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赣南地区番茄青枯菌菌系多样性分析

任敏华, 张静燕, 崔晓东, 陈荣华, 刘琼光

任敏华, 张静燕, 崔晓东, 等. 赣南地区番茄青枯菌菌系多样性分析[J]. 华南农业大学学报, 2022, 43(1): 67-76. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202101041
引用本文: 任敏华, 张静燕, 崔晓东, 等. 赣南地区番茄青枯菌菌系多样性分析[J]. 华南农业大学学报, 2022, 43(1): 67-76. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202101041
REN Minhua, ZHANG Jingyan, CUI Xiaodong, et al. Diversity of Ralstonia solanacearum strains from tomato in the south of Jiangxi Province[J]. Journal of South China Agricultural University, 2022, 43(1): 67-76. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202101041
Citation: REN Minhua, ZHANG Jingyan, CUI Xiaodong, et al. Diversity of Ralstonia solanacearum strains from tomato in the south of Jiangxi Province[J]. Journal of South China Agricultural University, 2022, 43(1): 67-76. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.202101041

赣南地区番茄青枯菌菌系多样性分析

基金项目: 江西省赣州市科技项目(赣市财教字[2019]号)
详细信息
    作者简介:

    任敏华,硕士研究生,主要从事植物细菌病害研究,E-mail: renmishka@163.com

    通讯作者:

    陈荣华,研究员,主要从事农作物病害研究,E-mail: Chenronghua009@163.com

    刘琼光,副教授,博士,主要从事植物细菌病害研究,E-mail: qgliu@scau.edu.cn

  • 中图分类号: S436.412.1+5

Diversity of Ralstonia solanacearum strains from tomato in the south of Jiangxi Province

  • 摘要:
    目的 

    分离鉴定赣南地区番茄青枯病菌,明确菌系分化,为当地番茄抗青枯病育种和病害防治奠定基础。

    方法 

    从江西省赣南地区采集番茄青枯病病株,经选择性平板分离、纯化和分子鉴定,获得不同地理来源的青枯菌Ralstonia solanacearum菌株。通过生理生化测定和接种番茄试验,鉴定青枯菌的生化变种和致病类型。PCR扩增内切葡聚糖酶基因egl序列,明确青枯菌的演化型和序列变种。双层平板培养法测定其对8个不同噬菌体的敏感性。

    结果 

    获得了来自赣南地区9个市(县)的番茄青枯菌菌株44个,其中,41个菌株为生化变种Ⅲ,3个菌株为生化变种Ⅳ;致病力测定结果聚为I、II和III类,其致病力分别为强、中和弱,其中,强致病力菌株占65.9%。所有菌株属于亚洲分支演化型(Ⅰ),并进一步划分为Sequevar13、14、15、17、18、34、44和48等8个序列变种。大部分菌株对供试的8个噬菌体敏感。

    结论 

    赣南地区番茄青枯菌以生化变种III和强致病力菌株为主,对噬菌体较敏感,存在8个序列变种,具有明显的菌系分化现象和遗传多样性。

    Abstract:
    Objective 

    Isolating and identifying Ralstonia solanacearum strains from tomato plants in the Southern of Jiangxi Province, and clarifying the bacterial differentiation can lay the foundation for local tomato bacterial wilt resistance breeding and disease control.

    Method 

    The diseased tomato plants were collected from the south of Jiangxi Province, R. solanacearum strains with different geographical origins were isolated by selective plate, purificated and identificated by PCR. The test of physiology and biochemistry and inoculation on tomato plants were conducted for the determination of biovar and virulence difference. The endoglucanase gene (egl) fragments were amplified by PCR to determine the phylotype and sequevar of R. solanacearum.

    Result 

    A total of 44 R. solanacearum strains were obtained from nine cities (counties) in the south of Jiangxi Province, among which 41 strains were identified as biovar III and three strains were identified as biovar IV. According to the results of virulence difference, 44 strains were clustered into three groups, namely group I (high virulence), group II (moderate virulence) and group III (weak virulence), of which group I (high virulence) strains accounted for 65.9%. All strains were belonged to the phylotype I and further divided into eight sequevars, namely Sequevar 13, 14, 15, 17, 18, 34, 44 and 48 respeclively. Most R. solanacearum strains were sensitive to the eight tested bacteriophages.

    Conclusion 

    The strains of R. solanacearum from tomato in the south of Jiangxi Province are mainly biovar III and high virulence, sensitive to bacteriophages, have eight sequevars, and have obvious differentiation and genetic diversity.

