The different regulatory effect of glycoproteins from virulent and attenuated strain of rabies virus on type I interferon signaling pathway
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摘要:目的
狂犬病(Rabies)是由狂犬病病毒(Rabies virus,RABV)引起的一种高致死性人兽共患传染病。I型干扰素(IFN-I)通路在抵抗RABV感染中发挥重要作用。RABV可通过磷蛋白及核蛋白的功能逃逸IFN-I的抗病毒作用,本研究旨在探讨对RABV的致病性有重要影响的糖蛋白(Glycoprotein,G)在调节IFN-I通路方面扮演怎样的角色。
方法将RABV弱毒株Hep-Flury的G基因替换成致病株CVS-11的G基因,拯救得到重组病毒HepG,分析Hep-Flury、CVS-11和HepG这3种毒株在体内和体外感染对IFN-I通路激活和调控的差别,比较它们在神经细胞中对抗IFN-I抗病毒作用的差异性。
结果替换了CVS-11的G基因后,重组病毒HepG致病力增强,能够100%致死小鼠,在鼠脑中的增殖水平显著高于亲本株Hep-Flury。在感染鼠脑早期及体外神经细胞时,弱毒株Hep-Flury能够较快地激活IFN-I通路相关基因的表达,重组病毒HepG的激活能力介于Hep-Flury和CVS-11之间。利用Poly(I:C)激活神经细胞的IFN-I通路后,Hep-Flury的增殖被显著抑制,CVS-11和HepG的复制几乎不受影响,表现出一定的抵抗能力。
结论RABV的G蛋白在调节和抵抗IFN-I通路方面发挥重要功能,为进一步探究RABV致病毒株的G蛋白如何协助病毒在中枢神经系统中逃逸IFN-I提供了线索和依据。
Abstract:ObjectiveRabies is a highly lethal zoonotic infectious disease caused by rabies virus (RABV). Type I interferon (IFN-I) pathway plays an important role in resisting RABV infection. RABV can escape the antiviral effect of IFN-I through the function of its phosphoprotein and nucleoprotein. The aim of the study was to investigate the role of glycoprotein (G), which has an important impact on the pathogenicity of RABV, in regulating IFN-I pathway needs more comprehensive exploration.
MethodThis study replaced the G gene of the RABV attenuated strain Hep-Flury with the G gene of the pathogenic strain CVS-11 to rescue and acquire the recombinant virus HepG. We analyzed the differences in the activation and regulation of IFN-I pathway in vivo and in vitro infected with Hep-Flury, CVS-11 and HepG, and compared the differences of these virus strains in fighting against antiviral effect of IFN-I in nerve cells.
ResultAfter replacing G gene, the recombinant virus HepG had enhanced pathogenicity, was able to kill 100% of mice and the proliferation level in the mouse brain was significantly higher than that of the parental strain Hep-Flury. While infecting mouse brain early and in vitro neuronal cells, the attenuated strain Hep-Flury was able to activate the expression of IFN-I pathway-related genes faster, and the activation ability of HepG was between that of Hep-Flury and CVS-11. After activation of the IFN-I pathway in neuronal cells using Poly(I:C), the proliferation of Hep-Flury was significantly inhibited, and the replication of CVS-11 and HepG was almost unaffected, showing some resistance.
ConclusionG protein of RABV plays an important role in regulating and resisting the IFN-I pathway, providing the clue and evidence for further exploring how the G protein of RABV pathogenic strains helps the virus escape IFN-I pathway in the central nervous system.
