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甜糯双隐性基因型玉米种质的创制与评价

宫捷, 孙磊磊, 张丽萍, 王青峰, 杨瑞春, 李小琴, 冯发强

宫捷, 孙磊磊, 张丽萍, 等. 甜糯双隐性基因型玉米种质的创制与评价[J]. 华南农业大学学报, 2019, 40(2): 6-13. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.201806010
引用本文: 宫捷, 孙磊磊, 张丽萍, 等. 甜糯双隐性基因型玉米种质的创制与评价[J]. 华南农业大学学报, 2019, 40(2): 6-13. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.201806010
GONG Jie, SUN Leilei, ZHANG Liping, et al. Creation and evaluation for corn germplasm of double recessive sweet-waxy genotype[J]. Journal of South China Agricultural University, 2019, 40(2): 6-13. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.201806010
Citation: GONG Jie, SUN Leilei, ZHANG Liping, et al. Creation and evaluation for corn germplasm of double recessive sweet-waxy genotype[J]. Journal of South China Agricultural University, 2019, 40(2): 6-13. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.201806010

甜糯双隐性基因型玉米种质的创制与评价

基金项目: 广东省科技计划项目(2015A020209113,2017B090907023);广州市科技计划项目(201607010248)
详细信息
    作者简介:

    宫捷(1995—),女,硕士研究生,E-mail: 550587421@qq.com

    孙磊磊(1989—),男,硕士研究生,E-mail: 361385400@qq.com;†对本文贡献相同

    通讯作者:

    冯发强(1976—),男,助理研究员,博士,E-mail: fengfq@scau.edu.cn

  • 中图分类号: S513

Creation and evaluation for corn germplasm of double recessive sweet-waxy genotype

  • 摘要:
    目的 

    创制甜糯基因双隐性玉米自交系,了解甜糯基因双隐性对品质性状的影响,为甜糯玉米育种提供参考和依据。

    方法 

    以1份甜玉米Zea mays ssp. saccharata骨干自交系(M01)和3份糯玉米Z. mays var. ceratina自交系(L33、L35和L38)为材料,用与糯玉米隐性基因wx紧密连锁的分子标记辅助筛选,F2代得到甜糯双隐性玉米材料,连续自交,F4代得到11个纯合甜糯双隐性玉米自交系,检测其可溶性糖含量、淀粉含量及乳熟期籽粒果皮厚度,并与对应的甜、糯玉米亲本进行比较分析。

    结果 

    wx基因紧密连锁的引物phi061在甜、糯玉米亲本间扩增出清晰且呈共显性的条带,可在F2代作为糯质基因的前景选择标记。11份甜糯双隐性自交系材料的可溶性糖质量分数平均为12.27%,比甜玉米亲本高2.55%,远高于糯玉米亲本;淀粉质量分数平均为19.73%,比甜玉米亲本低3.77%,远低于糯玉米亲本;乳熟期籽粒冠部和背胚部果皮厚度均介于对应的杂交亲本之间。

    结论 

    通过分子标记辅助选择可快速创制甜糯纯合双隐性玉米材料,其可溶性糖含量高于甜质亲本,淀粉含量低于甜质亲本,果皮厚度介于双亲之间。

    Abstract:
    Objective 

    To create double recessive sweet-waxy corn inbred lines, identify the effects of double recessive sweet-waxy genes on quality traits, and provide a reference and basis for sweet-waxy corn breeding.

    Method 

    The double recessive sweet-waxy corn materials with wxwxsh2sh2 genotype were screened by molecular marker that linked with waxy corn recessive gene wx in F2 populations obtained from one elite sweet corn line (M01) and three waxy corn lines (L33, L35 and L38). Then these materials were self-pollinated continuously, and 11 pure double recessive sweet-waxy corn inbred lines with wxwxsh2sh2 genotype were obtained in F4 populations. Their soluble sugar content, total starch content and pericarp thickness were measured and compared with the corresponding sweet corn parent and waxy corn parent.

    Result 

    The primer phi061, which was tightly linked to wx gene, amplified clear and codominant bands between sweet corn parent and waxy corn parent and was selected as the foreground selection marker of waxy gene. The average content of soluble sugar was 12.27% for double recessive sweet-waxy corn inbred lines, which was 2.55% higher than that sweet corn parent and far higher than that waxy corn parent. The average total starch content was 19.73%, which was 3.77% lower than that sweet corn parent, and far lower than that waxy corn parent. The pericarp thicknesses of crown and abgerminal regions of double recessive maize lines were in the interval of their corresponding parents.

