• 《中国科学引文数据库(CSCD)》来源期刊
  • 中国科技期刊引证报告(核心版)期刊
  • 《中文核心期刊要目总览》核心期刊
  • RCCSE中国核心学术期刊

CRISPR/Cas系统对金黄色葡萄球菌耐药及毒力基因的影响

谢龙飞, 肖丹瑜, 常依, 张旭财, 李小申, 熊文广

谢龙飞, 肖丹瑜, 常依, 等. CRISPR/Cas系统对金黄色葡萄球菌耐药及毒力基因的影响[J]. 华南农业大学学报, 2023, 44(2): 179-186. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202111024
引用本文: 谢龙飞, 肖丹瑜, 常依, 等. CRISPR/Cas系统对金黄色葡萄球菌耐药及毒力基因的影响[J]. 华南农业大学学报, 2023, 44(2): 179-186. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202111024
XIE Longfei, XIAO Danyu, CHANG Yi, et al. Effect of CRISPR/Cas system on drug resistance and virulence genes of Staphylococcus aureus[J]. Journal of South China Agricultural University, 2023, 44(2): 179-186. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202111024
Citation: XIE Longfei, XIAO Danyu, CHANG Yi, et al. Effect of CRISPR/Cas system on drug resistance and virulence genes of Staphylococcus aureus[J]. Journal of South China Agricultural University, 2023, 44(2): 179-186. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202111024

CRISPR/Cas系统对金黄色葡萄球菌耐药及毒力基因的影响

基金项目: 广东省基础与应用基础研究基金 (2020A1515010917);广东省珠江人才计划本土创新科研团队项目 (2019BT02N054)
详细信息
    作者简介:

    谢龙飞,硕士研究生,主要从事畜禽病原菌耐药性传播机制研究,E-mail: 2911922454@stu.scau.edu.cn

    通讯作者:

    熊文广,副教授,博士,主要从事畜禽病原菌耐药性传播机制与控制研究,E-mail: xiongwg@scau.edu.cn

  • 中图分类号: S852;S859

Effect of CRISPR/Cas system on drug resistance and virulence genes of Staphylococcus aureus

  • 摘要:
    目的 

    了解金黄色葡萄球菌(以下简称“金葡菌”) Staphylococcus aureus中成簇的规律间隔短回文重复序列(Clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)的分布情况,分析其对抗生素耐药基因和毒力基因水平转移的影响。

    方法 

    从公共数据库获取组装完整的金葡菌基因组575个,利用生物信息学方法,统计CRISPR结构的携带情况,菌株多位点序列分型(Multi-locus sequence typing,MLST)型别分布和菌株耐药基因、毒力基因的分布情况;对CRISPR结构阳性(CRISPR+)和CRISPR结构阴性(CRISPR−)的金葡菌耐药基因和毒力基因携带数目进行差异显著性分析。同时对实验室60株金葡菌二代测序数据进行分析,验证公共数据库分析结果。对实验室60株金葡菌中原噬菌体、接合质粒的携带情况进行统计,讨论CRISPR结构对菌株原噬菌体和接合质粒的影响。

    结果 

    基因组组装完整的575株金葡菌中,有62株携带CRISPR结构(CRISPR+),513株不携带CRISPR结构(CRISPR−);CRISPR+金葡球菌携带耐药基因、毒力基因的数目显著小于CRISPR− 金葡菌。实验室60株金葡菌中,有14株为CRISPR+,46株为CRISPR−;CRISPR+金葡菌携带更少的耐药基因和毒力基因,与公共数据库分析结果一致。对原噬菌体和接合质粒的分析结果显示,CRISPR−菌株携带更多的原噬菌体序列,与CRISPR+菌株之间差异显著(P<0.05);接合质粒方面,CRISPR−和CRISPR+菌株无显著性差异。

    结论 

    CRISPR结构可能限制了金葡菌中耐药基因和毒力基因的水平转移,CRISPR−菌株更容易受到噬菌体和可移动质粒的干扰。本研究为进一步研究金葡菌耐药基因和毒力基因的传播提供了参考。

    Abstract:
    Objective 

    To understand the distribution of clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) in Staphylococcus aureus and analyze their effects on the horizontal transfer of antibiotic resistance gene and virulence gene.

    Method 

    Total 575 complete S. aureus genomes were obtained from public databases, and bioinformatics methods were used to count the CRISPR carriage, multi-locus sequence typing (MLST) types distribution of strains and the distribution of strain drug resistance genes and virulence genes. The significance analysis of the difference in the number of drug resistance genes and virulence genes was carried out between CRISPR structure-positive (CRISPR+) and CRISPR structure-negative (CRISPR−)S. aureus. The data of 60 strains of S. aureus were also analyzed by second-generation sequencing to verify the results of public database analysis. We also counted the carriage of prophages and conjugative plasmids in 60 strains of S. aureus in the laboratory, and discussed the effect of CRISPR structure on the prophages and conjugative plasmids of the strains.

    Result 

    Among the 575 strains with complete genome assembly, there were 62 strains with CRISPR structure (CRISPR+) and 513 strains without (CRISPR−). The number of drug resistance genes and virulence genes of CRISPR+S. aureus was less than that of CRISPR−S. aureus, and the difference was significant. Among 60 strains of S. aureus in the laboratory, there were 14 strains of CRISPR+ and 46 strains of CRISPR−. CRISPR+S. aureus carried fewer drug resistance genes and virulence genes, which was consistent with the results of the public database analysis. Analysis of prophages and conjugative plasmids showed that CRISPR− strains carried more prophage sequences, which were significantly different from CRISPR+ strains (P<0.05). For conjugative plasmids, CRISPR− and CRISPR+ strains were largely consistent with no significant difference.