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Keywords:
- Rabies /
- Rabies virus /
- Type I interferon /
- Glycoprotein /
- Immune evasion
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抗生素是指由微生物或者动植物在生命过程中产生的、可以对其他细胞正常生命活动产生干扰的化学物质[1]。抗生素不仅可以应用于人和动植物体疾病的防治,也可以作为动物饲养中的生长促进剂。被机体吸收的抗生素只有小部分存在于机体组织中;大部分以初始母体或代谢产物的形式随粪尿排出体外,并最终直接或间接进入环境[2-3]。兽用抗生素排入环境,对水质和食品安全具有极大的风险,若不及时处理,会对人类的生存环境产生很大的影响。据统计,我国近年抗生素产量和使用量逐年增加,如2010年我国抗生素生产总量为18.5万t,国内消耗11.8万t;而2013年的抗生素生产总量达到了24.8万t,国内消耗16.2万t。大环内酯类、β−内酰胺类、氟喹诺酮类、四环素类和磺胺类分别占总量的26%、21%、17%、7%和5%。由于抗生素的滥用,在多种介质中可以检测到抗生素的存在,如鸡蛋、作物、土壤和生活用水等,对人体健康、土壤肥效、植物生长、微生物多样性和生态安全等方面造成潜在的威胁[4-5]。抗生素进入到环境后,首先会直接对水环境造成影响,长期饮用含有抗生素的水源会影响人体的免疫系统,降低机体免疫力,对人类健康产生危害。
目前,去除或降低污水中抗生素的方法主要有微生物降解[6]、非生物降解及吸附(ICPB及吸附材料)[7-8]、植物修复[9-10]、人工湿地[11-13]等方法。其中,植物修复和人工湿地技术早已被广泛应用于污染物去除,如用东南景天Sedum alfredii与甜玉米套种轮作可以显著降低土壤中重金属镉和铅含量[14];陈静雅等[15]研究表明,垂直潜流人工湿地对抗生素污染严重的河水中氮、磷去除效果最佳,对总氮(TN)、氨氮(NH4+−N)、总磷(TP)和磷酸盐(PO43−−P)的平均去除率分别为37.6%、51.6%、54.1%和41.4%。由于不同植物对不同污染物具有不同的去除效果,因此在人工湿地的应用与研究中,择优选取植物对去除污水中的有毒有害污染物至关重要。研究表明在人工湿地系统中,有植物种植的人工湿地对抗生素的去除能力显著高于无植物种植的人工湿地,主要原因是植物根系能吸附、吸收水体中抗生素,并且根系分泌物也可以降解抗生素[16];杨登等[17]研究表明,生物塘−人工湿地工艺可以利用系统的植物和基质降低污水中Cd含量,去除率最高可达35.8%;陈小洁等[18]在水培试验中用水生植物大漂Pistia stratiotes和凤眼莲Eichhornia crassipes去除水样中多种抗生素,结果表明大漂和凤眼莲对抗生素污染的水体表现出了不同程度的修复功能,其中,凤眼莲对盐酸四环素的去除效率高于90%;Liang等[19]研究发现,水生植物芦苇Phragmites australis、香蒲Typha orientalis、香根草Vetiveria zizanioides和美人蕉Canna indica对人工湿地中的磺胺甲恶唑去除率无显著差异,约为73%。
本研究根据某规模化养猪场兽药的实际使用情况,选取常用的兽药抗生素阿莫西林、盐酸多西环素和氟苯尼考作为污染物,选取4种常用人工湿地植物在不同浓度抗生素条件下进行水培试验,以寻找具有较优抗生素去除效率的水生植物,为人工湿地等工程应用提供理论参考。
1. 材料与方法
1.1 材料
供试抗生素:盐酸多西环素、氟苯尼考和阿莫西林,均在我国养殖业和医疗事业中应用较为广泛。其中,盐酸多环素属于四环素类抗生素,分子式C22H25N2O8Cl,相对分子质量512.93;氟苯尼考属于氯霉素类抗生素,分子式C12H14Cl2FNO4S,相对分子质量358.20;阿莫西林属于β−内酰胺类类抗生素,分子式C16H25N3O8S,相对分子质量419.46。
供试植物:皇竹草Pennisetum hydridum、风车草Pontderia cordata、美人蕉和梭鱼草Cyperus alternifolius,采自华南农业大学校园内,均为生长状态良好的植株,同种类型植株的株高、叶片数和叶片大小基本一致。
