Dynamic change and comprehensive evaluation of main nutrients in leaves of different Eucommia ulmoides improved varieties
-
摘要:目的
杜仲Eucommia ulmoides叶在医疗、保健、食品及无抗养殖等领域有广泛用途。通过比较不同良种杜仲叶主要营养成分的差异及动态变化,筛选优质叶用杜仲良种资源,为杜仲叶的高效利用提供参考。
方法分别利用HPLC法和全自动氨基酸分析仪测定13个良种不同生长期杜仲叶9种重要活性成分和15种氨基酸组分的含量,基于主成分分析和隶属函数法开展不同良种杜仲叶的营养评价。
结果与槲皮素、桃叶珊瑚苷和京尼平苷酸相比,原儿茶酸、芦丁、绿原酸、紫云英苷、山奈酚以及松脂素二葡萄糖苷的含量在不同良种杜仲叶之间差异较大;不同良种同一活性成分含量的生长动态变化趋势基本一致。13个良种杜仲叶必需氨基酸与总氨基酸的比值(EAA/TAA)为0.40~0.45,必需氨基酸与非必需氨基酸的比值(EAA/NEAA)为0.66~0.82;天冬氨酸、苏氨酸、丝氨酸等5种氨基酸的动态变化趋势较为一致。总氨基酸、必需氨基酸、亮氨酸等9种组分的含量可作为杜仲叶营养价值的评判指标。
结论13个良种杜仲叶的氨基酸组成和比例均达到理想蛋白质模式的标准。‘华仲10号’‘华仲24号’‘华仲13号’‘华仲30号’‘华仲12号’是优质的叶用杜仲良种资源,在规模化提取和利用杜仲叶黄酮类时应优先选用‘华仲12号’‘华仲24号’良种。
Abstract:ObjectiveEucommia ulmoides leaves are of wide uses in medical treatment, health care, food industry and antimicrobial-free breeding. To give a reference for the efficient utilization of E. ulmoides leaves, the high grade leaf-used resources were screened after comparing differences and dynamic changes of main nutrients in leaves of different improved varieties.
MethodThe contents of nine important active compounds and 15 amino acid components were determined in different leaf growth periods of 13 E. ulmoides improved varieties by HPLC method and automatic amino acid analyzer, respectively. Then the nutritional evaluation of E. ulmoides leaves was performed by principal component analysis and membership function.
ResultCompared to quercetin, aucubin and geniposidic acid, the content differences of protocatechuic acid, rutin, chlorogenic acid, astragalin, kaempferol and abietin pinoresinol diglucoside in E. ulmoides leaves were more significant in the 13 varieties. To content of the same active compound, similar growth dynamic changes were found in different varieties. Among the 13 improved varieties, the ratio of essential amino acids to total amino acids (EAA/TAA) was 0.40−0.45, while the ratio of essential amino acids to non-essential amino acids (EAA/NEAA) was 0.66−0.82. Similar dynamic changes were found in contents of five amino acids including aspartic acid, threonine and serine. The contents of nine components, including total amino acids, essential amino acids and leucine, were selected as indexes for evaluating the nutritional value of the leaves.
ConclusionThe amino acid composition and proportion in leaves of all 13 improved varieties reach the standard of the ideal protein pattern. Varieties of ‘Huazhong 10’ ‘Huazhong 24’ ‘Huazhong 13’ ‘Huazhong 30’ ‘Huazhong 12’ are of high grade improved varieties for E. ulmoides leaf use. ‘Huazhong 12’ and ‘Huazhong 24’ can be preferentially selected while extracting and utilizing leaf flavonoids in large scale.
-
Keywords:
- Eucommia ulmoides /
- Leaf /
- Active compound /
- Amino acid /
- Dynamic change /
- Membership function /
- Improved variety for leaf use
-