    Conclusion 

    CRISPR structure may limit the horizontal transfer of drug resistance and virulence genes in S. aureus, and CRISPR− strains are more susceptible to be interfered by phage and removable plasmids. This study provides a reference for further research on transmission of drug resistance and virulence genes inS. aureus.

  • 金黄色葡萄球菌(以下简称“金葡菌”)Staphylococcus aureus是一种革兰阳性球菌,可引起肺和皮肤组织感染,甚至危及生命。作为一种机会致病菌,金葡菌已成为外科手术感染及医疗器械污染中最常见的病原体[1-3]。近年来,随着抗生素的大量使用,金葡菌耐药性逐渐增强,耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(Methicillin-resistant Staphylococcus aureus,MRSA)的出现引起了全球的广泛关注。有研究表明,金葡菌可通过噬菌体、质粒、转座子及葡萄球菌盒式染色体(Staphylococcal cassette chromosome mec,SCCmec)等方式进行耐药基因的水平转移[4-6]mecA作为MRSA菌株携带的耐药基因,已有研究表明mecA主要通过SCCmec元件进行水平转移[7-8]

    SCCmec是一种具有高度多样性的移动遗传因子。1999年首次测定了1982年分离的日本金葡菌N315菌株的mec整体结构及DNA序列。1年后,mecDNA被发现是由2个位点特异性重组酶基因ccrAccrB驱动的新基因元件,命名为SCCmec[9]SCCmec (SCC家族的主要成员)是一种携带mec基因(mecA、mecBmecC)以及控制其表达的基因mecR1(编码信号转导蛋白mecR1)和mecI(编码抑制蛋白mecI)的移动遗传元件,并作为葡萄球菌菌株间基因信息交换的载体。SCCmec位于葡萄球菌染色体复制起点附近,插入在插入位点attB (orfX的3'端)。SCCmec有3个基本的遗传因素:ccr基因复合体(由ccrABccrC及其周围的ORFs组成)、mec基因复合体(由mec基因、插入序列和周围的ORFs组成)和连接区(J区)。在ccr基因复合体中,通过ccrABccrC位点特异性重组,可以将多个耐药和耐重金属基因插入SCCmec中,SCCmec可通过ccrABccrC的精确切除和整合,整合到葡萄球菌菌株的染色体上;因此,不同的葡萄球菌菌株交换遗传信息,以适应不同的环境和抗生素选择的压力[10]SCCmec编码一种新的特异性青霉素结合蛋白(PBP2a),与金葡菌内源性青霉素结合蛋白相比,PBP2a与β–内酰胺的结合亲和力降低,导致抗生素失活。与其他对β–内酰胺类抗生素的抑制机制不同,MRSA还能够通过PBP2a持续合成独特的细胞壁成分。由于获得了SCCmec元件,甲氧西林敏感金葡菌(Methicillin-sensitive Staphylococcus aureus,MSSA)进化为MRSA[11]。根据各类型SCCmec在J区域的差异,将SCCmec分为不同的型和亚型。III型SCCmec在巴西、波兰、伊朗、土耳其、马来西亚、泰国、中国和中国台湾等国家或地区为主要检出类型[12]。本研究通过对实验室60株二代测序金葡菌基因组序列SCCmec元件进行比对分析,发现CRISPR阳性(CRISPR+)和CRISPR阴性(CRISPR−)不同菌株中都携带SCCmec元件,SCCmec元件的主要类型为III型,另外有1株为VIII型,1株为XII型,与报道结果一致。

    成簇的规律间隔短回文重复序列(Clustered regularly interspaced short palindromic repeats, CRISPR)是存在于原核生物中的一种适应性免疫系统。有研究表明,约50%的细菌携带CRISPR/Cas系统[13]。它能够靶向切割核酸序列,从而抵御噬菌体、质粒等外源基因的入侵,保持细菌自身遗传结构的稳定[14]。CRISPR/Cas系统能否限制细菌耐药基因和毒力基因的水平转移,目前还没有明确的结论。Marraffini等[15]发现表皮葡萄球菌RP62a菌株的CRISPR/Cas系统可以阻止质粒的结合转移。张蒙蒙等[16]发现葡萄球菌中CRISPR/Cas系统可以限制mecA等耐药基因的转移。目前,金葡菌中CRISPR/Cas系统对细菌耐药基因和毒力基因的影响还不清楚。本研究以NCBI数据库575株金葡菌的基因组序列为研究对象,探讨CRISPR结构对其耐药基因和毒力基因的影响,并通过对实验室分离菌株二代测序基因组序列进行分析,做进一步验证。

    575株金葡菌基因组序列下载自NCBI数据库( https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/genomes/154),60株金葡菌基因组为本研究前期临床分离菌株的二代测序数据。

    通过CRISPRs finder ( https://crispr.i2bc.paris-saclay.fr/Server/)在线进行,统计具有CRISPR位点的金葡菌,将金葡菌基因组分为CRISPR+和CRISPR− 2大类。

    对575株金葡菌通过Center for Genomic Epidemiology在线网站( http://www.genomicepidemiology.org/)进行多位点序列分型(Multi-locus sequence typing,MLST),构建系统发育树。对CRISPR+和CRISPR−菌株ST型别进行韦恩图的绘制,分析二者的相关性。