1.2 试验装置
水培试验采用高60.0 cm、上部直径34.5 cm、底部直径26.0 cm的开口塑料桶,用穿孔聚氯乙烯泡沫塑料做盖板,外围用铝箔纸包裹,以防光解。每桶植株3棵,用海绵把供试植物固定于塑料盖板,根系自然悬垂在溶液中,保持24 h连续通气。先用1/2 Hogland营养液培养植物3 d,之后改为完全Hogland营养液,并加入不同质量浓度的盐酸多西环素、氟苯尼考和阿莫西林,每种抗生素质量浓度分别为0(对照)、0.1、1.0、10.0、100.0、500.0和1 000.0 μg/L,每个质量浓度设置3个重复。水培试验在华南农业大学温室进行,光照16 h、黑暗8 h,30 ℃水培7和14 d。
1.3 测定项目与方法
1.3.1 株高测量
水培试验14 d后,观察并利用直尺测量供试植物株高。
1.3.2 叶绿素含量测定
参考王磊等[20]的方法。取供试植物中部幼嫩叶片,用剪刀去除叶脉后剪成0.2 cm左右宽的细丝混合均匀,称取0.10~0.20 g细丝放入25 mL比色管中。在比色管中加入浸提混合液(丙酮与无水乙醇以体积比2∶1混合)10 mL,并将黏附在管壁的碎叶片冲洗到浸提液中,盖上瓶塞黑暗浸提24 h,其间摇动4~5次;次日待叶片细丝组织已全部变白(表明叶绿素已浸提干净)后用浸提液定容至25 mL,25 ℃、1 2 000 r/min离心5 min,收集上清液后在波长645和663 nm下测定光密度(D),以浸提混合液为空白对照。按下式计算植物叶片叶绿素含量(wT):
$$ \begin{array}{l} \;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;{w_{\rm{a}}} = 12.72{D_{{\rm{663}}\;{\rm{nm}}}} - 2.59{D_{{\rm{645}}\;{\rm{nm}}}}\text{,}\\ \;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;{w_{\rm{b}}} = 22.88{D_{{\rm{645}}\;{\rm{nm}}}} - 4.67{D_{{\rm{663}}\;{\rm{nm}}}}\text{,}\\ {w_{\rm{T}}} = {w_{\rm{a}}} + {w_{\rm{b}}} = 20.29{D_{{\rm{645}}\;{\rm{nm}}}} + 8.05{D_{{\rm{663}}\;{\rm{nm}}}}\text{,} \end{array} $$ 式中,wa和wb分别为叶绿素a和叶绿素b含量。
1.3.3 水体抗生素浓度测定
在试验进行0、7和14 d后收集各处理水样,于4 ℃条件下储存。将收集的水样,与0.1 mol/L的EDTA−Mcllvaine缓冲液按体积比1∶1混合并振荡5 min后,避光超声萃取30 min,4 ℃、10 000 r/min离心10 min,收集上清液。上清液过HLB固相萃取小柱(Waters Oasis,3 mL,60 mg;过柱前预先用5.0 mL分析纯甲醇活化HLB小柱),滤液以5 mL/min的速度过柱,待其完全流出后,用6 mL超纯水冲洗固相萃取小柱,室温干燥15 min,待水分蒸发完全后,用1/5样品体积的分析纯甲醇进行洗脱,洗脱液过0.22 μm的滤膜,并置−20 ℃冰箱待测。高效液相色谱-串联质谱(HPLC-MS)分析水体中抗生素浓度。按下式计算抗生素去除率:
$$ {\text{去除率}}= \left( {{\rho _{_0}} - \rho } \right)/{\rho _{_0}} \times 100{\text{%}} \text{,} $$ 式中,ρ0为抗生素起始质量浓度,ρ为水培试验后抗生素残留的质量浓度。
1.4 数据处理
采用Microsoft Excel进行统计分析,作图软件为Sigma Plot 12.0,方差分析软件为SPSS Statistics2.1,应用Duncan’s多重比较对不同处理进行显著性检测。
2. 结果与分析
2.1 抗生素对植物株高的影响