    Conclusion 

    It is a feasible way to create rapidly the double recessive sweet-waxy corn lines by molecular marker assisted selection. Their average content of soluble sugar is higher than that of sweet corn parent, the average content of starch is lower than that of sweet parent, and the average pericarp thickness is between their parents.

  • 植物不能运动,也没有声音语言,植物间以及植物与其他生物之间如何进行通信一直是个未解之谜。面对动物和病原微生物等天敌的侵袭,植物如何开展防御一直是科学家们非常感兴趣的问题。植物能够进行光合作用,擅长合成各种各样的有机化合物。截止2019年5月,从植物中分离鉴定出的天然有机化合物已超过20万种,这些化合物中有部分是挥发性有机化合物(Volatile organic compounds,VOCs),它们是一类相对分子质量小的亲脂性化合物,在常温下容易从植物中释放出来散发到周围环境中,介导植物与周围环境中同种和不同种生物间的相互作用,从吸引传粉和种子传播媒介,到保护自己免受植食性动物、病原菌和寄生生物的侵害。植物通过释放挥发物将植物与周围其他生物连接形成一个化学通信网络,调控着种内与种间关系,进而影响生态系统的结构与功能。近年来,植物挥发物介导的生态学功能又有很多新的发现与进展,本文重点对植物挥发物介导的种内与种间关系的研究进展进行综述。

    植物在生长发育过程中能够源源不断地向环境中释放VOCs,特异性的VOCs不仅能表明植物的身份特征,还能反映出植物在不同生长发育时期和不同环境条件的生理状态,甚至能细化到不同器官[1]。目前已从超过90科的植物中分离出1 700种以上的VOCs[2],主要包括萜类化合物、脂肪酸衍生物、苯环型和苯丙素类化合物、C5-支链化合物、含氮和含硫化合物等[3]。健康植株未受侵害时合成的挥发物为基础性的,而在遭受外界环境胁迫,尤其是植食性昆虫攻击后,植物释放的挥发物无论是在种类上还是在数量上都会明显增加[4]。植物虫害诱导挥发物(Herbivore-induced plant volatiles,HIPVs)是植食性昆虫为害而促使植物产生一系列代谢和生理生化变化,诱导植物合成并有规律释放的挥发性化学信号物质,是植物与周围生物进行化学通信与信息交流的重要媒介[5-6]。HIPVs的化学组分因植物与植食性昆虫种类的不同而有很大差异,目前研究较为深入的主要包括萜类化合物、绿叶性挥发物和芳香族化合物[3, 7]。绿叶性挥发物是植物挥发物中含有6个碳原子的醛、醇和酯类。正常情况下植株不释放或仅释放少量的绿叶性挥发物,而当受到虫害胁迫后植株能在数秒内迅速诱导释放此类物质。

    植物挥发物在植物的繁衍以及防御病虫为害中具有多重生态学功能,农业生产实践中已经有一些利用植物挥发物进行田间害虫防治的案例[8-10]。尽管植物挥发物的田间应用在某些作物中获得了一定成效,但对植物挥发物在田间释放后的生态学效应还缺乏全面深入的了解。深入研究挥发物如何影响生态系统中生物种内和种间关系,尤其是对植食性害虫及其天敌的影响,对于植物挥发物的进一步应用非常重要。

    植物挥发物释放到环境中,如何对生态系统产生影响从而有益于植物的生长与繁衍,一直以来是备受关注的问题。

    在植物繁殖方面,一般认为植物通过花朵和花蜜释放挥发物来吸引传粉昆虫[3, 11];通过植物果实释放挥发物来吸引种子传播媒介[12](图1)。这方面的研究很多,但是目前只鉴定出少数的能够吸引特定传粉昆虫的化合物[3]

    图  1  植物挥发物介导的植物与周围环境相互作用的概述[12]
    Figure  1.  An overview of plant volatiles-mediated interactions between plants and their surroundings

