Development and application of KASP marker for rice blast resistance gene Pi2
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摘要:目的
水稻稻瘟病抗性基因Pi2对稻瘟病生理小种具有广谱抗性，开发Pi2的KASP分子标记并对其评价，为抗稻瘟病水稻品种分子育种提供简便、可靠的基因分型检测方法。
方法利用593份自然群体中筛选出的不同抗性和亲缘关系的2份材料H-74和H-78，针对Pi2基因核心区域的SNP位点开发成KASP标记Pi2-C3。
结果利用标记Pi2-C3对自然群体中的84份材料进行KASP基因分型，结果表明，该标记可以准确地将不同水稻材料的Pi2位点分为抗病基因型、杂合基因型和感病基因型，是一种高效鉴定抗稻瘟病基因Pi2的方法。利用标记Pi2-C3对阳江市病圃材料进行检测，结合表型调查结果发现，检测到含有Pi2基因的46份材料均表现出不同程度的稻瘟病抗性，表明该标记可以用于检测材料在病圃的发病情况。
结论本研究采用KASP技术，开发了能准确检测Pi2基因的特异性分子标记Pi2-C3，并建立一套水稻Pi2基因的KASP基因分型体系，对提高抗性育种效率，改良抗稻瘟病水稻品种具有重要应用价值。
Abstract:ObjectiveThe rice blast resistance gene Pi2 has broad spectrum resistance to physiological race of rice blast. Developing and evaluating KASP molecular markers for Pi2 will provide a convenient and reliable gene typing method for molecular breeding of rice varieties with blast resistance.
MethodTwo materials H-74 and H-78 with different resistance and genetic relationships selected from 593 natural populations were used to develop KASP marker for the SNP sites in the core region of the Pi2 gene, named Pi2-C3.
ResultUsing the marker Pi2-C3, 84 materials from the natural population were genotyped, and the results showed that the Pi2-C3 marker accurately distinguished the Pi2 loci of different rice materials into resistant, heterozygous, and susceptible genotypes, which was an efficient method for identifying the blast-resistant gene Pi2. The marker Pi2-C3 was used to detect the materials in Yangjiang disease nursery. Combined with the phenotypic investigation, it was found that 46 materials containing Pi2 gene showed different degrees of rice blast resistance, which indicated that the marker could be used to detect the incidence of materials in disease nursery.
ConclusionThis study develops a specific molecular marker Pi2-C3 for accurately detecting the Pi2 gene using the KASP technology, and establishes a KASP genotyping system for rice Pi2 gene. It has important application value for improving the efficiency of resistance breeding and improving blast-resistant rice varieties.
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Keywords:
- Rice /
- Rice blast /
- Pi2 gene /
- KASP marker /
- Molecular marker /