由表1可知,随着水培液中抗生素质量浓度的增加,供试植物都呈现出类似的生长趋势:低质量浓度(0~0.1 μg/L)胁迫时,植株生长没有明显变化;中等质量浓度(1.0~100.0 μg/L)胁迫时,促进植物生长;高质量浓度(>100.0 μg/L)胁迫时,抑制植株生长。风车草在1.0~100.0 μg/L阿莫西林和氟苯尼考胁迫下促进植株生长,其中,10.0 μg/L阿莫西林对风车草的促生作用最为明显,比对照高6.4%;而氟苯尼考则是在10.0和100.0 μg/L时对植株的促生作用最为明显,均比对照高约7.5%;抗生素质量浓度高于100.0 μg/L时,质量浓度与株高呈负相关。风车草在10.0 μg/L盐酸多西环素胁迫下促进植株生长,株高比对照高5.2%。其他3种水培植物也呈现类似结果,美人蕉在10.0 μg/L的阿莫西林和盐酸多西环素及100.0 μg/L氟苯尼考胁迫下生长最佳,梭鱼草则在100.0 μg/L的阿莫西林、盐酸多西环素和10 μg/L氟苯尼考胁迫下株高最高,优于其他处理。皇竹草株高在1.0 μg/L的阿莫西林胁迫下最高,以及在100.0 μg/L氟苯尼考或盐酸多西环素胁迫下最高。
表 1 水培14 d后不同抗生素种类及浓度对水培植物株高的影响1)Table 1. Effects of different antibiotics and concentrations on plant height at 14 days after hydroponich/cm ρ(抗生素)/
(μg·L−1)
Antibiotics content阿莫西林
Amoxicillin氟苯尼考
Florfenicol盐酸多西环素
Doxycycline hydrochloride风车草
Cyperus
alternifolius美人蕉
Canna
indica梭鱼草
Pontderia
cordata皇竹草
Pennisetum
hydridum风车草
Cyperus
alternifolius美人蕉
Canna
indica梭鱼草
Pontderia
cordata皇竹草
Pennisetum
hydridum风车草
Cyperus
alternifolius美人蕉
Canna
indica梭鱼草
Pontderia
cordata皇竹草
Pennisetum
hydridum0 51.20c 49.30c 50.20d 53.60bc 51.30c 49.30d 50.10d 53.10d 51.80cd 49.10de 50.10d 53.40d 0.1 50.97d 49.40c 50.37d 53.53c 51.93c 50.10cd 50.73d 53.57d 51.83cd 49.27cd 50.03d 53.63cd 1.0 51.90c 50.13b 51.10c 55.00a 53.07b 50.77c 52.17c 55.57c 52.73bc 50.40bc 50.93c 55.37b 10.0 54.47a 53.30a 51.87b 54.57a 55.10b 52.07b 55.33a 56.20b 54.50a 52.60a 51.53b 55.23b 100.0 53.17b 49.40c 52.50a 52.67d 55.17a 53.20a 53.47b 58.80a 49.80d 52.50a 53.57a 56.63a 500.0 48.83e 45.93d 49.63e 51.73e 47.47d 46.80e 41.20e 50.83e 49.07e 48.20ef 49.33d 51.27d 1 000.0 41.37f 42.63e 42.37f 42.80f 43.33e 43.47f 36.80f 46.70f 47.77f 46.27g 45.20e 47.20e 1)同列数据后不同小写字母表示处理间差异显著(Duncan’s法,P<0.05)
1)Different lowercase letters in the same column indicated significant difference(Duncan’s test, P<0.05)2.2 抗生素对植物叶绿素含量的影响
从图1可以得出,不同浓度抗生素胁迫下供试植物叶绿素含量与株高呈现类似的相关性,中低浓度胁迫会增加植株叶绿素含量,而高浓度胁迫则会降低植株叶绿素含量,抑制植物生长。在10.0 μg/L阿莫西林胁迫下,供试植株叶绿素含量达到最高,显著高于空白对照;而在1 000.0 μg/L阿莫西林胁迫时,叶绿素含量显著降低,对植株的危害作用达到最大。在氟苯尼考和盐酸多西环素胁迫下,植株叶绿素含量与阿莫西林胁迫结果类似,但是皇竹草在100.0 μg/L抗生素胁迫条件下叶绿素含量最高。