植物内生真菌(Endophytic fungus)是指那些生活史的部分阶段或全部生活于健康植物组织或器官内部,且在长期的协同进化过程中与宿主植物形成互惠共生关系的一类真菌[1-2]。内生真菌与宿主植物形成的这种互惠共生关系为研究者从植物内生真菌次生代谢产物中寻找新型的天然活性先导物提供了新的方向[3]。近年来,内生真菌次生代谢产物的研究越来越受到人们的重视,尤其是从短叶红豆杉Taxus brevifolia韧皮部分离到产紫杉醇的内生真菌Taxomyces andreanae后,掀起了人们对内生真菌次生代谢产物研究的热潮[4-5]。内生真菌作为一种新型的天然活性物质资源宝库,能够产生多种结构新颖的次生代谢产物,其具有抗菌、杀虫、抗氧化、抗肿瘤以及促进植物生长和提高植物抗病性等多种生物活性,从植物内生真菌中寻找具有开发潜能的生物活性物质引起了人们极大的兴趣[6-9]。
目前对于桉树内生真菌及其次生代谢产物的研究多集中在内生真菌的生理学和生态学作用方面。谢安强等[10-12]研究发现桉树内生真菌能够显著提高桉树的抗逆能力,如促进植株对磷的吸收能力,提高桉树的抗寒能力,促进植株的光合作用效能等。Kharwar等[13]从柠檬桉Eucalyptus citriodora中分离得到的曲霉属Aspergillussp.和毛壳菌属Chaetomiumsp.内生真菌表现出较强的抗真菌和抗细菌活性。格希格图等[14]从不同桉树根部分离到的内生真菌对桉树青枯病菌Ralstonia solanacearum有不同程度的拮抗作用,其中以大叶桉Eucalyptus robusta内生真菌的抗菌活性最为明显。Mohali等[15]从桉树和金合欢Acacia farnesiana中分离到2株新的内生真菌Fusicoccum sp.,但并未对其次生代谢产物的生物活性进行研究。华南农业大学林学与风景园林学院森林保护教研室的前期研究表明,窿缘桉Eucalyptus exserta果实内生真菌Eef-10表现出较好的抗桉树青枯病菌活性[16],本文在前期研究的基础上,以内生真菌Eef-10为研究对象,通过形态学和分子生物学相结合的方法确定其分类地位,同时分离和鉴定内生真菌Eef-10中的活性成分,并测定其抗细菌和抗肿瘤细胞活性,以期为内生真菌资源的开发和利用提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 供试菌株和肿瘤细胞
内生真菌Eef-10分离自健康的窿缘桉果实,目前保藏于华南农业大学林学与风景园林学院植物和微生物健康实验室。
供试细菌包括大肠埃希菌Escherichia coli(G-)、根癌土壤杆菌Agrobacterium tumefaciens(G-)、黄瓜角斑病菌Pseudomonas lachrymans(G-)、桉树青枯病菌Ralstonia solanacearum(G-)和番茄疮痂病菌Xanthomonas vesicatoria(G-),以上菌株均保藏于华南农业大学林学与风景园林学院植物和微生物健康实验室。
供试细胞株系为肝癌细胞(Hep-G2)和宫颈癌细胞(HeLa),供试肿瘤细胞由中国医学科学院北京协和医学院医药生物技术研究所提供。
1.2 仪器与试剂
核磁共振波谱仪(Bruker Avance-600,美国Bruker公司),半制备型液相色谱仪(泵:UC-3281,紫外检测器:UC-3292S,上海Welch公司),分析型液相色谱仪(LC-10F,天津博纳艾杰尔科技有限公司),三用紫外仪(ZQ-1,上海安亭科学仪器厂),超净工作台(SW-CJ-2G,苏州净化设备有限公司),生化培养箱(LRH-250,上海一恒科技有限公司)。
Sephadex LH-20葡聚糖凝胶(瑞士GE Heaithcare公司),GF254薄层层析硅胶和正相柱层析硅胶(青岛化工有限公司),硫酸链霉素(w=98%,上海麦克林生化科技有限公司),噻唑蓝(MTT)生物显色剂(w=98%,美国Amresco公司),喜树碱(w≥99%,上海麦克林生化科技有限公司),真菌基因组DNA抽提试剂盒 [生工生物工程(上海)股份有限公司],甲醇、二甲基亚砜、丙酮、乙酸乙酯、三氯甲烷、二氯甲烷和石油醚(分析纯,天津富宇精细化工厂),甲醇(色谱纯,上海星可高纯溶剂有限公司),氘代氯仿、氘代丙酮(巴斯夫化学有限公司)。
1.3 内生真菌Eef-10的鉴定
采用形态学和分子生物学相结合的方法对内生真菌Eef-10进行鉴定。
1.3.1 形态学鉴定
用灭菌牙签挑取PDA培养基上菌落边缘生长旺盛的菌丝,接种于新的PDA培养基中,置于生化培养箱中培养7~10 d,然后用生物显微镜观察菌丝、有性孢子和产孢结构等特征,参照Sekhar等[17]对内生真菌Eef-10进行形态学鉴定。
1.3.2 分子生物学鉴定
参照单体江等[18]的方法对内生真菌Eef-10进行分子生物学鉴定。将纯化后的内生真菌Eef-10(在PDA培养基上生长5 d)接种到PDB培养基中,28 ℃、150 r/min条件下振荡培养5 d,分液漏斗过滤后收集菌丝,用液氮进行充分研磨至粉末状,采用真菌基因组DNA抽提试剂盒提取其总DNA,使用真菌的通用引物ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)和ITS5(5′-GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGG-3′)扩增其ITS序列。PCR反应体系(50 μL):去离子水21 μL,2×Taq PCR MasterMix(含染料)25 μL,ITS4(10 μmol/L)1 μL,ITS5(10 μmol/L)1 μL,模板DNA(10 ng/ μL)2 μL;PCR扩增程序:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性40 s,56 ℃退火40 s,72 ℃延伸1 min 20 s,共30个循环;72 ℃延伸10 min。PCR产物送至生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序。将测序成功的ITS序列提交至GenBank数据库,获得登录号。通过在NCBI网站上进行BLAST,下载与其相似性较高的序列及其近似属的序列,使用MAFTT version 7处理后,用MEGA6软件采用最大似然法构建系统发育树。
1.4 内生真菌Eef-10次生代谢产物的制备
采用大米固体培养基对内生真菌Eef-10进行大规模发酵。首先从4 ℃冻存管中挑取少许Eef-10菌丝接种到PDA平板上活化培养5~7 d,再将其菌丝接种在500 mL装有200 mL PDB培养基的三角瓶中,置于28 ℃、150 r/min条件下振荡培养3~5 d。将获得的液体种子接入已灭菌的大米培养基中,共发酵6 kg,28 ℃条件下暗培养60 d,以确保菌丝将大米培养基营养消耗完毕。而后将发酵好的固体发酵物用甲醇冷浸提取3次,每次7 d,减压浓缩后水混悬,依次用等体积的石油醚和乙酸乙酯萃取,分别得到石油醚层和乙酸乙酯层粗提物。
1.5 次生代谢产物的分离、纯化和鉴定