  • 木尔坦棉花曲叶病毒Cotton LeafCurl Multan Virus(CLCuMV)属双生病毒科菜豆金黄花叶病毒属,含DNA-A组分,并伴随有卫星DNA β分子,该病毒是引起棉花曲叶病的主要病原之一[1-2].该病毒通过烟粉虱Bemisia tabaci进行传播和扩散,危害严重[3-6].已在我国广东、广西、海南及云南的棉花Gossypium hirsutum L.[2]、朱槿Hibiscus rosa-sinensis Linn.[7-9]、黄秋葵Abelmoschus esculentu L.[10]、垂花悬铃木Malvaviscus arboreus Cav. var. penduliflocus(DC.)Schery[11]和红麻Hibiscus cannabinus[8]等锦葵科植物检测到该病毒.已有利用测序比对CLCuMV在不同寄主间的变异程度的研究[12].

    实时荧光定量PCR(Real time fluorescence quantitative PCR,RT-PCR)是在PCR定性技术基础上发展起来的核酸定量技术[12],被广泛用于医学病理学及分子生物学等领域[13],主要包括荧光染料法和探针法.利用RT-PCR探针法定量检测了发病番茄叶片和介体昆虫烟粉虱的番茄黄化曲叶病毒含量[14]、发病番茄植株中番茄黄化曲叶病毒和番茄黄化皱叶病毒的含量[15],也检测了蓟马虫体内番茄斑点枯萎病毒的含量[16],为解释病毒共同侵染、预测病毒传播提供了有效的依据.目前鲜见利用荧光染料法对CLCuMV定量检测的报道.

    本文基于SYBR Green I检测技术,构建CLCuMV实时荧光定量PCR定量检测体系,并比较其与常规PCR定量检测该病毒的灵敏度差异;定量测定寄主植物朱槿的健康及显症植株及介体昆虫烟粉虱虫体内的CLCuMV含量,为深入研究木尔坦棉花曲叶病的发病过程、致病机理以及该病毒与寄主植物、介体昆虫的互作提供有效的定量检测技术.

    2014年7月在广东省广州市南沙区蒲园的绿化地朱槿病株上采集供试感病叶片.病株表现为叶脉膨大且颜色加深,叶片边缘上卷,有脉突和耳突等木尔坦棉花曲叶病的典型症状.对照叶片是在未显症状的健康朱槿植株上采集的.

    介体昆虫为室内饲养于朱槿植株上的MEAM1隐种(B型)烟粉虱试验种群.

    质粒标准品为含有CLCuMV基因组的质粒pBin PLUS-1.85A,由广东省农业科学院植物保护研究所蔬菜病害防控研究室提供.

    高纯度质粒小量快速提取试剂盒(北京天根生化科技有限公司);血液组织细胞基因组提取试剂盒(北京天根生化科技有限公司);植物基因组提取试剂盒EasyPureTM Plant Genomic DNA Kit(北京全式金生物技术有限公司);2XGoTaqTM Green Master Mix(普洛麦格生物技术有限公司);2 × SYBR Green PCR Master Mix(北京天根生化科技有限公司);Alpha1506微量分光光度计(上海谱元仪器有限公司).

    取出保存于- 80 ℃并含有pBin PLUS-1.85A的农杆菌菌株(GV3101)培养后,用试剂盒提取质粒pBin PLUS-1.85A,再将其转化到大肠埃希菌感受态细胞(DH5α),继续培养.取D600 nm为0.6 ~ 0.8的适量菌液,用试剂盒提取质粒,微量分光光度计测定质粒浓度,将该质粒作为标准样品母液,- 20 ℃保存备用.

    质粒中病毒基因组拷贝数= N × 10-9 × ρ/Mr,式中,N为阿伏伽德罗常数,ρ为核酸质量浓度(ng·μL-1),Mr为相对分子质量.由该公式计算出母液质粒浓度为5.02 × 109 μL-1.

    基于CLCuMV的DNA-A基因组序列(GenBank登录号为:EF465535.1[17]),用Primer 5.0软件设计并合成检测引物CLCMuV 492-F:5′-TCCAGATGTCCGCACAAATA-3′,CLCMuV 492-R:5′-AACCAGGTCAGCACATTTCC-3′.