    在植物抗性方面,植物挥发物的生态学功能被广泛报道,植物组织释放的挥发物能够抑制病原菌分生孢子的萌发,能保护植物不受病原菌的侵染[13-14]。在植物防御昆虫方面,对于植物HIPVs的功能研究比较深入。在直接防御方面,HIPVs可以抑制鳞翅目昆虫的生长、使幼虫麻痹或导致昆虫中毒,从而减少昆虫取食植物或趋避害虫[15-17];间接防御方面,HIPVs不但可以作为互利素引诱捕食性或寄生性天敌来减轻害虫对植物的危害[18-20],而且在同一生态系统中,HIPVs可作为植物间通信信号,被同一植株的健康部位和邻近植株识别,诱发邻近植物增强对害虫的防御反应[21-23](图1)。

    植物挥发物的释放对于植物来说也可能是一把双刃剑[24]。植物与植食性昆虫在长期的协同进化过程中形成了一系列防御与反防御的机制。随着植物–昆虫相互关系研究的深入以及昆虫分子生物学的发展,越来越多植食性昆虫适应宿主植物的反防御策略逐步被认识[25-28]。挥发物作为植物强大的防御武器,植食性昆虫自然也有相对应的反防御策略[29-32]。本文将结合最新的研究结果对以上几个方面进行综述。

    自然界中有超过87%的开花植物是通过昆虫媒介授粉的,这些植物产生花香和其他信号吸引传粉媒介[33]。在植物所有器官中,花释放的挥发物种类和数量最多,这些挥发物被用以吸引传粉媒介从而确保植物能成功授粉和繁殖[34]。花释放的挥发物具有物种特异性,能吸引相应的传粉者[35]。由鳞翅目蛾类昆虫授粉的植物通常释放出大量的苯类化合物,并且较少释放萜类化合物和含氮化合物[35],而蝙蝠授粉的花主要释放含硫挥发物[36]。另一方面,传粉者能够区分具有独特比例和浓度的复杂的多组分挥发性物质,并产生对特定混合物的偏好。这些偏好调节着传粉者的觅食行为,并促进花的恒定性(即反复访问具有特定挥发性特征的花的倾向),从而使得花粉向同种植物雌蕊转移增加并防止异种花粉堵塞柱头[37]。更有意思的是,已经授粉的花朵会改变释放的挥发物,驱逐传粉媒介的进一步访问,并将其引导至尚未授粉的花朵[38]

    花释放的挥发物在植物生殖隔离中具有重要作用,特定物种的花吸引特定的传粉者。挥发性混合物的性质,包括浓度、成分比例和特异性的化合物等,可能有助于亲缘关系很近的植物物种间的生殖隔离。兰科一些属的每种兰花只吸引一种传粉动物协助传粉[39]。某些兰花花朵释放的挥发物与雌性传粉者的性信息素相似,从而欺骗性地吸引雄性传粉者[40]。一些植物花的挥发性具有抗菌活性,或对食花者具有威慑作用,从而保护植物的花器官[41]

    此外,最近的研究表明食叶动物会改变花释放的挥发物,进而对吸引传粉昆虫产生负面影响[42]。夜间开花的野生烟草Nicotiana attenuata花中的倍半萜(E)−α−香柠檬烯的释放有助于烟草天蛾Manduca sexta成虫介导的授粉,而叶片中虫害诱导的相同化合物可以吸引烟草天蛾幼虫的天敌。这个化合物在花和叶片中的合成由同一个倍半萜合成酶基因(NaTPS38)控制,这个基因的组织和时间差异表达使烟草白天吸引害虫天敌,夜间吸引传粉者,有助于植物解决传粉昆虫也是食草害虫的困境[43]。苄基丙酮(Benzylacetone,BA)是野生烟草的主要花香成分,它吸引夜间传粉者,如烟草天蛾。对于这种传粉媒介,BA不仅对于同种植物之间的花粉运输至关重要,而且对于蛾在夜间对花的短距离处理中也是必不可少的。同时,BA又是植食性昆虫十一星黄瓜甲虫Diabrotica undecimpunctata的取食抑制剂,有重要的防御功能[42]。花香中关键成分β−反式−香柠檬烯决定了斑点沟酸浆Mimulus guttatus的传粉者大黄蜂Bombus impatiens的喜好,近亲繁殖的沟酸浆释放的香柠檬烯少,远缘杂交的沟酸浆释放的香柠檬烯多,对传粉者的吸引力强[44],远缘杂交品种通过释放更多挥发物提高繁殖能力。