乙酸乙酯层提取物(51.40 g)经减压硅胶柱层析,先用石油醚洗脱,再用二氯甲烷和甲醇梯度洗脱,通过薄层层析合并成A~D 4个部分。其中B部分(25.19 g)再经减压硅胶柱层析,采用二氯甲烷和甲醇梯度洗脱,通过薄层层析合并成11个馏分,分别编号为B1~B11。B4馏分(2.9 g)经Sephadex LH-20柱层析(三氯甲烷︰甲醇体积比为1︰1),通过薄层层析检测后合并为7个组分,分别编号为B4-1~B4-7。B4-7(30 mg)经semi-HPLC(甲醇︰水体积比为 65︰35,流速5 mL/min,λ = 210 nm,进样体积为0.1 mL)制备,得到化合物Ⅰ(4.5 mg)和化合物Ⅱ(5.5 mg)。B6馏分(9.5 g),经Sephadex LH-20(三氯甲烷︰甲醇体积比为1︰1)柱层析,通过薄层层析检测后合并成6个组分,编号为B6-1~B6-6。其中B6-3(95 mg)经semi-HPLC(甲醇︰水体积比为50︰50,流速5 mL/min,λ = 210 nm,进样体积为0.1 mL)制备,得到化合物Ⅲ(30 mg)。
单体化合物的结构主要通过1H NMR、13C NMR等波谱学数据进行鉴定,并与文献比对后确定。
1.6 抗细菌活性的测定
抗细菌活性的测定参照刘志强等[19]的方法,精密称取单体化合物Ⅰ~Ⅲ各2.0 mg分别溶于0.3 mL丙酮中,再加入0.7 mL蒸馏水,配成质量浓度为2 000 μg/mL的母液,然后用φ为30%的丙酮溶液依次稀释成质量浓度为2 000.000、1 000.000、500.000、250.000、125.000、62.500、31.250、15.625 μg/mL的样品溶液。阳性对照为硫酸链霉素,采用相同的方法配成质量浓度为500.000 00、250.000 00、125.000 00、62.500 00、31.250 00、15.625 00、7.812 50、3.906 25 μg/mL的溶液,备用。在无菌的96微孔板中加入106 CFU/mL的供试菌液90 μL,然后加入不同浓度的测试样品溶液10 μL。同时设空白对照(H2O)和溶剂对照(φ为30%的丙酮溶液),每处理6个重复。用封口膜将96微孔板四周封口,于28 ℃、黑暗条件下振荡(15 r/min)培养24 h,每孔加入10 μL MTT溶液(5 mg/mL),继续培养4 h后,以3 000 r/min 离心20 min,去上清,每孔加入二甲基亚砜(DMSO)150 μL,振荡(15 r/min)30 min,为了测定半抑制浓度(IC50),多孔板离心后,每孔取100 μL,于510 nm 下测定吸光度(D510 nm)。按下面公式计算待测样品对供试细菌的抑制率:
$${\text{抑制率}} = \frac{{{\text{溶剂对照孔}}{D_{510\;{\rm{nm}}}} - {\text{药液孔}}{D_{510\;{\rm{nm}}}}}}{{{\text{溶剂对照孔}}{D_{510\;{\rm{nm}}}}}} \times 100\% {\text{。}}$$ 所得数据采用 Microsoft excel 软件进行分析,供试样品浓度取对数(X),抑制率换算成概率值(Y),求得抑制活性回归方程(Y = aX+b)和半抑制浓度(IC50)。
1.7 抗肿瘤细胞活性测定
抗肿瘤细胞活性的测定参照Ouyang等[20]的方法,阳性对照为喜树碱。将对数生长期细胞接种于96孔细胞培养板(Nest)中,待6~8 h后细胞贴壁。用含有5%(w)FBS(Gibco)的DMEM(Hyclone)细胞培养基将化合物以2倍梯度稀释,共制备8个梯度(质量浓度分别为80.000、40.000、20.000、10.000、5.000、2.500、1.250和0.625 μg/mL)备用。小心吸弃各孔内原生长培养基后,将制备好的各浓度化合物分别加入对应孔中,每孔200 μL,每个化合物每个浓度设置4组重复孔。对照孔加入相应浓度的DMSO。在37 ℃,φ(CO2)为5%条件下,化合物与细胞继续共培养48 h。每孔加入CCK8试剂15 μL,在37 ℃、φ(CO2)为5%条件下继续培养4 h后,采用多功能微孔板检测仪在450 nm下检测各孔的吸光度(D450 nm),记录并保存数据。采用GraphPad Prism 5拟合各化合物在各细胞株的生长抑制曲线并计算其IC50值。
2. 结果与分析
2.1 内生真菌Eef-10的鉴定
内生真菌Eef-10的菌落和显微形态如图1所示。在PDA培养基上,菌落呈规则圆形(图1a),气生菌丝发达,绒毛状,初始时菌落白色,后期菌落颜色逐渐变灰,且随时间延长而逐渐加深,培养7 d后可布满整个培养皿(d = 7.5 cm)。在显微镜下观察发现,菌丝有隔(图1b),内含多个油滴,菌丝后期颜色较深且粗细不均,隔间距缩短;子囊果近球形(图1d),有孔口;附属丝较长,呈菌丝状,有隔,周生于子囊果且大部分集中生长于子囊果顶部;子囊孢子灰褐色(图1c),单孢,卵圆形,光滑,长×宽平均为7.0 μm×5.5 μm,有顶生萌发孔;与毛壳菌属Chaetomium的特征相一致[17, 21]。
进一步通过真菌通用引物ITS4和ITS5进行PCR扩增,获得大小为592 bp的目的序列,将该目的序列提交至GenBank,获得登录号MK120863。在GenBank数据库中进行同源性比对,采用最大似然法通过MEGA 6构建系统发育树(图2)。从图2可以看出,内生真菌Eef-10与Chaetomium sp.(登录号:KU504294.1)聚在同一支上,其最大相似度为99.82%,结合形态学特征最终将内生真菌Eef-10确定为子囊菌门Ascomycota核菌纲Pyrenomycetes粪壳目Sordariales毛壳菌科Chaetomiaceae毛壳菌属Chaetomium sp.真菌。
2.2 化合物的结构鉴定
通过1H NMR、13C NMR等波谱学数据以及与文献比对,确定了3种化合物的结构(图3)。
化合物Ⅰ,淡黄色固体,1H NMR谱在δH6.20 (1H, s)处有1个苯基质子信号,在δH2.09 (3H, s)和2.46 (3H, s)处有2个苯甲基质子信号,在δH3.91 (3H, s)处有1个甲氧基质子信号,δH 12.06 (1H, s)和 5.14 (1H, s)表明其结构中含有2个羟基信号,而且13C NMR谱中的2个芳香族碳信号δC163.37和158.20进一步支持了苯环在C-2和C-4处的氧化;通过1H NMR谱的相关信息及13C NMR谱δC163.37,158.20,140.39,110.75,108.70,105.46可以推导其结构中含有1个五取代苯环;13C NMR谱在δ 172.83处表明其结构中含有1个羰基。化合物Ⅰ的1H NMR (600 MHz,CDCl3)δH:12.06 (1H,s,2-OH),6.20 (1H,s,H-5),5.14 (1H,s,5-OH),3.91 (3H,s,H-1'),2.45 (3H,s,H-6),2.10 (3H,s,H-3);13C NMR (151 MHz,CDCl3) δC:172.83 (C-7),163.37 (C-2),158.20 (C-4),140.39 (C-6),110.75 (C-5),108.70 (C-3),105.46 (C-1),52.08 (C-1'),24.36 (C-6),7.89 (C-3)。上述数据与文献[22]数据一致,故将化合物Ⅰ鉴定为2, 4−二羟基−3, 6−二甲基苯甲酸甲酯(Methyl 2, 4-dihydroxy-3, 6-dimethylbenzoate,即Atraric acid)(图3a)。