    常规PCR反应体系(25 μL):2XGoTaqTM Green Master Mix 12.5 μL,CLCMuV 492-F和CLCMuV 492-R各1 μL,样本DNA 1 μL,用ddH2O补足25 μL.阴性对照不加DNA,加1 μL DEPC(焦磷酸二乙酯)水.反应条件:94 ℃ 7 min;94 ℃ 35 s,49 ℃ 35 s,72 ℃ 45 s,35个循环;72 ℃ 10 min,4 ℃保存.在10 g·L-1琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物.

    荧光定量PCR反应体系(20 μL):2 × SYBR Green PCR Master Mix 10 μL、10 μmol·L-1CLCMuV 492-F和CLCMuV 492-R各0.5 μL、样本DNA 1 μL、用ddH2O补至20 μL.阴性对照不加DNA,加1 μL DEPC水.反应条件:94 ℃,7 min;94 ℃,35 s,49 ℃,35 s,72 ℃,45 s,35个循环;95 ℃,10 s,95 ℃,5 s.

    用DEPC水以10倍梯度稀释质粒标准样品母液,获得8个供试的质粒浓度:5.2 × 108、5.2 × 107、5.2 × 106、5.2 × 105、5.2 × 104、5.2 × 103、5.2 × 102和5.2 × 101 μL-1,进行实时荧光定量PCR,获得质粒浓度与其循环阈值(Ct值)之间关系,建立其检测标准曲线.

    CLCuMV以5.2 × 109、5.2 × 108、5.2 × 107、5.2 × 106、5.2 × 105、5.2 × 104、5.2 × 103、5.2 × 102、5.2 × 101和5.2 μL-1为供试浓度,对其进行常规PCR和实时荧光定量PCR,比较其检测的灵敏度.以不加DNA模板作为阴性对照.

    选取5株朱槿发病植株,分别采集显症的嫩叶、成熟叶片,分开标记编号,每袋1片样叶,带回实验室并保存于- 80 ℃冰箱中.试验时,试剂盒提取朱槿DNA,用健康朱槿上的叶片作对照.微量分光光度计测定各样本的总DNA质量浓度,再将其稀释为100 ng·μL-1,备用.

    以显症的朱槿作为病毒来源,在放置病株的养虫笼(50 cm × 50 cm × 50 cm)中释放B型烟粉虱300头.接虫24、48 h后分别从接虫朱槿植株的上、中、下部叶片上随机吸取饲毒成虫,共10头,并放于φ为95%的乙醇溶液保存,待测.从健康朱槿植株上饲养的供试成虫中吸取10头,作为对照.试剂盒提取介体昆虫DNA,微量分光光度计测定各样本的总DNA质量浓度,将其稀释为10 ng·μL-1,备用.

    采用t检验对已显症状朱槿嫩叶与成熟叶片处理的CLCuMV含量、饲毒24与48 h烟粉虱虫体CLCuMV含量进行显著性检验.采用SPSS 19.0进行统计分析.

    用DEPC水以10倍梯度稀释质粒母液获得8个浓度,并对其进行荧光定量PCR,获得8个标准样品的浓度与Ct值之间的关系,其标准曲线关系式为y = - 3.75x + 40.56(朱槿)、y = - 4.13x + 41.43(烟粉虱),其中y为循环阈值(Ct值)、x为质粒标准品的初始浓度拷贝数的对数值.

    将5.2 ~ 5.2 × 109 μL-1 10个浓度的质粒标准样品分别进行实时荧光定量PCR和常规PCR.实时荧光定量PCR扩增曲线表明,空白对照无DNA模板,Ct值高于35,当质粒标准样品为5.2 × 109,5.2 × 108、5.2 × 107、5.2 × 106、5.2 × 105、5.2 × 104、5.2 × 103、5.2 × 102、5.2 × 101和5.2 × 100 μL-1,其Ct值分别为4.72、8.56、12.89、16.31、20.05、23.23、26.66、29.65、32.87和35.22,其中5.2 μl-1Ct值高于35,其余的均小于35,说明利用实时荧光定量PCR可定量检测出质粒标准样品的最低浓度为5.2 × 101 μL-1.利用常规PCR检测上述10个浓度质粒标准样品时,5.2 × 109、5.2 × 108、5.2 × 107、5.2 × 106、5.2 × 105、5.2 × 104、5.2 × 103和5.2 × 102 μL-1的质粒标准样品可扩增出清晰的492 bp的目的条带(图 1),判定该方法检测最低浓度为5.2 × 102 μL-1.分析表明,利用实时荧光定量PCR检测CLCuMV的灵敏度约是常规PCR的10倍.