2.3 不同植物对水体中抗生素去除的影响
由表2可以看出,3种抗生素在7和14 d无植株处理会有轻微水解,浓度越高,水解效率越低。不同植物对水培液中的抗生素具有一定的去除能力,且随着培养时间的推移,去除率也逐渐增大。处理后7 d,皇竹草和美人蕉对100.0 μg/L阿莫西林的去除效果很接近,分别为44.0%和41.0%;对于氟苯尼考的去除效果而言,皇竹草是最佳供选植物,去除率为49.4%;美人蕉对盐酸多西环素的去除效果最好,去除率达到48.3%。处理后14 d,皇竹草和美人蕉对100.0 μg/L阿莫西林和氟苯尼考的去除率接近,分别为55.0%、54.0%和56.2%、54.7%。对100.0 μg/L的盐酸多西环素去除率最佳的植物是美人蕉,去除率是48.3%。上述结果表明,对100.0 μg/L抗生素去除率最好的供试植株是皇竹草和美人蕉;对10.0 μg/L的阿莫西林、氟苯尼考和盐酸多西环素去除率最高的供试植物分别是美人蕉、皇竹草和美人蕉。
表 2 不同处理水培7和14 d后水培液中抗生素残留量1)Table 2. Antibiotic residues in hydroponic solution of different plants at 7 and 14 days after different treatmentsρ(抗生素)残留/(μg·L−1) 抗生素
Antibioticρ(抗生素)/
(μg·L−1) Antibiotic content7 d 14 d 空白
CK皇竹草
Pennisetum hydridum风车草
Cyperus alternifolius梭鱼草
Pontderia cordata美人蕉
Canna indica空白
CK皇竹草
Pennisetum hydridum风车草
Cyperus alternifolius梭鱼草
Pontderia cordata美人蕉
Canna indica阿莫西林
Amoxicillin0.1 0.09a 0.07b 0.09b 0.08b 0.08b 0.09a 0.06c 0.08c 0.07c 0.07c 1.0 0.95a 0.66b 0.85b 0.83b 0.07b 0.91a 0.56c 0.76c 0.71c 0.60c 10.0 9.71a 5.93b 6.30b 7.60b 6.47b 9.25a 5.00c 5.13c 6.33c 5.13c 100.0 96.58a 56.00b 62.00b 65.67b 59.00b 93.15a 45.00c 50.00c 53.00c 46.00b 500.0 484.22a 286.33b 331.33b 375.33b 290.00b 422.31a 265.33b 301.33b 355.00b 266.00c 1 000.0 968.74a 664.00b 724.33b 821.00b 696.33b 944.15a 634.67c 681.00b 786.00c 659.33c 氟苯尼考
Florfenicol0.1 0.08a 0.09b 0.09b 0.09b 0.07b 0.08a 0.08a 0.08a 0.09b 0.05b 1.0 0.91a 0.75b 0.83b 0.86b 0.80b 0.82a 0.70b 0.75b 0.81b 0.69c 10.0 9.11a 6.40b 7.57b 7.27b 6.58b 8.37a 5.10c 6.63c 6.20c 5.77c 100.0 95.16a 50.60b 67.30b 59.80b 55.40b 91.55a 43.80c 59.70c 48.10c 45.30c 500.0 493.59a 395.30b 382.00b 323.30b 360.87b 481.33a 365.00b 342.00c 306.00b 338.00b 1 000.0 974.58a 849.70b 824.70b 805.70c 777.00b 954.32a 791.30c 760.00b 774.00c 745.70b 盐酸多西环素