化合物Ⅱ,白色固体,化合物Ⅱ的1H NMR谱和13C NMR谱与化合物Ⅰ数据非常接近,基本骨架一致,1H NMR谱中δH1.40 (t,J = 7.1 Hz,3H),4.38 (q,J = 7.1 Hz,2H)信号,表明其结构中含有1个R—CH2—CH3信号。化合物Ⅱ的1H NMR (600 MHz,CDCl3)δH:12.14 (1H,s,2-OH),6.19 (1H,s,H-5),5.18 (1H,s,5-OH),4.38 (2H,q,J= 7.1 Hz,H-1′),2.46 (3H,s,H-6),2.09 (3H,s,H-3),1.40 (3H,t,J= 7.1 Hz,H-2′);13C NMR (151 MHz,CDCl3) δC:172.17 (C-7),163.18(C-2),158.01 (C-4),140.18 (C-6),110.53 (C-5),108.55 (C-3),105.28(C-1),61.22(C-1′),24.23(C-6),14.26(C-2′),7.67(C-3)。上述数据与文献[23]数据一致,最终化合物Ⅱ鉴定为2, 4−二羟基−3, 6−二甲基苯甲酸乙酯(Ethyl 2, 4-dihydroxy-3, 6-dimethylbenzoate)(图3b)。
化合物Ⅲ,无色油状液体,化合物Ⅲ的1H NMR (600 MHz,Acetone-d6) δH:5.71(1H, s,H-3),4.32 (2H,t,J = 6.2 Hz,H-6),2.42 (2H,t,J = 6.2 Hz,H-5),2.01(3H,s,H-7);13C NMR (151 MHz,Acetone-d6)δC:164.55 (C-2),159.51 (C-4),116.95 (C-3),66.64 (C-6),29.75 (C-5),22.87(C-7)。上述数据与参考文献[24]数据基本一致,所以化合物Ⅲ鉴定为4−甲苯−5, 6−二氢−2H−吡喃−2−酮(4-methyl-5, 6-dihydro-2H-pyran-2-one)(图3c)。
2.3 抗细菌活性
内生真菌Eef-10次生代谢产物对5种供试细菌的抑制活性如表1所示。其中化合物Ⅲ在供试浓度下对5种供试细菌的IC50均大于200 μg/mL;化合物Ⅱ对所有供试细菌的抑制活性均强于化合物Ⅰ,其中对桉树青枯病菌的抑制活性最强,其IC50为35.87 μg/mL,与阳性对照硫酸链霉素非常接近,其次是对黄瓜角斑病菌和番茄疮痂病菌的抑制活性,其IC50分别为38.91和 40.80 μg/mL,对大肠埃希菌和根癌土壤杆菌的抑制活性较弱;化合物Ⅰ对黄瓜角斑病菌的抑制活性最强,其IC50为67.25 μg/mL,其次是对番茄疮痂病菌的抑制活性,其IC50为93.59 μg/mL,而对其他供试细菌的IC50均大于100 μg/mL。
表 1 内生真菌Eef-10次生代谢产物的抗细菌活性Table 1. Antibacterial activities of the secondary metabolites isolated from endophytic fungus Eef-10供试样品
Tested sampleIC50/(μg·mL−1) 大肠埃希菌
Escherichia
coli根癌土壤杆菌
Agrobacterium
tumefaciens黄瓜角斑病菌
Pseudomonas
lachrymans桉树青枯病菌
Ralstonia
solanacearum番茄疮痂病菌
Xanthomonas
vesicatoria化合物Ⅰ Compound Ⅰ 130.55 ± 3.57 105.39 ± 4.52 67.25 ± 1.23 113.11 ± 3.58 93.59 ± 0.43 化合物Ⅱ Compound Ⅱ 48.52 ± 0.33 55.50 ± 1.61 38.91 ± 0.54 35.87 ± 0.18 40.80 ± 0.70 化合物Ⅲ Compound Ⅲ > 200 > 200 > 200 > 200 > 200 硫酸链霉素 Streptomycin sulfate 18.51 ± 0.46 5.10 ± 0.03 30.54 ± 0.89 33.07 ± 2.46 13.81 ± 1.62 2.4 抗肿瘤细胞活性
抗肿瘤细胞活性的测定结果如表2所示,通过GraphPad Prism 5拟合各化合物在各细胞株的生长抑制曲线计算其IC50,除化合物Ⅱ之外,其他化合物对2种肿瘤细胞的IC50均大于50 μg/mL;化合物Ⅱ对HeLa细胞的IC50大于50 μg/mL,但对Hep-G2的IC50仅为1.50 μg/mL,明显强于阳性对照喜树碱的3.6 μg/mL,表明化合物Ⅱ对Hep-G2肿瘤细胞具有较好的生长抑制作用。
表 2 内生真菌Eef-10次生代谢产物的抗肿瘤细胞活性Table 2. Antitumor activities of the secondary metabolites isolated from endophytic fungus Eef-10供试细胞Tested cell IC50/(μg·mL−1) 化合物Ⅰ
Compound Ⅰ化合物Ⅱ
Compound Ⅱ化合物Ⅲ
Compound Ⅲ喜树碱
CamptothecinHep-G2 > 50 1.50 > 50 3.6 HeLa > 50 > 50 > 50 6.3 3. 讨论与结论
本研究以分离和鉴定抗细菌和抗肿瘤的活性化合物为导向,从窿缘桉内生真菌Chaetomium sp. Eef-10中共分离出3个化合物,包括2个苯酚类和1个戊烯酸内酯类化合物。前人的研究表明,化合物Ⅰ(Atraric acid)是一种天然的雄激素受体拮抗剂,主要应用于前列腺癌的治疗[25-26],该化合物曾在地衣植物Parmotrema cooperi[27]、Lecidella carpathica[28]和Pseudevernia furfuracea[22]以及地钱植物Frullania brasiliensis[29]、非洲臀果木Pygeum africanum[23]和紫葳科植物Newbouldia laevis[30]中被发现和报道,而有关化合物Ⅱ的研究却很少,一般是作为Atraric acid衍生物的形式被报道,但化合物Ⅱ对雄激素受体的拮抗作用甚至略高于Atraric acid,亦可作为抗前列腺癌优先级的候选药物[31]。本研究中活性测定的结果显示,化合物Ⅱ表现出较好的抗细菌活性,其中对桉树青枯病菌的抑制活性最强,IC50为35.87 μg/mL,与阳性对照结果相当,且化合物Ⅱ对Hep-G2肿瘤细胞也具有较好的抑制作用,研究结果为寻找抗桉树青枯病菌天然微生物源活性药物提供了新的思路。
致谢:感谢华南农业大学农学院谢辉和徐春玲老师在内生真菌形态学鉴定方面提供的帮助!