- Resistance gene /
- Genotyping
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作为我国最主要的粮食作物之一，水稻稳产对保证国家社会稳定的重要性不言而喻，如何继续提高、挖掘水稻产量潜力仍是最重要的研究方向之一。近年来，随着我国城镇化和工业化的快速推进以及农村供给侧结构性改革，荒地复垦有限、农村劳动力转移、粮食种植效率低下等潜在问题也凸显出来。在这种情况下，提高水稻单产和稻田复种指数是确保我国粮食安全的有效途径。再生稻是一种利用收割后稻桩上存活的休眠芽，在适宜条件下萌发成蘖，进而成穗再收获一季的耕作模式。再生稻的历史十分悠久，在汉末郭义恭所著《广志》、张湛所著《养身要术》和明代徐光启所著《农政全书》中均有记载，俗称“抱孙谷”或“秧孙谷”[1]。四川农学院杨开渠教授是世界上最早研究再生稻的学者，于1937年开始对再生稻高产技术进行系统研究，为我国再生稻的发展和应用奠定了基础[2]。再生稻具有生育期短、日产量高、质量好、效益高、物料时间成本低等优点，适宜在光照、温度资源种植水稻一季有余而两季不足，以及“双改单”的南方稻区种植[3]。而且再生稻的产量能够持平甚至超过双季稻，显著高于单季稻[4]。由于减少了第二次播种插秧工序，节约大量人力物力的同时再生稻能够保证水稻产量与双季稻基本持平。农村劳动力大量转移以及双季稻种植面积逐渐减少的现状使得再生稻在生产上具有推广的意义。我国再生稻生产已取得较大发展，但仍有巨大的潜力，适宜推广种植的区域面积达 335 万hm2[5]。
再生稻头季和再生季都要求高产，但其易受环境和栽培条件影响，因此，再生稻育种难度大、育成品种少，且类型单一，现有品种主要由推广应用的品种筛选而来，远不能满足实际生产需求，急需再生力强、产量高、品质优、熟期短、抗倒伏、适于机收的综合性状优良的品种。因此，构建再生力遗传研究和评价体系，可为关键基因的挖掘与鉴定、提高育种效率提供保障。
目前再生稻分子机理方面的研究还处于初步探索阶段，再生稻形成机制研究进展较为缓慢，前人已报道一些影响水稻再生力的QTL位点，但具体的功能基因及其相关研究相对较少，再生稻分子生物学和生理学缺乏深入研究，制约了再生稻分子机理的研究，导致强再生力水稻品种选育缺乏可用的分子标记。因此对影响再生稻形成的功能基因克隆以及稳定的分子标记开发迫在眉睫。同时，对水稻再生力的评价标准也有部分研究，如何将其整合作为再生力评价体系，作为标准用于强再生力水稻新品种选育，也值得进一步分析研究。本文整理了目前已报道的水稻再生力相关QTL位点，分析了水稻再生力评价标准的现状，以期为强再生力水稻新品种的选育提供研究基础。
1. 再生稻相关QTL位点分析
研究人员使用双亲材料挖掘影响再生稻的QTL位点，找到了一些有功能的QTL位点，但具体功能基因报道较少。谭震波等[6]利用‘窄叶青8号’和‘京系17’杂交F1代花药离体培养，构建含有133个单株的双单倍体群体，以每株稻桩单个茎秆的平均再生苗数作为衡量再生力的指标进行再生力QTL定位，总共得到6个影响再生能力的QTL位点(Ra3a、Ra4a、Ra5a、Ra6a、Ra6b、Ra7a)，其中，Ra6a和Ra6b来源于‘窄叶青8号’，能够提高再生能力，其余4个QTL位点(Ra3a、Ra4a、Ra5a、Ra7a)来源于‘京系17’，会降低再生能力。郑景生等 [7]利用‘明恢86’和‘佳辐占’构建含有300个单株的F2群体，定位了1个提高水稻再生力(再生穗数)的QTL、1个提高再生产量的QTL和2个提高产量构成的QTL，分别位于1号(qsNP，贡献率13.6%)和7号染色体(qPN，贡献率8.0%；qGY，贡献率7.9%；qSS，贡献率9.6%)，均来源于‘明恢86’，其中，位于7号染色体的qPN、qGY、qSS遗传距离较近，可能存在基因连锁。杨川航等 [8]利用‘糯89-1’与‘蜀恢527’构建了含有169个家系的重组自交系群体，并对多个性状进行了QTL检测，其中，影响水稻再生季7个农艺性状的QTL位点有19个，影响水稻再生力(最终再生率)的QTL位点有2个(qRa4、qRa5)，分别位于4号和5号染色体上，分别来源于‘糯89-1’和‘蜀恢527’，贡献率分别为 8.17%和 7.09%，其中，qRa4能够提高再生力，qRa5则降低再生力。杨莉等 [9]利用‘日本晴’和‘泸恢99’构建了含有188个家系的重组自交系群体，对7个农艺性状进行了QTL检测，共定位到20个QTL位点，其中有3个影响水稻再生力的QTL位点，分别位于7号和8号染色体，贡献率仅为3.40%~5.39%，其中，位于7号染色体的位点降低再生力，2个位于8号染色体的位点可提高再生力。Ji等[10]利用普通野生稻‘W1944’与‘Hwayeong’构建的含有126个家系的渗入系，在5号染色体上找到1个提高再生力的主效QTL位点qRAT5，但由于定位区间较大且精细定位群体仅有14个单株，RAT5的具体功能基因未能找到。李兴星等[11]利用‘热粳35’与‘协B’构建了包含226个单株的F2群体，在不同发育时期对单株穗数、再生穗数和再生后期穗数进行了QTL定位，获得2个再生穗数QTL位点qRa8和qRa11，贡献率分别为23.35%和16.01%；2个再生后期穗数QTL位点qLsr11与qLsr12，贡献率分别为12.18%和25.12%。