474

      [34]

      ZHOU F, MOSHER S, TIAN M, et al. The Arabidopsis gain-of-function mutant ssi4 requires RAR1 and SGT1b differentially for defense activation and morphological alterations[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2008, 21(1): 40-49. doi: 10.1094/MPMI-21-1-0040

      [35]

      OLDROYD G E D, STASKAWICZ B J. Genetically engineered broad-spectrum disease resistance in tomato[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1998, 95(17): 10300-10305.

      [36]

      TAO Y, YUAN F, LEISTER R T, et al. Mutational analysis of the Arabidopsis nucleotide binding site-leucine-rich repeat resistance gene RPS2[J]. The Plant Cell, 2000, 12(12): 2541-2554.

      [37]

      XIAO S, BROWN S, PATRICK E, et al. Enhanced transcription of the arabidopsis disease resistance genes RPW8.1 and RPW8.2 via a salicylic acid-dependent amplification circuit is required for hypersensitive cell death[J]. The Plant Cell, 2003, 15(1): 33-45. doi: 10.1105/tpc.006940

      [38]

      BOCCARA M, SARAZIN A, THIÉBEAULD O, et al. The Arabidopsis miR472-RDR6 silencing pathway modulates PAMP- and effector-triggered immunity through the post-transcriptional control of disease resistance genes[J]. PLoS Pathogens, 2014, 10(1): e1003883. doi: 10.1371/journal.ppat.1003883

      [39]

      JOHNSON K, DONG O, HUANG Y, et al. A rolling stone gathers no moss, but resistant plants must gather their MOSes[J]. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology, 2012, 77: 259-268. doi: 10.1101/sqb.2013.77.014738

      [40]

      PARKER J, COLEMAN M, SZABÒ V, et al. The Arabidopsis downy mildew resistance gene RPP5 shares similarity to the toll and interleukin-1 receptors with N and L6[J]. The Plant Cell, 1997, 9(6): 879-894. doi: 10.1105/tpc.9.6.879

      [41]

      DINESH-KUMAR S P, BAKER B J. Alternatively spliced N resistance gene transcripts: Their possible role in tobacco mosaic virus resistance[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2000, 97(4): 1908-1913.

      [42]

      HUANG Q N, SHI Y F, ZHANG X B, et al. Single base substitution in OsCDC48 is responsible for premature senescence and death phenotype in rice[J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2016, 58(1): 12-28. doi: 10.1111/jipb.12372

      [43]

      BODNAR N O, RAPOPORT T A. Molecular mechanism of substrate processing by the Cdc48 ATPase complex[J]. Cell, 2017, 169(4): 722-735. doi: 10.1016/j.cell.2017.04.020

      [44]

      MEYER H, BUG M, BREMER S. Emerging functions of the VCP/p97 AAA-ATPase in the ubiquitin system[J]. Nature Cell Biology, 2012, 14: 117-123. doi: 10.1038/ncb2407

      [45]

      LI J, YUAN J, LI Y, et al. The CDC48 complex mediates ubiquitin-dependent degradation of intra-chloroplast proteins in plants[J]. Cell Reports, 2022, 39(2): 110664. doi: 10.1016/j.celrep.2022.110664

      [46]

      AO K, TONG M, LI L, et al. SCFSNIPER7 controls protein turnover of unfoldase CDC48A to promote plant immunity[J]. New Phytologist, 2021, 229(5): 2795-2811. doi: 10.1111/nph.17071

    图(11)  /  表(1)
    计量
    • 文章访问数:  0
    • HTML全文浏览量:  0
    • PDF下载量:  0
    • 被引次数: 0
    出版历程
    • 收稿日期:  2024-02-29
    • 网络出版日期:  2024-12-10
    • 发布日期:  2024-12-12
    • 刊出日期:  2025-03-09

    目录

    /

    返回文章
    返回