-
图 1 不同检测波长下9种活性成分对照品和供试品溶液的高效液相色谱图
1:桃叶珊瑚苷,2:京尼平苷酸,3:原儿茶酸,4:绿原酸,5:松脂素二葡萄糖苷,6:芦丁,7:紫云英苷,8:槲皮素,9:山奈酚
Figure 1. The HPLC chromatogram of nine active compounds reference and test solutions at different detecting wavelengths
1: Aucubin, 2: Geniposidic acid, 3: Protocatechuic acid, 4: Chlorogenic acid, 5: Abietin diglucoside, 6: Rutin, 7: Astragalin, 8: Quercetin, 9: Kaempferol
图 2 15种氨基酸组分对照品和供试品溶液的色谱图
1:天冬氨酸,2:苏氨酸,3:丝氨酸,4:谷氨酸,5:甘氨酸,6:丙氨酸,7:缬氨酸,8:甲硫氨酸,9:异亮氨酸,10:亮氨酸,11:酪氨酸,12:苯丙氨酸,13:组氨酸,14:赖氨酸,15:脯氨酸
Figure 2. The chromatogram of 15 amino acids reference and test solutions
1: Asp, 2: Thr, 3: Ser, 4: Glu, 5: Gly, 6: Ala, 7: Val, 8: Met, 9: Ile, 10: Leu, 11: Tyr, 12: Phe, 13: His, 14: Lys, 15: Pro
表 1 13个杜仲良种及其主要优良特性
Table 1 The 13 improved varieties and their main excellent characteristics of Eucommia ulmoides
良种编号
Improved
variety code良种名称
Improved
variety name良种类别
Improved
variety type审(认)定编号
Approved/identified
number主要优良特性
Main excellent characteristic1 华仲5号 国审 国S-SV-EU-026-2012 雄花量大,雄蕊长度1.00~1.42 cm,盛花期单株雄花产量4.20~6.85 kg 2 华仲8号 国审 国S-SV-EU-027-2011 果皮橡胶质量分数17.00%~18.00%,种仁粗脂肪中α−亚麻酸质量分数62.50%~64.70%,高产稳产 3 华仲10号 国审 国S-SV-EU-008-2013 成熟果实千粒质量70.10~73.80 g,种仁粗脂肪中α−亚麻酸质量分数极高,达66.40%~68.10%,高产稳产 4 华仲11号 国审 国S-SV-EU-025-2019 叶小,叶长卵形,雄花花簇小,紧凑 5 华仲12号 国审 国S-SV-EU-016-2019 叶红色,叶绿原酸含量高 6 华仲13号 国审 国S-SV-EU-017-2019 树冠圆头形,冠型紧凑,分枝角度小,材质硬 7 华仲14号 国审 国S-SV-EU-026-2019 果实大,果实千粒质量105.00~121.00 g,果皮橡胶质量分数
16.00%~18.20%,种仁粗脂肪中α−亚麻酸质量分数61.00%~
63.20%8 华仲15号 省审 豫S-SV-EU-012-2021 叶光亮,呈卵圆形,在夏季枝条木质化后呈红色或浅红色 9 华仲23号 省审 豫S-SV-EU-020-2017 叶大,单株产叶量可达10.00 kg 10 华仲24号 省审 豫S-SV-EU-021-2017 叶紫红色,叶大,活性成分含量高 11 华仲25号 省审 豫S-SV-EU-008-2018 成熟果实千粒质量81.50 g,果皮橡胶质量分数17.00%~
17.80%,种仁粗脂肪中α−亚麻酸质量分数60.00%~62.00%12 华仲26号 国认 国R-SV-EU-009-2020 成熟果实千粒质量90.40 g,果皮橡胶质量分数16.20%~
16.80%,种仁粗脂肪中α−亚麻酸质量分数61.00%~63.00%13 华仲30号 省审 豫S-SV-EU-014-2019 成熟果实千粒质量94.10 g,果皮橡胶质量分数18.00%~
20.60%,种仁粗脂肪中α−亚麻酸质量分数65.20%~67.50%表 2 不同良种杜仲叶9种活性成分含量的多重比较1)
Table 2 Content multiple comparisons of nine active compounds in leaves of different Eucommia ulmoides improved varieties
w/(mg·g−1) 良种编号
Improved
variety code桃叶珊
瑚苷
Aucubin京尼平苷酸
Geniposidic
acid原儿茶酸
Protocatechuic
acid绿原酸
Chlorogenic
acid松脂素二葡萄糖苷
Abietin
diglucoside芦丁
Rutin紫云英苷
Astragalin槲皮素
Quercetin山奈酚
Kaempferol1 2.50±0.96e 6.29±1.36abc 0.34±0.07d 13.79±1.03de 0.92±0.05de 2.29±0.38de 0.66±0.08ef 0.12±0.01c 0.016±0.002ef 2 4.81±1.32bcd 4.64±1.10cde 0.29±0.02e 10.59±1.39f 0.70±0.09f 2.59±0.53cde 0.80±0.13de 0.12±0.02c 0.015±0.002ef 3 4.15±0.76cde 5.47±1.63abcde 0.47±0.05c 12.27±0.94ef 0.96±0.06bcd 1.67±0.15f 0.76±0.06ef 0.12±0.00c 0.014±0.002ef 4 4.11±1.31cde 5.79±1.80abcd 0.28±0.02e 21.09±0.90b 1.31±0.16a 1.59±0.18f 0.95±0.11cd 0.13±0.01c 0.019±0.002de 5 4.55±1.29bcd 3.54±0.48e 0.58±0.04b 20.56±1.04b 0.80±0.06ef 5.23±0.82a 0.78±0.05ef 0.39±0.09a 0.051±0.013a 6 3.03±1.12de 4.99±2.02cde 0.18±0.02f 15.22±2.43d 0.87±0.04de 2.76±0.36cd 0.67±0.05ef 0.12±0.01c 0.015±0.004ef 7 6.31±1.72ab 6.94±1.02ab 0.24±0.03e 11.86±1.04f 0.87±0.05de 1.97±0.28ef 0.63±0.14f 0.11±0.01c 0.011±0.001f 8 3.30±0.62de 4.07±0.71de 0.28±0.03e 13.88±1.90de 1.05±0.16bc 2.54±0.34cde 0.81±0.12de 0.11±0.00c 0.018±0.002de 9 3.32±1.18de 7.37±1.09a 