Doxycycline hydrochloride0.1 0.09a 0.09b 0.09b 0.09b 0.08b 0.08a 0.08c 0.81c 0.08c 0.07c 1.0 0.96a 0.80b 0.84b 0.84b 0.73b 0.94a 0.71c 0.79c 0.74c 0.64c 10.0 9.83a 6.00b 7.70b 7.47b 5.90b 9.51a 5.00c 6.97c 6.50c 5.40b 100.0 98.77a 60.00b 64.00b 63.50b 51.70b 95.54a 47.30c 56.30c 57.00c 45.00c 500.0 487.52a 332.30b 384.00b 358.70b 314.70b 473.22a 315.30b 357.00b 327.30c 285.70c 1 000.0 974.31a 795.70b 788.70b 794.00b 754.00b 949.36a 770.00c 716.30c 766.30c 708.30c 1)相同时间、同行数据后不同小写字母表示处理间差异显著(Duncan’s法,P<0.05)
1)Different lowercase letters in the same row and at the same time indicated significant difference(Duncan’s test, P<0.05)3. 讨论与结论
近年来由于兽药抗生素的广泛应用和滥用,其排入环境后对水质、食品安全和生态安全都具有很大的风险,兽药抗生素的暴露与儿童超重或肥胖也有明显的联系[21]。为了去除畜禽养殖废水中兽药抗生素,寻求降低地表水环境中兽药抗生素的方法,本研究选取常用的人工湿地植物皇竹草、风车草、美人蕉和梭鱼草在不同浓度抗生素条件下进行水培试验。
3.1 抗生素在水体中可自然轻微降解
不同浓度抗生素无植物处理的水样,抗生素浓度都会有轻微的降低,无植物处理1 000 μg/L阿莫西林,7和14 d后分别降低至968和944 μg/L,这表明在无光照处理下抗生素会自然轻微水解。抗生素的自然水解中含有部分微生物降解,如冷一非[22]用四环素驯化土壤后,分离得到的嗜麦芽窄食假单胞菌Stenotrophomonas maltophilia DT1具有降解四环素能力,降解能力高达50%以上;此外,环境中也存在具有降解抗生素能力的真菌,如Huang等[8]发现酵母菌Trichosporon mycotoxinivorans XPY-10具有降解四环素类抗生素能力。但在自然水体环境中,靠抗生素的轻微自然水解显然不足以达到消除抗生素污染的目的。
3.2 水体中抗生素对植物生长的影响
本研究水培试验中,4种植物在不同浓度抗生素胁迫下表现出不同的生长趋势和抗生素去除率:风车草在盐酸多西环素胁迫下,低浓度胁迫对植株生长无影响;在氟苯尼考和阿莫西林胁迫下,低浓度均促进植株生长作用,在高浓度处理条件下对植株具有抑制生长作用;美人蕉、梭鱼草和皇竹草在低浓度的盐酸多西环素、氟苯尼考和阿莫西林处理条件下均可以促进植株生长,而高浓度则抑制植株生长。Boxall等[23]研究表明,胡萝卜Daucus carota和莴笋Lactuca sativa L. var. angustanaIrish在苯丁唑啉、土霉素和恩诺沙星抗生素胁迫下生长受到抑制,而同等浓度的阿莫西林和氟苯尼考对胡萝卜和莴笋生长没有明显影响。Luo等[24]研究表明,低浓度的抗生素处理植物可以提高植株的根系活力,为正常生长的根部细胞提供更好的生理基础,从而提高代谢速率、缓解低浓度抗生素胁迫危害。这是因为高浓度抗生素胁迫后,根系活力受抑制而影响植物固氮能力,干扰植物根系固氮结构;并且原生质形成和叶酸合成受到抑制,从而影响谷胱甘肽转移酶和一系列抗氧化系统酶的合成表达,致使大量的氧自由基无法清除而氧化损伤植物体细胞,导致植物生长受到抑制,表现出毒害效应[25]。
3.3 植物对水体抗生素去除的效果和机理