Hu等 [12]利用‘明恢63’与‘02428’构建的渗入系群体，对9个与再生力相关的性状进行统计，包括头季和再生季的分蘖数、每株穗数、单株产量以及两季分蘖数比、每株穗数比、单株产量比，共获得22个QTL位点，贡献率为3.26%~18.63%，其中，qRA5显著降低了头季的分蘖数、每株穗数以及两季单株产量比，显著提高了两季分蘖数比与两季每株穗数比，通过精细定位确定qRA5区间大小为311.16 kb，包含47个候选基因。He等[13]前期在‘佳辐占’与‘恢1586’构建的NIL群体中发现1个再生力低于‘佳辐占’的家系NIL128，通过图位克隆的方式将其定位于2号染色体，测序发现定位区间内的LOC_Os02g51930在NIL128中存在1个单碱基的替换导致多肽链合成提前终止，将其命名为qRA2，并通过基因敲除的方法验证了其降低了背景亲本‘佳辐占’的再生力。在不影响主要农艺性状的同时，qRA2提高了水稻再生力，具有重要应用价值。
已报道的大部分再生稻相关QTL位点集中在4、5、6、7、8、11号染色体上，且都是微效QTL位点，这可能是因为定位群体均由双亲材料构建，群体基因变异不足。且这些位点的具体功能基因报道有限。再生稻形成的分子机理研究进程远远落后于水稻生产需求，因此对影响再生稻的主效QTL挖掘、主效基因克隆以及后续的功能研究十分必要。
前期我们观察了影响再生稻发育最重要的水稻器官——腋芽的生长发育，并对不同时期的腋芽进行了蛋白质组学分析。观察‘汕优63’的腋芽发育时发现，在母茎抽穗前，不同节间的腋芽从下往上逐步缓慢分化，准备形成新穗；在母茎抽穗之后，则是从上往下快速分化，且顶部的腋芽发育显著快于其他节间的。随后对‘汕优63’不同时期的再生稻腋芽进行蛋白质组学分析。分析筛选获得表达水平变化较大的蛋白9846个，上调和下调表达的蛋白分别为5268和4578个。这些蛋白质研究主要有3个方面，包括生理过程、细胞组分和分子功能。通过多种手段分析，发现与油菜素内酯(Brassin lactone，BR)合成相关的4个蛋白积累量显著上升[14]。通过qRT-PCR对8个参与类固醇生物合成/脂肪酸生物合成和酪氨酸代谢的编码差异表达蛋白的基因进行检测，发现黄熟期后这8个基因的表达均下调；有7个基因在再生力强的水稻品种‘汕优63’中表达高于再生力弱的水稻品种‘珍汕97B’；BGIOSGA007157编码萜烯环化酶，参与BR信号传导，与蛋白质组学分析结果吻合，因此BR很可能是参与再生稻腋芽萌发过程的重要激素。
2. 再生力鉴定及评价指标
水稻再生力鉴定方法和评价指标已有诸多研究，但研究手段、试验材料差异、栽培技术及环境条件的不同，导致再生力评价指标存在争议。例如，对于头季稻桩茎秆相关表型，Ichii等[15]认为头季稻桩茎秆的粗壮程度可以作为评价再生力的特性指标。而Garcia等[16]认为，水稻茎秆性状易受栽培、自然环境等外部因素影响，表型不稳定，不适宜作为鉴定再生力的指标。谭震波等[6]、杨川航等[8]、林强等[17]研究表明，头季稻有效穗数与再生季产量呈显著或极显著负相关关系。任天举等[18]研究指出，头季稻有效穗数相对较少的品种更适宜作为再生稻品种。林文雄等[19]研究指出，头季分蘖力中等但再生力较强的重穗型杂交籼稻品种，再生季更容易高产。但也有研究指出，较多有效穗数是强再生力水稻品种的特征之一[20-24]。李贵勇等[25]研究表明，头季稻有效穗数增加有利于提高再生季水稻产量。刘永胜等[26]研究也发现，有效穗数与亚种间杂交稻的再生季产量的直接效应达极显著水平。这些研究结果说明再生稻的评价鉴定体系仍然存在争议。
徐富贤等[27]以25和18个杂交中籼迟熟组合为材料，从头季稻与再生力密切相关的若干性状中选择最高苗期单株分蘖数、齐穗期单穗颖花数、单位颖花的茎鞘干物质量占有量、绿叶干物质量占有量和再生芽出鞘率，构建其与再生稻产量的关系模型，最终发现分蘖数(前期)、齐穗期单位颖花茎鞘干物质量占有量(中期)和头季稻收后的稻桩再生芽出鞘率(后期)与再生季产量显著相关，准确率高达86.05%~93.02%，可据此在头季对水稻品种的再生力进行预测，可操作性强。
随着农业生产机械水平不断提高，以及农村劳动力短缺，轻简化机收低留桩再生稻成为发展趋势[19]，再生稻获得高产的关键在于品种选择[1]。头季稻穗的灌浆期正是再生稻穗的1、2次枝梗分化和颖花分化期，存在养分供求矛盾，造成再生稻穗小粒少[28]。结合再生稻穗发育的特点，在轻简化栽培方式下，再生稻的增产主要依靠提高有效穗数，因此促进腋芽的萌发成苗是再生稻高产增产的关键。此外再生稻穗茎比与产量及其构成因素也具有很强的关联性，有效穗数和穗茎比对再生稻产量起决定作用，头季大穗重穗和再生季多穗的品种，有助于发挥颖花量和库容量优势，易获高产。有效穗数多、穗茎比大，热能利用率、日产量和产量较高。穗茎比作为鉴定再生力的关键指标，预测再生季产量的平均精度超过90%[29]。