0.19±0.02f 11.47±0.82f 0.68±0.06f 2.44±0.25cde 0.65±0.08ef 0.11±0.01c 0.013±0.001ef 10 5.78±1.83abc 4.67±0.80cde 0.98±0.08a 22.85±2.28a 1.27±0.14a 4.97±1.23a 1.82±0.17a 0.30±0.07b 0.026±0.002bc 11 3.69±1.30de 3.73±1.74e 0.35±0.06d 17.98±0.68c 1.08±0.23b 2.96±0.25bc 0.82±0.17de 0.13±0.01c 0.018±0.003de 12 5.90±1.84abc 4.00±1.58de 0.14±0.04fg 14.69±1.11d 0.78±0.07ef 3.41±0.37b 1.22±0.18b 0.14±0.01c 0.030±0.007b 13 6.96±2.10a 5.16±2.57bcde 0.12±0.01g 14.03±2.32de 0.95±0.11cd 3.41±0.37b 1.02±0.21c 0.13±0.01c 0.022±0.004cd 1) 同列数据后的不同小写字母表示在P < 0.01水平差异显著(Dunnett法)
1) Different lowercase letters in the same column indicate significant differences at P < 0.01 level (Dunnett method)表 3 不同良种杜仲叶氨基酸组分含量的多重比较
Table 3 Content multiple comparisons of 15 amino acids in leaves of different Eucommia ulmoides improved varieties
w/(mg·g−1) 良种编号1)
Improved
variety code天冬氨酸
Asp苏氨酸
Thr丝氨酸
Ser谷氨酸
Glu甘氨酸
Gly丙氨酸
Ala缬氨酸
Val甲硫氨酸
Met异亮氨酸
Ile1 14.11±0.72de 6.17±0.33ef 6.78±0.40de 9.07±0.54d 7.71±0.62c 8.57±0.71c 7.22±0.61c 3.67±0.78ab 5.65±0.56a 2 14.33±1.36cde 6.33±0.79def 6.93±0.61cde 10.01±1.03cd 9.36±1.13ab 9.78±1.35b 8.15±0.66bc 2.41±0.43c 5.90±0.42a 3 17.03±1.55a 8.09±0.87a 8.12±0.84a 12.23±0.98a 10.38±0.70a 11.46±0.71a 9.86±1.12a 3.18±0.83abc 6.67±0.22a 4 13.88±0.69e 5.88±0.40f 6.51±0.36e 9.06±0.60d 9.23±0.87ab 9.21±0.76bc 8.30±0.70bc 2.69±0.72bc 6.14±0.32a 5 14.96±1.52bcde 6.87±0.78cde 7.07±0.71bcde 10.22±1.72cd 9.68±0.94ab 9.70±1.20b 7.73±1.29bc 4.11±1.17a 6.18±1.25a 6 16.19±0.68ab 7.26±0.30abc 7.77±0.26abc 11.18±0.48abc 9.47±0.83ab 11.52±0.25a 8.31±0.97bc 4.11±1.01a 6.20±0.80a 7 15.17±1.28bcde 7.49±1.06abc 7.46±0.95abcd 10.18±1.05cd 7.46±0.75c 9.86±0.78b 7.71±1.10bc 3.66±1.27ab 6.25±0.87a 8 15.27±1.26bcde 7.09±0.59bcd 7.32±0.57abcde 10.07±0.79cd 9.06±0.98b 10.38±0.86b 8.82±0.75ab 3.30±0.44abc 6.46±0.51a 9 15.78±1.03abc 7.02±0.65cd 7.51±0.69abcd 11.95±0.60a 9.35±0.60ab 11.75±1.08a 8.07±0.49bc 4.19±1.33a 6.71±1.03a 10 15.82±1.67abc 7.45±0.77abc 7.55±0.74abcd 11.14±1.04abc 9.52±1.06ab 10.30±1.32b 8.37±1.48bc 3.05±0.93abc 5.98±0.64a 11 14.50±1.43cde 7.11±0.56bcd 6.87±0.72de 11.00±1.14abc 7.24±1.25c 10.22±0.59b 7.79±0.65bc 3.89±0.90ab 6.14±0.86a 12 15.59±0.81abcd 7.55±0.63abc 7.48±0.55abcd 10.49±0.75bc 9.37±0.70ab 9.71±0.76b 8.41±0.69bc 2.75±0.49bc 5.95±0.36a 13 16.24±0.95ab 7.93±0.46ab 7.81±0.60ab 11.65±0.86ab 9.15±0.70b 10.11±0.73b 8.44±1.10bc 3.34±0.73abc 6.69±0.43a 良种1)
Improved
variety亮氨酸
Leu酪氨酸
Tyr苯丙氨酸
Phe组氨酸
His赖氨酸
Lys脯氨酸
Pro必需氨基酸
EAA总氨基酸
TAA1 12.44±1.48e 7.94±1.11bcd 7.78±0.94c 4.31±0.39de 6.92±0.82c 7.13±0.81a 49.84±3.71c 115.45±5.54e 2 14.25±1.16bcd 6.91±0.57de 8.71±0.71bc 3.87±0.29e 6.97±0.66c 9.34±1.53a 52.72±3.74bc 123.24±9.69cde 3 16.93±0.61a 9.19±0.80ab 10.38±0.55a 5.09±0.46bcd 7.54±1.83c 9.32±0.96a 62.65±4.07a 145.47±9.50a 4 13.51±0.69bcde 6.47±0.65e 8.14±0.50bc 4.38±0.34de 8.23±1.18bc 8.97±5.73a 52.88±3.92bc 120.59±12.67de 5 13.83±1.53bcde 8.00±0.93bcd 8.54±0.75bc 4.31±0.49de 7.54±0.52c 8.65±1.33a 54.79±5.17bc 127.37±12.44bcde 6 14.56±1.35bcd 9.13±1.66ab 8.80±0.68bc 5.07±0.55bcd 8.39±0.38bc 10.97±2.15a 57.64±3.43ab 138.94±5.29ab 7 14.27±1.52bcd 8.10±1.53bcd 8.45±1.14bc 4.49±0.50cde 10.15±1.14a 