    图  1  10个浓度质粒标准样品的常规PCR扩增
    M:DL 1 000 Marker;1 ~ 10分别表示质粒浓度为5.2 × 109、5.2 × 108、5.2 × 107、5.2 × 106、5.2 × 105、5.2 × 104、5.2 × 103、5.2 × 102、5.2 × 101、5.2 μL-1;11:阴性对照.
    Figure  1.  PCR amplification of 10 concentrations of plasmid standard samples

    利用上述实时荧光定量PCR技术,对供试的朱槿上显症的嫩叶、成熟叶及对照进行CLCuMV定量检测.结果表明,显症的嫩叶和老熟叶片的Ct平均值分别为20.66 ± 0.89和22.70 ± 0.32,均可检测到病毒,但所有健康叶片样本的Ct值均大于35,未检测到病毒.根据试验所建立的检测朱槿的标准曲线,获得显症嫩叶和显症老熟叶片的CLCuMV浓度分别为(9.00 ± 3.80)× 105和(1.60 ± 0.25)× 105 μL-1,虽然后者小于前者,但两者间无显著性差异(t = - 2.173,P = 0.095).

    利用实时荧光定量PCR对未饲毒和饲毒的单头烟粉虱虫体进行检测,结果表明对未经饲毒烟粉虱扩增的Ct值均大于35,说明对照中的烟粉虱不带毒;饲毒后24和48 h烟粉虱的扩增Ct值为32.44 ± 0.24和31.92 ± 0.73,说明饲毒24和48 h的烟粉虱均能检测到病毒,根据建立的检测烟粉虱标准曲线,推算出饲毒24和48 h的烟粉虱含有CLCuMV(4.0 ± 1.6)× 102和(1.3 ± 0.2)× 102 μL-1,前者显著性地大于后者(t = 2.445,P = 0.04).结果分析表明,利用实时荧光定量PCR可对介体内的CLCuMV进行定量检测.

    本试验建立了一种用实时荧光定量PCR检测木尔坦棉花曲叶病毒的方法,本方法的灵敏度约是常规PCR的10倍,检测最低浓度达到5.2 × 101 μL-1.王洪星等[18]应用RT-PCR检测甘蔗黄叶病毒和高粱花叶病毒,检出水平分别为5 × 102和2.5 × 102 μL-1.李金磊等[19]建立的RT-PCR检测猪传染性胃肠炎病毒灵敏度可达5 × 101μL-1,与本试验灵敏度类似.

    本研究利用实时荧光定量PCR检测寄主植物及介体昆虫的CLCuMV带毒量,检测的显症嫩叶与显症老熟叶片的CLCuMV含量并无显著差异.笔者还发现将烟粉虱转移到非番茄黄化曲叶病毒寄主植物上时,随着时间延长,昆虫体内番茄黄化曲叶病毒含量递减.本试验结果表明,饲毒24 h烟粉虱获毒量显著性地高于饲毒48 h烟粉虱获毒量,但CLCuMV在昆虫介体烟粉虱中的增殖情况还需要进一步的试验验证.

    建立并完善CLCuMV的检测体系,将有助于比较CLCuMV在不同寄主植物中的传播情况,也可以监测CLCuMV在昆虫介体中的繁殖动态,最终有效预防木尔坦棉花曲叶病的传播.

  • 图  1   基于44个青枯菌接种5个番茄品种发病率的聚类分析结果

    Figure  1.   Clustering results based on the incidence of 44 Ralstonia solanacearum strains inoculated to five tomato cultivars

    图  2   基于青枯菌egl基因序列的系统发育分析

    将序列变种相同的菌株置于同一水平分支上,“◆”代表参考菌株

    Figure  2.   Phylogenetic analysis based on sequence of egl gene of Ralstonia solanacearum

    Strains with the same sequevar are settled at the same branch, “◆” indicates reference strain