根据这一情况我们研究了轻简化栽培再生稻的关键筛选指标，发现轻简化栽培方式下再生稻的增产因素是有效穗数，促进腋芽的萌发成苗是再生稻高产增产的关键。前期头季稻的SPAD衰减指数、中期再生稻的再生芽出鞘率，以及收获后期的日产量和热量利用率与再生稻产量呈极显著正相关，三者构建的产量模型预测精度较高[30]；其中，2周和1周再生芽出鞘率的决定系数均达60%以上，是决定再生力的关键因子。我们以再生芽出鞘率为再生力指标，对8个恢复系的再生力进行分级，并以此构建了一系列水稻杂交组合，进行了强再生力恢复系材料的筛选与创制，最终获得3个产量高、农艺性状协调、米质优、抗稻瘟病、花粉量大、花期长、恢复力强、生育期较为一致的强再生力试验材料[31]。这些研究说明以再生芽出鞘率预测水稻再生季产量具有可行性，可为适宜再生稻新品种的筛选提供参考。
3. 强再生力再生稻推广与留桩高度
我们自2000年始开展强再生力水稻新品种的选育、筛选及高产栽培示范片区建设工作，育成众多再生稻新品种，在福建省尤溪县连续 23年高产示范种植中，头季单产平均 12.41 t/hm2，再生季平均单产 7.24 t/hm2，两季最高总产 21.70 t/hm2，取得了良好的示范效应，为再生稻在福建省的推广种植奠定了基础[3, 32-40]。各地先后利用当地的主栽品种进行再生稻种植，并根据种植情况总结了适应不同品种的栽培措施，包括播期管理、密植程度、水肥措施、病害防治、头季收获时间、留桩高度等[41-43]。其中，留桩高度直接决定了再生稻的腋芽数量，与再生季的产量直接相关[44-48]。前期我们以192份水稻品种为研究对象，分别在头季收获后进行了高留桩(40 cm)和低留桩(5 cm)处理，研究水稻再生力与品种及留桩高度的关系，研究表明，不同品种的再生力受留桩高度的影响程度各异，粳稻品种在低留桩处理下、籼稻品种在高留桩处理下，再生芽出鞘率相对较高[43]。此外有研究表明，低留桩母茎上可利用的健壮腋芽相应减少，可利用促发成苗的概率明显降低；而25 cm以上的高留桩虽然母茎上的腋芽较多，但营养供给不足以支撑多芽萌发，导致穗多、粒少、产量下降。同时，稻桩节位越高节间距越长，各节位萌芽出苗时间延长，导致成熟期拉长、成熟一致性较差，最终导致产量不高；留桩25 cm能保证3个节芽的利用，从而获得最高产量[49-50]。高留桩的再生稻的糙米率、精米率、整精米率、透明度明显较好，加工品质明显优于低留桩的[51-53]。
4. 总结与展望
随着劳动力短缺问题日益严重，水稻种植物料成本不断增加，继续挖掘水稻产量潜力，是保障我国粮食安全的研究方向之一。再生稻能够充分利用光照、温度资源，提高复种指数，对保障粮食安全具有重要意义，具有良好的推广前景。再生腋芽萌发能力是保证再生稻产量的关键因素。然而，强再生力水稻种质资源较为缺乏，再生稻相关的分子研究还处于起步阶段。虽然前人已发现一些影响再生力的QTL位点，但使用的材料多是双亲材料，遗传变异较少，且具体的功能基因及分子机制研究报道较少，缺乏可开发利用的分子标记，生产上综合性状优良的强再生力水稻品种不多，推广应用面积不大，再生稻品种的培育任重而道远。
挖掘调控再生稻腋芽萌发的关键基因，解析再生稻分蘖产生的分子机理，对选育再生力强的水稻品种具有重要的理论指导意义。研究者应结合各类组学以及全基因组关联分析等手段，获得影响水稻再生力的功能基因，深入研究其分子机理；同时开发可用的分子标记，结合水稻再生力评价体系，筛选强再生力水稻新品种。聚焦优质、高产、抗病等水稻重要性状，将表型与基因鉴定相结合，筛选可用于育种的优异材料，利用多组学分析挖掘复杂数量性状新基因及优异自然变异，开发功能分子标记，将全基因组关联分析与分子模块育种技术相结合，开展强再生力水稻种质资源精准鉴定、新基因发掘、种质创新和新品种选育研究。
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图 1 系统进化树及差异SNP位点分析
A：593份材料系统进化树（Ⅰ~Ⅶ：分布密度不同的7个部分）；B：593份材料在Pi2抗性位点核心区域的差异SNP及其碱基分布情况；C：H-74和H-78材料在Pi2抗性位点核心区域差异SNP位点分布(黄色竖线区域表示两者差异SNP位点分布情况)
Figure 1. Phylogenetic tree and analysis of different SNP sites
A: Phylogenetic tree of 593 materials (Ⅰ−Ⅶ: Seven parts with different distribution density); B: Distributions of different SNPs and their bases in the core region of the Pi2 resistance locus for the 593 materials; C: Distribution of different SNP sites in the core region of the Pi2 resistance locus for H-74 and H-78 materials (The yellow vertical line area indicates the distribution of SNP sites that are different between them)