    通过Center for Genomic Epidemiology网站下载整理耐药基因和毒力基因数据库,预测金葡菌基因组的ORF,利用blastn软件进行耐药基因和毒力基因的比对(序列一致率>80%,覆盖率>70%)。

    实验室60株金葡菌基因组通过PHASTER在线网站( http://phaster.ca/)比对原噬菌体的携带情况,统计结果为完整噬菌体序列。通过Center for Genomic Epidemiology在线网站比对接合质粒存在情况(序列一致率>95%)。

    采用SPSS 21.0软件进行统计学分析,CRISPR+和CRISPR−与耐药基因和毒力基因之间的关系采用χ2检验,以P<0.05为差异有统计学意义。

    公共数据库575株金葡菌中有62株(11%)含有确证的CRISPR位点(CRISPR+),513株(89%)无或仅含有可疑的CRISPR结构(CRISPR−)。实验室60株金葡菌中有14株(23%)含有确证的CRISPR位点(CRISPR+),46株(77%)无或仅含有可疑的CRISPR结构(CRISPR−)。

    对575株金葡菌基因组进行MLST分型,536株可以进行ST分型,共得到81个ST型别。对基因组进行系统发育树的构建,如图1A所示。我们将ST型别数量≥10的菌株标注不同的颜色,其他型别菌株以白色显示,同时将新ST型菌株以黑色标注。系统发育树显示,ST8型别的菌株所占的比例最高,为19%(111/575);其次是ST5,占比达到13%(77/575)。在CRISPR+菌株中,最具有代表性的型别是ST398;CRISPR−菌株中,最具有代表性的型别是ST8。通过绘制韦恩图来分析CRISPR+与CRISPR−菌株的关系,如图1B所示,CRISPR+与CRISPR−之间有11个共同的ST型,菌株之间具有相关性。

    图  1  公共数据库基因组CRISPR+和CRISPR−金葡菌MLST型别系统发育树(A)和ST型别交叉情况(B)
    Figure  1.  Phylogenetic tree (A) and ST type crossover (B) of CRISPR+ and CRISPR−Staphylococcus aureus MLST types in public database genome

    公共数据库基因组中,62株CRISPR+金葡菌中阳性率最高的耐药基因是tet(38),占比高达90%(56/62);其次是blaZ,占比60%(37/62)。与CRISPR+菌株相比,513株CRISPR−菌株中ant(4')-Ibaph(3')-Ⅲaaad(6)msr(A)的阳性率高(P<0.05)。CRISPR−菌株耐药基因的种类多于CRISPR+菌株(表1)。

    表  1  公共数据库基因组CRISPR+与CRISPR−菌株耐药基因比较1)
    Table  1.  Comparison of drug resistance genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome
    耐药基因 Drug resistance gene CRISPR+ CRISPR− P
    数量 Quantity 占比/% Proportion 数量 Quantity 占比/% Proportion
    ant(4')-Ⅰb 2 3 72 14 0.014
    ant(9)-Ⅰa 9 15 126 25 0.078
    aac(6')-le-aph(2")-Ⅰa 5 8 82 16 0.100
    aph(3')-Ⅲa 102 20 0.000
    aad(6) 1 2 58 11 0.013
    ant(6)-Ⅰa 2 3 3 1 0.164
    mecA 33 53 285 56 0.727
    mecR1 4 6 99 19 0.013
    mecⅠ 2 3 74 14 0.009
    blaZ 37 60 292 57 0.679
    mecC 3 5 4 1 0.032
    cfr(A) 2 0 1.000
    erm(A) 10 16 135 26 0.081
    erm(B) 1 2 12 2 1.000
    erm(C) 4 6 29 6 0.772
    erm(T) 1 2 0.206
    Isa(E) 2 3 4 1 0.259
    Isa(B) 1 0 1.000
    msr(A) 60 12 0.009
    msr(F) 1 0 1.000
    optr(A) 1 0 1.000
    vga(A)LC 3 5 3 1 0.014
    vga(E) 3 5 4 1 0.032
    vga(A)v 1 2 0.206
    tet(38) 56 90 491 96 0.063
    tet(K) 16 26 50 10 0.000
    tet(L) 3 5 6 1 0.063
    tet(M) 19 31 71 14 0.001
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    实验室菌株基因组中,14株CRISPR+金葡菌中阳性率最高的耐药基因是blaZ,占比57%(8/14)。与CRISPR+菌株相比,46株CRISPR−菌株中ant(6)-IacfrmecA的阳性率高(P<0.05)。CRISPR+菌株的耐药基因种类少于CRISPR−菌株(表2)。