皇竹草对阿莫西林的去除效果最佳,美人蕉的去除效果弱于皇竹草,但是优于其他2种植物。4种水生植物对氟苯尼考的去除效果中,100.0和1 000.0 μg/L处理7 d后,美人蕉的去除效果最佳,显著优于其他3种植物,500.0 μg/L处理梭鱼草的去除效果优于其他植物。4种植物在盐酸多西环素胁迫下,美人蕉的去除效果相对最佳;比较不同植物对抗生素的去除率发现,在盐酸多西环素胁迫下,美人蕉在100.0 μg/L胁迫下去除率最高,达到55.0%;在氟苯尼考胁迫下,皇竹草在100.0 μg/L胁迫下去除效率最高,达到56.2%,;在阿莫西林胁迫下,皇竹草和美人蕉在100.0 μg/L胁迫下去除效率相近且最高,分别达到53.5%和54.0%。这可能是因为相比于其他2种植物,美人蕉和皇竹草的植物组织器官较为发达,根系较为粗壮且具有许多发达的不定根,从而能够更好地适应和耐受严峻的抗生素环境,生物代谢活性也更高,所以去除抗生素的效果也更明显。
研究表明,美人蕉在去除大环内酯类抗生素物质时,其主要的去除机制是美人蕉的根系活动,如根系吸收和根系微生物去除[26]。此外,梭鱼草在多种抗生素(氨甲酰氮草、氧氟沙星和罗红霉素)胁迫条件下,通过提高自身的抗氧化酶系统的解毒能力以抵抗抗生素的胁迫,从而维持自身的光合作用达到缓解胁迫作用[16]。抗生素进入环境后,首先带来的影响是环境微生物多样性受到抑制,抗生素耐受菌和降解菌丰度增加。Liao等[27]研究表明,金霉素驯化土壤后微生物结构发生变化,多样性降低,而芽孢杆菌属Bacillus Cohn和假单胞菌属Pseudomonas丰度增加,抗生素浓度也随之降低。当植物受到抗生素胁迫后,植物可以直接或者间接缓解环境中的胁迫,其中抗生素的去除有可能是部分抗生素被植物吸收,在植株体内代谢分解或者贮存于植物组织中。Chung等[28]利用萝卜Raphanus sativus吸收土壤中兽药残留(金霉素、氟诺沙星和大环内酯),从而降低环境中抗生素浓度,缓解抗生素带来的危害。本研究水培液中抗生素浓度降低后,微生物受到的胁迫程度随之降低,对毒性的耐受能力和解毒能力随之增强,对抗生素的去除效果也明显提高。而湿地植物对抗生素环境的耐受性很可能取决于其根系发达程度,根系越发达,分泌的根系分泌物就越多,从而更好地缓解抗生素的胁迫和改善周围的根际环境,降低外界环境毒性。
3.4 结论
Leng等[6]发现在自然水体中抗生素污染水平都小于15 μg/L,而四环素类抗生素污染水平相对较高,达到44~255 μg/L。本研究考虑现实中的污染程度,在10.0 μg/L阿莫西林胁迫下,皇竹草的去除率最高,均接近50.0%;10.0 μg/L阿莫西林胁迫下,风车草的去除率是48.7%,接近皇竹草的去除效果。在实际应用中,应根据水体中不同浓度抗生素残留量,选择不同的水生植物以达到最佳的去除效果;普通污染水体中(如普通江河)选择皇竹草作为优选植物去除污染水体中抗生素;在养殖场附近的池塘或者人工湿地由于受污染较为严重,建议选用美人蕉或者皇竹草;对于四环素类使用较多的饲养场附近水体,优选美人蕉作为第一修复植物。
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图 9 RABV感染Neuro-2a细胞对IFN-I通路上游基因表达的影响
“*”“**”“***”分别表示在 P<0.05、 P<0.01、 P<0.001水平差异显著(t检验)
Figure 9. Effect of RABV infection on expression of upstream genes of IFN-I pathway in Neuro-2a cells
“*”, “**” and “***” indicate significant differences at P <0.05, P <0.01 and P <0.001 levels, respectively (t test)
图 10 RABV感染Neuro-2a细胞对IFN-I通路下游基因表达的影响
“*”“**”“***”分别表示在 P<0.05、 P<0.01、 P<0.001水平差异显著(t检验)
Figure 10. Effect of RABV infection on expression of downstream genes of IFN-I pathway in Neuro-2a cells
“*”, “**” and “***” indicate significant differences at P <0.05, P <0.01 and P <0.001 levels, respectively (t test)
图 11 Poly(I:C)处理体外神经细胞对RABV复制的影响