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图 2 Pi2基因差异位点序列比对
a：H-74材料，b：包含Pi2基因的材料，c：H-78材料，d、e：确定没有Pi2基因的材料；1和2表示材料的2个重复
Figure 2. Sequence alignment analysis of the different sites of Pi2 gene
a: Material H-74, b: Material containing Pi2 gene, c: Material H-78, d and e: Material without Pi2 gene; 1 and 2 represent two repetitions of the material
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图 3 KASP引物基因分型效果
A~E对应的引物分别为Pi2-C1、Pi2-C2、Pi2-C3、Pi2-C4、Pi2-C5
Figure 3. Genotyping effects of KASP primers
Primers corresponding to A−E are Pi2-C1, Pi2-C2, Pi2-C3, Pi2-C4 and Pi2-C5 respectively
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图 4 对照KASP基因分型结果
A~E对应的引物分别为Pi2-C1、Pi2-C2、Pi2-C3、Pi2-C4、Pi2-C5
Figure 4. KASP genotyping results for control samples
Primers corresponding to A−E are Pi2-C1, Pi2-C2, Pi2-C3, Pi2-C4 and Pi2-C5 respectively
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图 5 利用引物Pi2-C3增加PCR循环数后KASP基因分型结果
Figure 5. KASP genotyping results after increasing PCR cycles by primer Pi2-C3
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图 6 84个田间材料Pi2-C3 KASP分子标记的验证
A：Pi2 KASP基因分型检测结果；B：SSR标记检测结果(Marker位于胶图中央，大小为2 000 bp，a、 c、 d区域中相应位置片段大小与b区域标示相同)
Figure 6. Verification of Pi2-C3 KASP molecular marker for 84 field samples
A: KASP genotype detection results for Pi2; B: SSR marker detection results (marker is located in the center of the rubber map, with the size of 2 000 bp, and the corresponding fragment sizes in areas a, c and d are the same as that in area b)
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图 7 593份材料中部分材料KASP基因分型结果
A：Pi2基因KASP基因分型结果；B：Pi2基因KASP基因分型与实际基因型比对分析
Figure 7. KASP genotyping results of partial materials of the 593 materials
A: KASP genotyping results for Pi2 gene; B: Comparison analysis between Pi2 gene KASP genotyping and actual genotype
表 1 测序引物
Table 1 Sequencing primers
引物
名称
Primer
name序列(5′→3′)
Sequence预期片段
大小/bp
Expected
fragment sizePi2-F1 AAGCCTATGATTGGTTTCT 2 098 Pi2-R1 ACTGCCCTTCTTATTGTTC Pi2-F2 AACAATAAGAAGGGCAGTC 1 516 Pi2-R2 GAGGAGGAGATGAAATAGAAT Pi2-F3 AAGGTGGTGGTGCAAGTAC 258 Pi2-R3 CAATGTTATGGCATCGTTC 
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表 2 KASP引物