    表  2  实验室基因组CRISPR+与CRISPR−菌株耐药基因比较1)
    Table  2.  Comparison of drug resistance genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the laboratory genome
    耐药基因 Drug resistance gene CRISPR+ CRISPR− P
    数量 Quantity 占比/% Proportion 数量 Quantity 占比/% Proportion
    lnu(A) 2 14 5 11 0.660
    lnu(B) 9 20 0.100
    lsa(E) 9 20 0.100
    erm(A) 1 7 1 2 0.955
    erm(B) 4 29 20 43 0.368
    erm(C) 6 43 28 61 0.234
    erm(T) 1 7 4 9 1.000
    fexA 2 14 35 76 0.000
    fexB 1 7 1 2 0.955
    aac(6')-aph(2'') 16 35 0.013
    aph(2'')-Ia 4 29 18 39 0.542
    aadD 2 14 32 70 0.000
    ant(6)-Ia 3 21 25 54 0.004
    ant(9)-Ia 1 7 1 2 0.955
    tet(K) 3 21 14 30 0.737
    tet(L) 3 21 25 54 0.004
    tet(M) 1 7 7 15 0.667
    tet(S) 2 14 14 30 0.314
    tet(T) 1 2 1.000
    blaZ 8 57 17 37 0.180
    str 3 7 0.779
    cfr 2 14 23 50 0.028
    mecA1 2 14 17 37 0.189
    sal(A) 2 14 17 37 0.189
    optrA 2 14 17 37 0.189
    mecA 3 21 25 54 0.004
    msr(A) 1 2 1.000
    dfrG 1 7 15 33 0.086
    qacG 2 14 0.079
    fosD 1 7 13 28 0.154
    fosB5 2 4 1.000
    fosB4 1 7 0 0 0.525
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    在菌株携带耐药基因的数量方面,CRISPR+菌株携带的耐药基因数量更少。公共数据库基因组CRISPR+菌株中,有58%(36/62) 的菌株携带耐药基因的数量≥10个,低于CRISPR−菌株(77%,395/513);实验室菌株基因组CRISPR+菌株中,有29%(4/14) 的菌株携带耐药基因的数量≥10个,低于CRISPR−菌株(74%,34/46)(表3)。

    表  3  公共数据库与实验室基因组CRISPR+与CRISPR−菌株耐药基因数目比较
    Table  3.  Comparison of the number of drug resistance genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database and the laboratory genomes
    基因组 Genome 耐药基因数目 Number of drug resistance gene 占比/% Proportion
    CRISPR+ CRISPR−
    公共数据库 Public database ≥5 95 100
    ≥10 58 77
    ≥15 11 38
    ≥20 0 6
    实验室 Laboratory ≥5 36 76
    ≥10 29 74
    ≥15 7 50
    ≥20 0 17
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    同时,我们分别对2组数据中CRISPR+和CRISPR−菌株携带耐药基因数目进行箱线图绘制。公共数据库基因组中,CRISPR+菌株整体携带耐药基因数量的平均值低于CRISPR−菌株,差异极显著(P<0.01)(图2A)。实验室基因组中,CRISPR+菌株整体携带耐药基因数量的平均值低于CRISPR−菌株,差异显著(P<0.05)(图2B)。

    图  2  公共数据库(A)和实验室(B)基因组 CRISPR+与CRISPR−菌株整体携带耐药基因数目平均值比较
    “*”和“**”分别表示在P<0.05 和 P<0.01 水平差异显著(χ2 检验)
    Figure  2.  Comparison of the average number of drug resistance genes between all CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database (A) and the laboratory(B) genomes
    “*” and “**” indicates significant differences at P<0.05 and P<0.01 respectively (χ2 test)

    表4可知,公共数据库基因组中,CRISPR+金葡菌阳性率最高的毒力基因是hlgBhlgC,占比高达100%(62/62);其次是aur,占比98%(61/62)。与CRISPR+菌株相比,CRISPR−菌株中splAsplB的阳性率高(P<0.05)。CRISPR−菌株毒力基因的种类多于CRISPR+菌株。

    表  4  公共数据库基因组CRISPR+与CRISPR−菌株毒力基因比较1)
    Table  4.  Comparison of virulence genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome
    毒力基因 Virulence gene CRISPR+ CRISPR− P
    数量 Quantity 占比/% Proportion 数量 Quantity 占比/% Proportion
    aur 61 98 503 98 0.855
    splA 18 29 368 72 0.000
    splB 21 34 381 74 0.000
    splE 19 31 66 13 0.000
    sak 4 6 0.000
    scn 4 6 0.000
    sea 4 6 103 20 0.009
    seb 1 2 44 9 0.074
    sec 10 16 58 11 0.267
    sed 28 5 0.061
    seg 15 24 221 43 0.004
    seh 23 4 0.159
    sei 15 24 227 44 0.003
    sej 39 8 0.015
    sek 4 6 137 27 0.000
    sel 10 16 54 11 0.185
    sem 15 24 229 45 0.002
    sen 14 23 225 44 0.001
    seo 15 24 229 45 0.002
    sep 2 3 62 12 0.033
    seq 5 8 131 26 0.002
    ser 38 7 0.025
    seu 15 24 115 22 0.752
    tst 4 6 67 13 0.135
    hlgA 60 97 507 99 0.192
    hlgB 62 100 512 100 0.728
    hlgC 62 100 512 100 0.728
    lukD 24 39 386 75 0.000
    lukE 25 40 378 74 0.000
    lukF 7 11 124 24 0.022
    lukS 28 5 0.061
    lukF-PV 7 11 124 24 0.022
    lukS-PV 28 5 0.061
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    实验室菌株基因组中,CRISPR+金葡菌阳性率最高的毒力基因是aurhlgAhlgBhlgC,占比71%(10/14)。与CRISPR+菌株相比,CRISPR−菌株中seisemsenseoseu的阳性率高。CRISPR+菌株的毒力基因种类少于CRISPR−菌株(表5)。