7.59±0.66a 57.97±6.25ab 128.29±11.01bcde 8 14.83±1.07bc 8.00±0.82bcd 9.04±0.86b 4.65±0.55bcd 7.80±1.52c 8.94±1.42a 57.34±4.44ab 131.01±10.39bcd 9 13.22±0.96cde 9.57±1.25a 8.61±0.34bc 6.13±0.48a 7.27±0.82c 8.84±1.29a 55.09±3.58bc 135.97±8.57abc 10 14.41±2.00bcd 8.06±0.63bcd 9.18±1.30b 4.93±0.22bcd 8.19±1.34bc 9.23±0.10a 56.62±6.24b 133.17±12.20abcd 11 12.83±1.49de 8.43±1.34abc 7.94±0.77c 5.23±1.24bc 6.79±0.31c 7.36±1.44a 52.48±3.46bc 132.34±14.61abcd 12 14.50±0.86bcd 7.45±0.54cde 9.24±0.64b 4.74±0.36bcd 9.41±1.45ab 10.41±1.55a 57.80±3.74ab 133.04±7.51abcd 13 14.99±1.39b 7.87±0.69bcd 9.08±1.00b 5.32±0.90b 7.90±2.20bc 8.71±1.02a 58.36±4.99ab 135.22±7.41abc 1) 同列数据后的不同小写字母表示在P < 0.01水平差异显著(Dunnett法)
1) Different lowercase letters in the same column indicate significant differences at P < 0.01 level (Dunnett method)表 4 主成分分析的特征向量及贡献率1)
Table 4 Eigen vector and contribution ratio of principal component analysis
主成分 Principle factor PC1 PC2 PC3 PC4 PC5 特征值 Eigen value 82.503 17.182 5.326 1.864 1.702 特征向量
Eigen vector天冬氨酸 0.101 −0.008 0.049 0.043 0.055 苏氨酸 0.064 −0.005 0.065 −0.108 0.130 丝氨酸 0.048 −0.014 0.033 0.001 0.028 谷氨酸 0.102* −0.014 −0.106 −0.114 0.067 甘氨酸 0.060 0.045 0.107 0.129 −0.395* 丙氨酸 0.089 −0.026 −0.153 0.105 −0.022 缬氨酸 0.051 0.019 0.077 0.092 −0.214 甲硫氨酸 0.019 −0.024 −0.151 0.075 0.212 异亮氨酸 0.022 −0.005 −0.010 0.021 0.035 亮氨酸 0.103* −0.024 0.265 0.096 −0.291 酪氨酸 0.065 −0.059 −0.215 0.127 0.178 苯丙氨酸 0.063 −0.002 0.117 0.029 −0.175 组氨酸 0.040 −0.013 −0.127 0.037 0.174 赖氨酸 0.021 0.011 0.260 0.100 0.340 脯氨酸 0.066 0.028 0.089 0.024 −0.381 必需氨基酸 0.343* −0.030 0.623* 0.305 0.037 总氨基酸 0.901* 0.035 −0.278 −0.112 0.042 槲皮素 0.001 0.014 0.003 −0.013 −0.004 京尼平苷酸 −0.024 −0.154* 0.023 0.534* 0.392* 芦丁 0.014 0.105* −0.002 −0.428 −0.022 绿原酸 −0.022 0.973* −0.010 0.160 0.098 山奈酚 0 0.001 0.001 −0.001 0 松脂素二葡萄糖苷 0.025 0.055 −0.019 0.079 0 桃叶珊瑚苷 0.034 0.027 0.477* −0.534* 0.349 原儿茶酸 0.003 0.036 0.002 0.017 −0.008 紫云英苷 0.008 0.050 0.048 −0.040 0.005 贡献率/% Contribution ratio 74.00 15.410 4.780 1.670 1.530 1)“*”表示从每个主成分中遴选的评价指标
1) “*” indicates the evaluation index selected from each principal component表 5 不同良种杜仲叶的隶属函数分析及综合评价
Table 5 Membership function analysis and comprehensive evaluation of leaves in different Eucommia ulmoides improved varieties
良种
Improved varietyPC1 PC2 PC3 PC4 PC5 u1 u2 u3 u4 u5 D 排序
Ranking1 −1.944 −0.570 −0.584 0.693 0.026 0 0.229 0.409 0.696 0.441 0.075 13 2 −0.922 −1.107 0.362 −1.213 −1.735 0.264 0.009 0.719 0.073 0 0.239 12 3 1.925 −0.749 0.431 1.193 −0.946 1.000 0.156 0.742 0.860 0.197 0.839 1 4 −1.293 1.304 0.553 1.621 −0.273 0.168 1.000 0.781 1.000 0.366 0.347 11 5 −0.050 1.229 0.079 −0.637 −0.446 0.490 0.969 0.626 0.262 0.323 0.565 5 6 0.855 0.016 −1.030 0.403 −0.141 0.723 0.470 0.263 0.602 0.399 0.654 3 7 −0.398 −1.070 1.221 0.320 2.259 0.400 0.024 1.000 0.575 1.000 0.382 10 8 0.016 −0.165 0.301 0.448 −0.946 0.507 0.396 0.699 0.616 0.197 0.495 7 9 0.457 −1.128 −1.748 0.675 0.572 0.621 0 0.028 0.690 0.578 0.494 8 10 0.730 1.914 0.331 0.193 0.487 0.691 1.251 0.709 0.533 0.556 0.776 2 11 −0.156 0.706 −1.833 −1.437 0.536 0.462 0.754 0 0 0.569 0.479 9 12 0.260 −0.192 1.070 −1.048 −0.316 0.570 0.385 0.951 0.127 0.355 0.548 6 13 0.521 −0.188 0.847 −1.211 0.923 0.637 0.386 0.878 0.074 0.666 0.600 4 权重系数 Weight coefficient 0.760 0.158 0.049 0.017 0.016 -