Table 2 KASP primers
引物名称
Primer name检测位点
Detection site序列(5′→3′)
SequencePi2-C1-F1 A GAAGGTGACCAAGTTCATGCTCAGGTGTCAGAATGGGAGAAATTCTATGAACAA Pi2-C1-F2 C GAAGGTCGGAGTCAACGGATTCAGGTGTCAGAATGGGAGAAATTCTATGAACAC Pi2-C1-R A/C TGTCCTTAGTAGGGGAGGAGG Pi2-C2-F1 C GAAGGTGACCAAGTTCATGCTGTATGATTCAACGATCAAGAGTGGGCAC Pi2-C2-F2 T GAAGGTCGGAGTCAACGGATTAGTTATGTATTTAAAACACAGCATGGT Pi2-C2-R C/T CCTGTCTCGAGATTGAAACTGTG Pi2-C3-F1 T GAAGGTGACCAAGTTCATGCTCATGGGAGTATGTCCTGCAAAACT Pi2-C3-F2 A GAAGGTCGGAGTCAACGGATTCATGGGAGTATGTCCTGCAAAACA Pi2-C3-R T/A CAAACTGCATGTGCTAGACTCTTGGGTC Pi2-C4-F1 G GAAGGTGACCAAGTTCATGCTCATTGGTAAACTACAGGGCCTACAG Pi2-C4-F2 A GAAGGTCGGAGTCAACGGATTCATTGGTAAACTACAGGGCCTACAA Pi2-C4-R G/A CACTTGGTAGTGCTGCAATGTATGTGCTC Pi2-C5-F1 A GAAGGTGACCAAGTTCATGCTCAATGTCTGCATACTCTTCGTTGTATAA Pi2-C5-F2 G GAAGGTCGGAGTCAACGGATTCAATGTCTGCATACTCTTCGTTGTATAG Pi2-C5-R A/G AGGCATATTGTGTTAGTTATGCACTTCATTGGGTG
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表 3 广东阳江病圃材料Pi2基因检测结果及抗性评价
Table 3 Pi2 gene detection results and resistance evaluation of materials from the Yangjiang disease nursery in Guangdong
编号
NumberPi2基因检测
Pi2 gene detection抗性评价
Resistance evaluation编号
NumberPi2基因检测
Pi2 gene detection抗性评价
Resistance evaluationJ-201 − 中感 J-217 + 抗 J-202 + 抗 J-218 + 抗 J-203 + 抗 J-219 − 抗 J-204 + 抗 J-220 + 中抗 J-205 + 抗 J-221 − 中抗 J-206 − 抗 J-222 − 中抗 J-207 + 抗 J-223 − 中抗 J-208 + 抗 J-224 + 抗 J-209 + 高抗 J-225 + 抗 J-210 + 高抗 J-226 − 中抗 J-211 + 抗 J-227 − 中抗 J-212 − 中感 J-228 − 中感 J-213 + 抗 J-229 − 中抗 J-214 − 抗 J-230 − 中抗 J-215 + 抗 J-231 − 中抗 J-216 + 高抗 J-232 − 中感 J-233 + 抗 J-259 + 高抗 J-234 + 抗 J-260 + 高抗 J-235 − 抗 J-261 + 抗 J-236 + 高抗 J-262 + 高抗 J-237 + 高抗 J-263 − 中感 J-238 + 中抗 J-264 − 高感 J-239 − 中抗 J-265 + 高抗 J-240 + 抗 J-266 − 高感 J-241 + 高抗 J-267 − 高感 J-242 − 高感 J-268 + 抗 J-243 + 抗 J-269 + 抗 J-244 − 感病 J-270 + 抗 J-245 + 中抗 J-271 − 抗 J-246 + 抗 J-272 + 抗 J-247 − 高感 J-273 + 抗 J-248 − 中抗 J-274 + 高抗 J-249 + 抗 J-275 − 抗 J-250 + 中抗 J-276 − 中抗 J-251 − 抗 J-277 − 中抗 J-252 + 高抗 J-278 − 感病 J-253 + 高抗 J-279 − 感病 J-254 − 中抗 J-280 − 感病 J-255 + 高抗 J-281 − 中抗 J-256 + 高抗 J-282 − 感病 J-257 + 高抗 J-283 + 抗 J-258 − 抗 J-284 − 感病
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百度学术
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