    表  5  实验室基因组CRISPR+与CRISPR−菌株毒力基因比较
    Table  5.  Comparison of virulence genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the laboratory genome
    毒力基因 Virulence gene CRISPR+1) CRISPR− P
    数量 Quantity 占比% Proportion 数量 Quantity 占比% Proportion
    aur 10 71 22 48 0.121
    splA 1 7 12 26 0.264
    splB 2 14 10 22 0.713
    splE 2 14 9 20 1.000
    sak 6 43 9 20 0.078
    scn 7 50 14 30 0.179
    hlgA 10 71 22 48 0.121
    hlgB 10 71 22 48 0.121
    hlgC 10 71 22 48 0.121
    lukD 1 7 12 26 0.264
    lukE 1 7 12 26 0.264
    sea 1 2 1.000
    seg 9 20 0.100
    seh 2 4 1.000
    sei 10 22 0.098
    sem 10 22 0.098
    sen 10 22 0.098
    seo 10 22 0.098
    seu 10 22 0.098
    edinA 1 2 1.000
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    在菌株携带毒力基因的数量方面,CRISPR+菌株携带的毒力基因更少。公共数据库基因组CRISPR+菌株中,有35%(22/62) 的菌株携带毒力基因的数量≥10个,低于CRISPR−菌株(73%,374/513);实验室菌株基因组CRISPR+菌株中,有7%(1/14)的菌株携带毒力基因的数量≥10个,低于CRISPR−菌株(41%,19/46)(表6)。

    表  6  公共数据库基因组CRISPR+与CRISPR−菌株毒力基因数目比较
    Table  6.  Comparison of the number of virulence genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome
    基因组 Genome 毒力基因数目 Number of virulence gene 占比/% Proportion
    CRISPR+ CRISPR−
    公共数据库 Public database ≥5 68 96
    ≥10 35 73
    ≥15 6 15
    ≥20 3 0
    实验室 Laboratory ≥5 50 48
    ≥10 7 41
    ≥15 0 13
    ≥20 0 7
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    同时,我们分别对2组数据中CRISPR+和CRISPR−菌株携带毒力基因数目进行箱线图绘制。公共数据库基因组中,CRISPR+菌株整体携带毒力基因数目的平均值低于CRISPR−菌株,差异极显著(P<0.01)(图3A)。实验室基因组中,CRISPR+菌株整体携带毒力基因数目的平均值低于CRISPR−菌株,差异显著(P<0.05)(图3B)。

    图  3  公共数据库(A)和实验室(B)基因组 CRISPR+和CRISPR−菌株整体携带毒力基因数目平均值比较
    “*”和“**”分别表示在 P<0.05 和 P<0.01 水平差异显著(χ2 检验)
    Figure  3.  Comparison of the average number of virulence genes between all CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome (A) and the laboratory genome (B)
    “*” and “**” indicates significant differences at P<0.05 and P<0.01 respectively (χ2 test)

    实验室60株金葡菌基因组原噬菌体比对结果显示,CRISPR+金葡菌中原噬菌体的携带率为29%(4/14),CRISPR−金葡菌中原噬菌体的携带率为67%(31/46)。CRISPR−菌株携带更多的原噬菌体序列,与CRISPR+菌株之间差异显著(P<0.05)。接合质粒的分析结果显示,CRISPR+金葡菌中接合质粒的携带率为86%(12/14),CRISPR−金葡菌中接合质粒的携带率为80%(37/46)。CRISPR−和CRISPR+菌株基本一致,无显著差异(P>0.05)。

    CRISPR/Cas系统作为原核生物的一种适应性免疫系统,能抵御外来基因元件如噬菌体、质粒的入侵,保持细菌自身遗传结构的稳定。日本学者于1987年首次在大肠埃希菌中发现该结构[17],Barrangou等[13]首次用试验证明CRISPR/Cas系统具有抵御外来噬菌体干扰的功能。本研究结果显示,CRISPR+金葡菌菌株大多含有较少的耐药基因和毒力基因,CRISPR结构能够限制耐药基因、毒力基因的水平转移,使细菌的遗传结构保持稳定[18]

    但是,从进化的角度看,基因的水平转移可以使细菌获取新的遗传物质,有利于细菌在复杂的环境中生存[19-20]。本研究在对毒力基因进行分析的过程中发现,极少数CRISPR+金葡菌携带的毒力基因数目高于CRISPR−菌株,这与Palmer等[21]的研究一致,说明在外源基因获取压力下,CRISPR/Cas系统往往处于失活状态。

    细菌耐药性的产生主要依赖于耐药基因的水平转移,CRISPR/Cas系统是否能够限制耐药、毒力基因的水平转移,不同研究有不同的报道。有研究表明,一些种类的细菌几乎不携带CRISPR/Cas系统[22];同时,也有相关研究表明,宿主菌可以通过丢失CRISPR结构来获得高度有益的外源DNA[23]。Touchon等[24]分析了263株大肠埃希菌的CRISPR/Cas系统,对CRISPR结构与耐药性的关系进行了分析,结果表明,CRISPR结构的存在并不能阻止耐药基因和质粒的水平转移。洪丽娟等[25]发现志贺菌中CRISPR结构对菌株耐药基因和耐药表型均无影响。然而,张蒙蒙等[16]发现葡萄球菌基因组中CRISPR/Cas系统携带率低,且基因座、Cas基因的结构和功能均不完善,仅较少的菌株中含有完整的CRISPR/Cas系统,完整的葡萄球菌CRISPR/Cas系统可能限制mecA基因的水平转移。Palmer等[21]发现CRISPR/Cas系统的存在限制了粪肠球菌中来自可移动元件的耐药基因间的水平传播。Marraffini等[15]通过试验证明葡萄球菌RP62a的CRISPR/Cas系统能够抵御噬菌体的入侵。同时,Watson等[26]研究表明CRISPR/Cas系统可以通过转导增强基因的水平转移。对于CRISPR结构与毒力基因的关系,Wiedenheft等[27]研究表明铜绿假单胞菌CRISPR/Cas系统的存在与小鼠中某些毒力基因的表达密切相关。