[1] 孟益德, 杜红岩, 王璐, 等. 杜仲种质资源叶片表型性状多样性分析[J]. 林业科学研究, 2022, 35(5): 103-112. [2] 杜红岩, 胡文臻, 俞锐. 中国杜仲橡胶资源与产业发展报告(2013)[M]. 北京: 社会科学文献出版社, 2013. [3] 冯淼, 王超纯, 凌伟红, 等. 基于指纹图谱和化学模式识别评价杜仲叶质量[J]. 中草药, 2023, 54(9): 2931-2939. doi: 10.7501/j.issn.0253-2670.2023.09.026 [4] 中华人民共和国农业农村部. 中华人民共和国农业部公告: 第2045号[EB/OL]. (2013-12-30) [2023-06-26]. http://www.moa.gov.cn/nybgb/2014/dyq/201712/t20171219_6104350.htm. [5] 王一飞, 刘亚芳, 王书辉, 等. 杜仲叶药食同源研究进展[J]. 河南大学学报(医学版), 2018, 37(1): 65-68. [6] 陈进. 我国杜仲良种和杜仲植物新品种的整理与分析[J]. 浙江林业科技, 2021, 41(1): 103-107. doi: 10.3969/j.issn.1001-3776.2021.01.016 [7] 尚文博. 国家林草局发布2022年度林木良种名录[J]. 林业科技通讯, 2023(1): 17. [8] 付冬梅, 张子东, 张威鹏, 等. 变波长−梯度洗脱HPLC法同时测定杜仲的12种成分[J]. 现代食品科技, 2020, 36(10): 315-323. [9] 杜庆鑫, 刘攀峰, 魏艳秀, 等. 杜仲雄花氨基酸多样性及营养价值评价[J]. 天然产物研究与开发, 2016, 28(6): 889-897. [10] 王丽艳, 唐金敏, 郑桂萍, 等. 水稻萌发期和幼苗期耐低温指标体系构建及综合评价[J]. 中国农业科技导报, 2019, 21(10): 58-65. [11] 孙强, 郭永霞. 12个品种小米氨基酸含量测定及品质综合评价[J]. 食品与机械., 2022, 38(8): 34-39. [12] NISHIBE S, OIKAWA H, MITSUI-SAITOH K, et al. The differences of mechanisms in antihypertensive and anti-obesity effects of Eucommia leaf extract between rodents and humans[J]. Molecules, 2023, 28(4): 1964. doi: 10.3390/molecules28041964
[13] HIRATA T, IKEDA T, FUJIKAWA T, et al. The chemistry and bioactivity of Eucommia ulmoides Oliver leaves[M]//Studies in Natural Products Chemistry. Amsterdam: Elsevier, 2014, 41: 225-260.
[14] 国家药典委员会. 中国人民共和国药典(一部) [M]. 北京: 中国医药科技出版社, 2020. [15] 杨春霞, 黄丽莉, 朱培林, 等. 杜仲叶中3种主要活性成分的动态变化[J]. 南方林业科学, 2015, 43(1): 8-10. [16] 张前程. 杜仲叶中活性成分的积累规律及其提取物的制备[D]. 开封: 河南大学, 2015. [17] 周云雷, 郭婕, 王志宏, 等. HPLC法同时测定矮林杜仲叶中6种成分含量[J]. 中药材, 2015, 38(3): 540-543. [18] 苑子夜. 杜仲叶抗氧化性及主成分合成积累动态研究[D]. 杨凌: 西北农林科技大学, 2011. [19] 张鞍灵, 马亚团, 趙德义, 等. 杜仲叶次生代谢物季节和地域差异性研究[J]. 林产化学与工业, 2009, 29(5): 104-108. doi: 10.3321/j.issn:0253-2417.2009.05.020 [20] 兰济艳, 刘泽, 张芹, 等. 不同产地杜仲生长特性及叶中主要有效成分含量的差异与动态变化[J]. 河北农业大学学报, 2019, 42(1): 51-56. [21] 郑英, 周兰, 许亚玲, 等. 黔产杜仲叶不同采收期化学成分变化规律研究[J]. 世界最新医学信息文摘, 2018, 18(34): 27-29. [22] MENG Y, DU Q, DU H, et al. Analysis of chemotypes and their markers in leaves of core collections of Eucommia ulmoides using metabolomics[J]. Frontiers in Plant Science, 2023, 13: 1029907. doi: 10.3389/fpls.2022.1029907
[23] 王晓瑞, 王鋆坦, 朱海华, 等. 杜仲主要化学成分及保健作用与应用[J]. 食品安全质量检测学报, 2021, 12(6): 2292-2303. [24] 蒋剑春. 林源饲料和添加剂技术现状及展望[J]. 林产化学与工业, 2023, 43(1): 1-14. doi: 10.3969/j.issn.0253-2417.2023.01.001 [25] 那亚, 王宗礼, 孙启忠, 等. 草甸草原牧草青贮料氨基酸组成特点与营养价值研究[J]. 中国草地学报, 2014, 36(3): 84-89. [26] 耿伊雯, 宛涛, 蔡萍, 等. 北方野生罗布麻叶片氨基酸种类及含量分析[J]. 草原与草业, 2021, 33(2): 45-50. doi: 10.3969/j.issn.2095-5952.2021.02.010 [27] 翟晓巧, 曾辉, 刘艳萍, 等. 构树不同无性系间叶片营养成分及叶形的变化[J]. 东北林业大学学报, 2012, 40(11): 38-39. doi: 10.3969/j.issn.1000-5382.2012.11.010 -
期刊类型引用(3)
1. 黄淑容,杨玉婷,蔡腾,李嘉慧,叶春意,单体江. 柠檬香桃挥发油成分分析及杀线虫和抗细菌活性. 仲恺农业工程学院学报. 2023(04): 52-58 . 百度学术
2. 王伟,张怡荣,祝一鸣,冯莹,毛子翎,单体江. 不同桉树叶片、果实和枝条内生真菌群落组成及多样性分析. 仲恺农业工程学院学报. 2023(04): 32-39+44 . 百度学术
3. 李本超,梁艳,覃小芽,莫土香,徐照隆,李俊,杨瑞云. 广豆根内生真菌GDG-178代谢产物研究. 广西师范大学学报(自然科学版). 2021(02): 139-143 . 百度学术
其他类型引用(2)