“*”表示相同RABV毒株感染Poly(I:C)处理和未处理细胞在P<0.05水平差异显著(t检验)
Figure 11. Effect of Poly(I:C) treatment on the replication of RABV for in vitro nerve cells
“*” indicates significant differences between Poly(I:C) treated and untreated cells infected with the same RABV strain at P<0.05 level (t test)
表 1 HepG构建的引物序列
Table 1 Primer sequences for construction of HepG
基因片段
Gene segment引物序列(5′→3′)
Primer sequenceHEP-L F: AGGCCGGTCATCCTTTTGACACCTCAAGTCCAGA R: ATTTTAGCATGTACAGGCTTTCATTAATGTCCGGC HEP-C F: GCCTGTACATGCTAAAATTCTTGTAYGATGCATCTTG R: CTTTCCTTAAGTCTTTTGAGGGATGTTAATAGTTTT CVS-G F: CAAAAGACTTAAGGAAAGATGGTTCCTCAGGTTCTT R: CAAAAGGATGACCGGCCTTCACAGTCTGATCTCACCT 表 2 RT-qPCR检测引物
Table 2 Primers used for RT-qPCR
基因
Gene上游引物序列(5′→3′)
Forward primer sequence下游引物序列(5′→3′)
Reverse primer sequenceRABV genome GACAGCGTCAATTGCAAAGCAAAAAT GGGTACTTGTACTCATATTGATCCACGAT N GCACTGGCAGATGACGGAAC TCGGCGAATGAGTTTGGACG Leader RNA TGTAGGGGTGTTACATTTTT ACGCTTAACAACAAAACC Cxcl10 TCCATATCGATGACGGGCCA CAACACGTGGGCAGGATAGG Dhx58 CCAGAGCACACACATGACCC CCATAGCGCACCACCACATT IFN-α4 AGCCTGTGTGATGCAGGAACC CAGCAAGTTGGTTGAGGAAGAG IFN-κ TGGAGTTGGGCAAGTATTTCTTC GGACTTGGAAAATATAATGAAACATCTTC IFN-β ACCTACAGGGCGGACTTCAA ACACTGTCTGCTGGTGGAGT IFN-γ TCAGCAACAGCAAGGCGAAA ATTGAATGCTTGGCGCTGGA IL6 TGCCTTCTTGGGACTGATGC GACAGGTCTGTTGGGAGTGGT IRF3 TCAGGATCCCGTGGAAGCAT TGACACGTCCGGCTTATCCT IRF7 ACTGGCTATTGGGGAGGTC ACGACCGAAATGCTTCCAGG ISG15 GACGCAGACTGTAGACACGC TTAGGCCATACTCCCCCAGC MDA5 GAGCACCTACGCACTTTCCC CCACCGTCGTAGCGATAAGC MyD88 TCATGTTCTCCATACCCTTGGT AAACTGCGAGTGGGGTCAG RIG-I CCTTGATTGCCCTGATGTTG ATTTCTCCCTGTCCCTCCAA RNF125 GGCGCACATAAGGACCTGTG TCATCCAGTTCCCGCTGACA TLR3 GTGAGATACAACGTAGCTGACTG TCCTGCATCCAAGATAGCAAGT TLR7 TCTTTGGGTTTCGATGGTTTCC GCAGTCCACGATCACATGGG TLR9 ATGGTTCTCCGTCGAAGGACT GAGGCTTCAGCTCACAGGG GAPDH AGAGTGTTTCCTCGTCCCGT CTGTGCCGTTGAATTTGCCG -
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