    本研究通过对公共数据库金葡菌基因组中CRISPR/Cas系统、耐药基因和毒力基因进行比对分析,并利用实验室金葡菌基因组进行验证,发现金葡菌中CRISPR结构的存在可能影响金葡菌耐药、毒力基因的水平转移。CRISPR−菌株携带更多的原噬菌体序列,表明CRISPR−菌株更容易受到噬菌体和可移动质粒的干扰。本研究结果对进一步研究金葡菌耐药基因和毒力基因的传播有参考意义。

  • 图  1   公共数据库基因组CRISPR+和CRISPR−金葡菌MLST型别系统发育树(A)和ST型别交叉情况(B)

    Figure  1.   Phylogenetic tree (A) and ST type crossover (B) of CRISPR+ and CRISPR−Staphylococcus aureus MLST types in public database genome

    图  2   公共数据库(A)和实验室(B)基因组 CRISPR+与CRISPR−菌株整体携带耐药基因数目平均值比较

    “*”和“**”分别表示在P<0.05 和 P<0.01 水平差异显著(χ2 检验)

    Figure  2.   Comparison of the average number of drug resistance genes between all CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database (A) and the laboratory(B) genomes

    “*” and “**” indicates significant differences at P<0.05 and P<0.01 respectively (χ2 test)

    图  3   公共数据库(A)和实验室(B)基因组 CRISPR+和CRISPR−菌株整体携带毒力基因数目平均值比较

    “*”和“**”分别表示在 P<0.05 和 P<0.01 水平差异显著(χ2 检验)

    Figure  3.   Comparison of the average number of virulence genes between all CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome (A) and the laboratory genome (B)

    “*” and “**” indicates significant differences at P<0.05 and P<0.01 respectively (χ2 test)

    表  1   公共数据库基因组CRISPR+与CRISPR−菌株耐药基因比较1)

    Table  1   Comparison of drug resistance genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome

    耐药基因 Drug resistance gene CRISPR+ CRISPR− P
    数量 Quantity 占比/% Proportion 数量 Quantity 占比/% Proportion
    ant(4')-Ⅰb 2 3 72 14 0.014
    ant(9)-Ⅰa 9 15 126 25 0.078
    aac(6')-le-aph(2")-Ⅰa 5 8 82 16 0.100
    aph(3')-Ⅲa 102 20 0.000
    aad(6) 1 2 58 11 0.013
    ant(6)-Ⅰa 2 3 3 1 0.164
    mecA 33 53 285 56 0.727
    mecR1 4 6 99 19 0.013
    mecⅠ 2 3 74 14 0.009
    blaZ 37 60 292 57 0.679
    mecC 3 5 4 1 0.032
    cfr(A) 2 0 1.000
    erm(A) 10 16 135 26 0.081
    erm(B) 1 2 12 2 1.000
    erm(C) 4 6 29 6 0.772
    erm(T) 1 2 0.206
    Isa(E) 2 3 4 1 0.259
    Isa(B) 1 0 1.000
    msr(A) 60 12 0.009
    msr(F) 1 0 1.000
    optr(A) 1 0 1.000
    vga(A)LC 3 5 3 1 0.014
    vga(E) 3 5 4 1 0.032
    vga(A)v 1 2 0.206
    tet(38) 56 90 491 96 0.063
    tet(K) 16 26 50 10 0.000
    tet(L) 3 5 6 1 0.063
    tet(M) 19 31 71 14 0.001
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV

    表  2   实验室基因组CRISPR+与CRISPR−菌株耐药基因比较1)

    Table  2   Comparison of drug resistance genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the laboratory genome

    耐药基因 Drug resistance gene CRISPR+ CRISPR− P
    数量 Quantity 占比/% Proportion 数量 Quantity 占比/% Proportion
    lnu(A) 2 14 5 11 0.660
    lnu(B) 9 20 0.100
    lsa(E) 9 20 0.100
    erm(A) 1 7 1 2 0.955
    erm(B) 4 29 20 43 0.368
    erm(C) 6 43 28 61 0.234
    erm(T) 1 7 4 9 1.000
    fexA 2 14 35 76 0.000
    fexB 1 7 1 2 0.955
    aac(6')-aph(2'') 16 35 0.013
    aph(2'')-Ia 4 29 18 39 0.542
    aadD 2 14 32 70 0.000
    ant(6)-Ia 3 21 25 54 0.004
    ant(9)-Ia 1 7 1 2 0.955
    tet(K) 3 21 14 30 0.737
    tet(L) 3 21 25 54 0.004
    tet(M) 1 7 7 15 0.667
    tet(S) 2 14 14 30 0.314
    tet(T) 1 2 1.000
    blaZ 8 57 17 37 0.180
    str 3 7 0.779
    cfr 2 14 23 50 0.028
    mecA1 2 14 17 37 0.189
    sal(A) 2 14 17 37 0.189
    optrA 2 14 17 37 0.189
    mecA 3 21 25 54 0.004
    msr(A) 1 2 1.000
    dfrG 1 7 15 33 0.086
    qacG 2 14 0.079
    fosD 1 7 13 28 0.154
    fosB5 2 4 1.000
    fosB4 1 7 0 0 0.525
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV

    表  3   公共数据库与实验室基因组CRISPR+与CRISPR−菌株耐药基因数目比较

    Table  3   Comparison of the number of drug resistance genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database and the laboratory genomes