    表  1   参考序列信息

    Table  1   Referenced sequence information

    参考菌株
    Reference strain
    寄主
    Host
    来源
    Origin
    演化型
    Phylotype
    序列变种
    Sequevar
    egl登录号
    Accession number
    JT523 马铃薯 Solanum tuberosum 留尼汪岛 Reunion 13 AF295252
    PSS8 番茄 S. lycopersicum 中国 China 14 FJ561066
    PSS358 番茄 S. lycopersicum 中国 China 15 EU407298
    UW151 Zingiber officinale 澳大利亚 Australia 16 AF295254
    P11 花生 Arachis hypogaea 中国 China 17 FJ561068
    GMI1000 番茄 S. lycopersicum 法国 France 18 AF295251
    JT519 天竺葵 Pelargonium hortorum 留尼汪岛 Reunion 31 GU295032
    PSS219 番茄 S. lycopersicum 中国 China 34 FJ561167
    O3 橄榄树 Olea europaea 中国 China 44 FJ561069
    TB28 烟草 Nicotiana tabacum 中国 China 44 FJ561127
    Tb43 烟草 N. tabacum 中国 China 44 FJ561129
    BdlI 木槿 Hibiscus syriacus 中国 China 44 FJ561098
    CIIP365 马铃薯 S. tuberosum 菲律宾 The Philippines 45 GQ907151
    MADI7 辣椒 Capsicum annuum 马达加斯加 Madagascar 46 GU295040
    GMI8254 番茄 S. lycopersicum 印度尼西亚 Indonesia 47 GU295014
    M2 桑树 Morus alba 中国 China 48 FJ561067
    CMR87 番茄 S. lycopersicum 喀麦隆 Cameroon 35 EF439727
    CMR12 番茄 S. lycopersicum 喀麦隆 Cameroon 52 EF439725
    CMR39 番茄 S. lycopersicum 喀麦隆 Cameroon 41 EF439726
    CFBP2972 马铃薯 S. tuberosum 马提尼克 Martinique 35 EF371809
    UW551 天竺葵 P. hortorum 肯尼亚 Kenya 1 DQ657596
    ICMIP7963 马铃薯 S. tuberosum 肯尼亚 Kenya 7 AF295263
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    续表 1 Continued table 1
    参考菌株
    Reference strain
    寄主
    Host
    来源
    Origin
    演化型
    Phylotype
    序列变种
    Sequevar
    egl登录号
    Accession number
    UW162 香蕉 Musa nana 秘鲁 Peru 4 AF295256
    MOLK2 香蕉 M. nana 菲律宾 The Philippines 3 EF371841
    CMR66 木龙葵 S. scabrum 喀麦隆 Cameroon 49 EF439729
    JT525 天竺葵 P. hortorum 留尼汪岛 Reunion 19 AF295272
    CFBP3059 茄子 S. melongena 布基纳法索 Burkina Faso 23 AF295270
    NCPPB332 马铃薯 S. tuberosum 津巴布韦 Zimbabwe 22 DQ657649
    MAFF301558 马铃薯 S. tuberosum 日本 Japan 8 AY465002
    Psi 番茄 S. lycopersicum 印度尼西亚 Indonesia 10 EF371804
    ACH732 番茄 S. lycopersicum 澳大利亚 Australia 11 GQ907150
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    表  2   青枯菌生化变种鉴定1)

    Table  2   Biovar identification of Ralstonia solanacearum

    来源
    Origin
    菌株编号
    No. of strain
    菌株数/个
    Strain quantity
    麦芽糖
    Maltose
    纤维二糖
    Cellobiose
    乳糖
    Lactose
    甘露醇
    Mannitol
    山梨醇
    Sorbitol
    甜醇
    Dulcitol
    生化变种
    Biovar
    于都县
    Yudu County
    Tm1901~Tm1908、
    Tm1920~Tm1924
    9 + + + + + +
    上犹县
    Shangyou County
    Tm1913~Tm1919 7 + + + + + +
    石城县
    Shicheng County
    Tm1925~Tm1929 4 + + + + + +
    瑞金市
    Ruijin City
    Tm1930、Tm1931 2 + + + + + +
    大余县
    Dayu County
    Tm1932~Tm1934 3 + + +
    安远县
    Anyuan County
    Tm1935~Tm1937 3 + + + + + +
    会昌县
    Huichang County
    Tm1938~Tm1943 6 + + + + + +
    兴国县
    Xingguo County
    Tm2046、Tm2047 2 + + + + + +
    全南县
    Quannan County
    Tm1944、Tm1945、
    Tm2048~Tm2058
    8 + + + + + +
     1)“+”表示被利用,“−”表示不被利用
     1)“+”indicates to be used, “−” indicates not to be used
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    表  3   44个青枯菌接种5个番茄品种的发病率及聚类分组

    Table  3   Incidence of 44 Ralstonia solanacearum strains inoculated to five tomato cultivars and their clustering results