    基因组 Genome 耐药基因数目 Number of drug resistance gene 占比/% Proportion
    CRISPR+ CRISPR−
    公共数据库 Public database ≥5 95 100
    ≥10 58 77
    ≥15 11 38
    ≥20 0 6
    实验室 Laboratory ≥5 36 76
    ≥10 29 74
    ≥15 7 50
    ≥20 0 17
    下载: 导出CSV

    表  4   公共数据库基因组CRISPR+与CRISPR−菌株毒力基因比较1)

    Table  4   Comparison of virulence genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome

    毒力基因 Virulence gene CRISPR+ CRISPR− P
    数量 Quantity 占比/% Proportion 数量 Quantity 占比/% Proportion
    aur 61 98 503 98 0.855
    splA 18 29 368 72 0.000
    splB 21 34 381 74 0.000
    splE 19 31 66 13 0.000
    sak 4 6 0.000
    scn 4 6 0.000
    sea 4 6 103 20 0.009
    seb 1 2 44 9 0.074
    sec 10 16 58 11 0.267
    sed 28 5 0.061
    seg 15 24 221 43 0.004
    seh 23 4 0.159
    sei 15 24 227 44 0.003
    sej 39 8 0.015
    sek 4 6 137 27 0.000
    sel 10 16 54 11 0.185
    sem 15 24 229 45 0.002
    sen 14 23 225 44 0.001
    seo 15 24 229 45 0.002
    sep 2 3 62 12 0.033
    seq 5 8 131 26 0.002
    ser 38 7 0.025
    seu 15 24 115 22 0.752
    tst 4 6 67 13 0.135
    hlgA 60 97 507 99 0.192
    hlgB 62 100 512 100 0.728
    hlgC 62 100 512 100 0.728
    lukD 24 39 386 75 0.000
    lukE 25 40 378 74 0.000
    lukF 7 11 124 24 0.022
    lukS 28 5 0.061
    lukF-PV 7 11 124 24 0.022
    lukS-PV 28 5 0.061
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV

    表  5   实验室基因组CRISPR+与CRISPR−菌株毒力基因比较

    Table  5   Comparison of virulence genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the laboratory genome

    毒力基因 Virulence gene CRISPR+1) CRISPR− P
    数量 Quantity 占比% Proportion 数量 Quantity 占比% Proportion
    aur 10 71 22 48 0.121
    splA 1 7 12 26 0.264
    splB 2 14 10 22 0.713
    splE 2 14 9 20 1.000
    sak 6 43 9 20 0.078
    scn 7 50 14 30 0.179
    hlgA 10 71 22 48 0.121
    hlgB 10 71 22 48 0.121
    hlgC 10 71 22 48 0.121
    lukD 1 7 12 26 0.264
    lukE 1 7 12 26 0.264
    sea 1 2 1.000
    seg 9 20 0.100
    seh 2 4 1.000
    sei 10 22 0.098
    sem 10 22 0.098
    sen 10 22 0.098
    seo 10 22 0.098
    seu 10 22 0.098
    edinA 1 2 1.000
     1) “—”表示未检测到  1) “—” is not detected
    下载: 导出CSV

    表  6   公共数据库基因组CRISPR+与CRISPR−菌株毒力基因数目比较

    Table  6   Comparison of the number of virulence genes between CRISPR+ and CRISPR− strains for the public database genome

    基因组 Genome 毒力基因数目 Number of virulence gene 占比/% Proportion
    CRISPR+ CRISPR−
    公共数据库 Public database ≥5 68 96
    ≥10 35 73
    ≥15 6 15
    ≥20 3 0
    实验室 Laboratory ≥5 50 48
    ≥10 7 41
    ≥15 0 13
    ≥20 0 7
    下载: 导出CSV
  • [1]

    CHEN L, TANG Z Y, CUI S Y, et al. Biofilm production ability, virulence and antimicrobial resistance genes in Staphylococcus aureus from various veterinary hospitals[J]. Pathogens, 2020, 9(4): 264. doi: 10.3390/pathogens9040264.

    [2]

    SHOPSIN B, KREISWIRTH B N. Molecular epidemiology of methicillin-resistant Staphylococcus aureus[J]. Emerging Infectious Diseases, 2001, 7(2): 323-326. doi: 10.3201/eid0702.010236

    [3]

    KRISHNA S, MILLER L S. Host-pathogen interactions between the skin and Staphylococcus aureus[J]. Current Opinion Microbiology, 2012, 15(1): 28-35. doi: 10.1016/j.mib.2011.11.003

    [4] 毛婷婷. 金黄色葡萄球菌CRISPR结构及耐药毒力分子特征[D]. 郑州: 郑州大学, 2019.
    [5]

    LINDSAY J A. Staphylococcus aureus genomics and the impact of horizontal gene transfer[J]. International Journal of Medical Microbiology, 2014, 304(2): 103-109. doi: 10.1016/j.ijmm.2013.11.010

    [6]

    ANITHA P, ANBARASU A, RAMAIAH S. Gene network analysis reveals the association of important functional partners involved in anti-biotic resistance: A report on an important pathogenic bacterium Staphylococcus aureus[J]. Gene, 2016, 575(2): 253-263. doi: 10.1016/j.gene.2015.08.068

    [7] 左祥, 查艳景, 王征. 金黄色葡萄球菌的临床分布及耐药基因研究[J]. 中国病原生物学杂志, 2017, 12(6): 566-569.
    [8]

    ITO T, OKUMA K, MA X X, et al. Insights on antibiotic resistance of Staphylococcus aureus from its whole genome: Genomic island SCC[J]. Drug Resistance Updates, 2003, 6(1): 41-52. doi: 10.1016/S1368-7646(03)00003-7

    [9]

    ITO T, KATAYAMA Y, HIRAMATSU K. Cloning and nucleotide sequence determination of the entire mec DNA of pre-methicillin-resistant Staphylococcus aureus N315[J]. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 1999, 43(6): 1449-1458. doi: 10.1128/AAC.43.6.1449

    [10]

    KATAYAMA Y, ITO T, HIRAMATSU K. A new class of genetic element, staphylococcus cassette chromosome mec, encodes methicillin resistance in Staphylococcus aureus[J]. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2000, 44(6): 1549-1555. doi: 10.1128/AAC.44.6.1549-1555.2000

    [11]

    LIU J, CHEN D, PETERS B M. Staphylococcal chromosomal cassettes mec (SCCmec): A mobile genetic element in methicillin-resistant Staphylococcus aureus[J]. Microbial Pathogenesis, 2016, 101: 56-67. doi: 10.1016/j.micpath.2016.10.028

    [12]

    SZCZEPANIK A, KOZIOL-MONTEWKA M, Al-DOORI Z, et al. Spread of a single multiresistant methicillin-resistant Staphylococcus aureus clone carrying a variant of staphylococcal cassette chromosome mec type III isolated in a university hospital[J]. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 2007, 26(1): 29-35.

    [13]

    BARRANGOU R, FREMAUX C, DEVEAU H, et al. CRISPR provides acquired resistance against viruses in prokaryotes[J]. Science, 2007, 315(5819): 1709-1712. doi: 10.1126/science.1138140

    [14]

    SOREK R, KUNIN V, HUGENHOLTZ P. CRISPR: A widespread system that provides acquired resistance against phages in bacteria and archaea[J]. Nature Reviews Microbiology, 2008, 6(3): 181-186. doi: 10.1038/nrmicro1793

    [15]

    MARRAFFINI L A, SONTHEIMER E J. CRISPR interference limits horizontal gene transfer in staphylococci by targeting DNA[J]. Science, 2008, 322(5909): 1843-1845. doi: 10.1126/science.1165771

    [16] 张蒙蒙, 毕春霞, 王梦圆, 等. 葡萄球菌CRISPR-Cas系统的基因结构及其与耐药基因的关系[J]. 中国病原生物学杂志, 2019, 14(5): 553-559.
    [17]

    ISHINO Y, SHINAGAWA H, MAKINO K, et al. Nucleotide sequence of the iap gene, responsible for alkaline phosphatase isozyme conversion in Escherichia coli, and identification of the gene product[J]. Journal of Bacteriology, 1987, 169(12): 5429-5433. doi: 10.1128/jb.169.12.5429-5433.1987

    [18]

    LUO K, SHAO F, KAMARA K N, et al. Molecular characteristics of antimicrobial resistance and virulence determinants of Staphylococcus aureus isolates derived from clinical infection and food[J]. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 2018, 32(7): e22456. doi: 10.1002/jcla.22456

    [19]

    GOPHNA U, KRISTENSEN D M, WOLF Y I, et al. No evidence of inhibition of horizontal gene transfer by CRISPR-Cas on evolutionary timescales[J]. ISME Journal, 2015, 9(9): 2021-2027. doi: 10.1038/ismej.2015.20

    [20]

    BOLOTIN A, QUINQUIS B, SOROKIN A, et al. Clustered regularly interspaced short palindrome repeats (CRISPRs) have spacers of extrachromosomal origin[J]. Microbiology-SGM, 2005, 151(8): 2551-2561. doi: 10.1099/mic.0.28048-0

    [21]

    PALMER K L, GILMORE M S. Multidrug-resistant enterococci lack CRISPR-cas[J]. mBio, 2010, 1(4): e00227-10.

    [22]

    BURSTEIN D, SUN C L, BROWN C T, et al. Major bacterial lineages are essentially devoid of CRISPR-Cas viral defence systems[J]. Nature Communications, 2016, 7: 10613. doi: 10.1038/ncomms10613.

    [23]

    JIANG W, MANIV I, ARAIN F, et al. Dealing with the evolutionary downside of CRISPR immunity: Bacteria and beneficial plasmids[J]. PLoS Genetics, 2013, 9(9): e1003844. doi: 10.1371/journal.pgen.1003844

    [24]

    TOUCHON M, CHARPENTIER S, POGNARD D, et al. Antibiotic resistance plasmids spread among natural isolates of Escherichia coli in spite of CRISPR elements[J]. Microbiology, 2012, 158(Pt 12): 2997-3004.

    [25] 洪丽娟, 张冰, 段广才, 等. CRISPR/Cas系统与志贺菌毒力和耐药的关系及插入序列IS600对cse2表达水平的影响[J]. 微生物学报, 2016, 56(12): 1912-1923.
    [26]

    WATSON B N J, STAALS R H J, FINERAN P C. CRISPR-Cas-mediated phage resistance enhances horizontal gene transfer by transduction[J]. mBio, 2018, 9(1): e02406-17.

    [27]

    WIEDENHEFT B, BONDY-DENOMY J. CRISPR control of virulence in Pseudomonas aeruginosa[J]. Cell Research, 2017, 27(2): 163-164. doi: 10.1038/cr.2017.6

  • 期刊类型引用(0)

    其他类型引用(2)

图(3)  /  表(6)
计量
  • 文章访问数:  314
  • HTML全文浏览量:  54
  • PDF下载量:  507
  • 被引次数: 2
出版历程
  • 收稿日期:  2021-11-20
  • 网络出版日期:  2023-05-17
  • 刊出日期:  2023-03-09

目录

/

返回文章
返回