    来源
    Origin
    菌株编号
    No. of strain
    发病率/% Incidence rate 聚类分组
    Cluster
    红圣佳2号
    Hongshengjia 2
    金艳
    Jinyan
    多宝
    Duobao
    粉霸
    Fenba
    精棚T红
    Jingpeng T red
    于都县 Yudu County Tm1901 55 80 95 100 95
    Tm1902 90 85 75 100 100
    Tm1903 85 80 95 100 100
    Tm1904 90 95 70 100 100
    Tm1907 85 75 80 100 100
    Tm1908 37 65 60 72 90
    上犹县 Shangyou County Tm1913 90 70 90 100 90
    Tm1914 95 75 85 95 100
    Tm1915 85 75 95 90 100
    Tm1916 60 75 90 85 95
    Tm1917 40 70 85 90 100
    Tm1918 50 70 95 90 100
    Tm1919 0 5 15 40 65
    于都县 Yudu County Tm1920 80 85 80 90 90
    Tm1923 50 80 95 68 95
    Tm1924 80 95 85 85 100
    石城县 Shicheng County Tm1925 65 85 85 95 85
    Tm1926 95 100 90 100 100
    Tm1928 80 75 100 95 100
    Tm1929 35 21 40 50 95
    瑞金市 Ruijin City Tm1930 90 95 95 100 100
    Tm1931 100 100 100 100 100
    大余县 Dayu County Tm1932 20 35 65 45 80
    Tm1933 35 35 55 80 90
    Tm1934 20 40 75 60 100
    安远县 Anyuan County Tm1935 40 52 85 95 100
    Tm1936 30 35 90 80 89
    Tm1937 85 95 90 100 95
    会昌县 Huichang County Tm1938 90 85 95 100 100
    Tm1939 80 85 95 100 95
    Tm1940 85 90 100 95 100
    Tm1941 100 84 100 100 100
    Tm1942 95 100 100 100 95
    Tm1943 40 85 95 90 100
    全南县 Quannan County Tm1944 100 100 95 100 100
    Tm1945 100 90 100 90 100
    兴国县 Xingguo County Tm2046 100 100 100 100 100
    Tm2047 100 100 100 100 100
    全南县 Quannan County Tm2048 100 95 100 100 89
    Tm2049 100 95 100 100 90
    Tm2050 100 95 100 100 100
    Tm2054 100 100 100 100 100
    Tm2055 100 95 100 100 100
    Tm2058 90 90 100 100 100
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    表  4   44个青枯菌对8个噬菌体的敏感性测定

    Table  4   Sensitivity determination of 44 Ralstonia solanacearum to eight bacteriophages

    来源
    Origin
    菌株编号
    No. of strain
    数量/个
    Quantity
    噬菌体1) Bacteriophage 敏感性2)
    Sensitivity
    P1555-L P1555-1 P1555-M P1556-1 P1556-2 P7-1 P574 P1521
    于都县
    Yudu County
    Tm1901~Tm1907 5 + + + + M
    Tm1908 1 + + + + + + + + V
    上犹县
    Shangyou County
    Tm1913、Tm1914 2 + + + + + + + S
    Tm1915~Tm1919 4 + + + + + + + + V
    Tm1916 1 + + + + + + + S
    于都县
    Yudu County
    Tm1920~Tm1924 3 + + + + + + + + V
    石城县
    Shicheng County
    Tm1925~Tm1929 3 + + + + + + + + V
    Tm1928 1 + + + + + + + S
    瑞金市
    Ruijin City
    Tm1930、Tm1931 2 + + + + + + + + V
    大余县
    Dayu County
    Tm1932~Tm1934 3 + + + + + + + + V
    安远县
    Anyuan County
    Tm1935~Tm1937 3 + + + + + + + + V
    会昌县
    Huichang County
    Tm1938、Tm1939 2 + + + + M
    Tm1940~Tm1943 4 + + + + + + + + V
    全南县
    Quannan County
    Tm1944 1 + + + + + M
    Tm1945 1 + + + M
    兴国县
    Xingguo County
    Tm2046 1 + + + + + + + + V
    Tm2047 1 + + W
    全南县
    Quannan County
    Tm2048、Tm2049 2 + + + + + M
    Tm2050 1 + + + + M
    Tm2054~Tm2058 3 + + + + + + + + V
     1)“+”表示产生噬菌斑,“–”表示不产生噬菌斑;2)M:中等,S:强,V:特强,W:弱
     1) “+” indicates having plaques,“–” indicates no having plaques;2) M: Moderate, S: Strong, V:Very strong, W: Weak
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图(2)  /  表(5)
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出版历程
  • 收稿日期:  2021-01-24
  • 网络出版日期:  2023-05-17
  • 刊出日期:  2022-01-09

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