    植物挥发物在一株植物不同器官、同种植物不同个体以及不同种植物间的化学通信现象一直存在争议,但随着植物分子生物学及试验方法的发展与完善,越来越多的研究证明植物挥发物在植物间通信中发挥着重要的信号传递作用[45-47]

    植物遭受植食性昆虫为害时,受害部位产生的挥发物可以作为系统损伤信号进行传递,引发植物系统免疫反应从而抵御昆虫为害[48]。玉米在遭受灰翅夜蛾Spodoptera littoralis侵害时可通过合成吲哚快速将防御信号传递到整株植物而提高对害虫的系统抗性,同时还可防御警备邻近玉米植株提高抗虫性[49]。植物挥发物介导同种植物间的通信功能已有大量相关研究。已经发现萜类化合物、顺−3−己烯醇、水杨酸甲酯、茉莉酸甲酯、顺式茉莉酮和吲哚等多种挥发物在同种植物间的信号传递中发挥着关键作用[47, 49-53]。健康番茄植株在察觉到邻近受虫害番茄释放的绿叶性挥发物顺−3−己烯醇后,在体内将挥发物转化成对昆虫有毒性的糖苷,从而提高自身的抗虫性[23]。植物在胁迫环境(如虫害)下产生的挥发物可通过两种主要的机制诱导提高邻近植株的抗性。第一种是直接启动防御,包括诱导防御害虫相关基因的表达[54],诱导合成防御性物质(如酚类、蛋白酶抑制剂)[55- 56]和防御酶(如苯丙氨酸解氨酶、多酚氧化酶和过氧化物酶等)[57],诱导分泌蜜露[58]或者释放HIPVs吸引昆虫的天敌[59]等。第二种机制是产生防御警备[60],接收到挥发物信号后,健康植株没有立即启动直接防御,而是进入防御警备状态,当受到类似胁迫(如虫害)时,受挥发物警备的植物会更快地产生更强烈的防御反应[12, 21, 55, 61](图1)。植物通过挥发物进行胁迫信号的传递现象也发生在不同种的植物之间[62-64],受害的山艾树Artemisia tridentata释放的挥发性物质能诱导附近烟草植株产生对蚱蜢和夜蛾的抗性[62-64]。即使在野外自然条件下,山艾树与烟草间的化学通信也能被检测到。

    植物挥发物在植物与昆虫神奇的协同进化中扮演着重要角色,其介导的植物–昆虫互作是化学生态学与植物保护学研究的一个热点。植物在感受到植食性昆虫爬行、取食、产卵等多种信号时,都可被诱导合成并释放HIPVs,进而对昆虫的迁移、取食、交配和产卵等行为产生影响[7, 65-67]

    从植物防御角度来看,HIPVs可以直接使昆虫中毒从而抑制其生长,这可能是HIPVs在最初的进化中主要的功能[15];HIPVs也可以通过趋避昆虫从而保护植物[17, 68],趋避效应的产生可能是HIPVs本身对于昆虫就具有忌避效应[68],也可能是植食性昆虫为了避开潜在的竞争者或者为了躲避天敌产生的结果[69-70]

    从昆虫反防御角度来看,植食性昆虫可以巧妙地利用多营养级之间的化学通信与相互作用来提高自身对环境的适应。植食性昆虫可利用植物HIPVs寻找与定位寄主[71]。玉米蚜虫Rhopalosiphum maidis可通过感知植物HIPVs来寻找合适的食物资源[29];美洲烟草天蛾等可借助烟草植株的HIPVs选择宿主产卵[30-31];在侵害宿主植物时,豌豆蚜Adalia bipunctata体内的共生菌可以协助抑制植物HIPVs的释放,降低豌豆蚜被天敌寄生的危险,从而增强植食性昆虫的适应性[32]。近期研究发现灰翅夜蛾Spodoptera mauritia幼虫在接触寄主植物的HIPVs吲哚后,可以通过改变自身体味,降低寄生蜂对幼虫的定位与寄生能力[72]

    植物、植食性昆虫及其天敌相互之间的营养作用是所有陆地生态系统的组成部分,HIPVs在三者相互作用中起关键作用,因为它们可以吸引捕食者和寄生性天敌到植食性昆虫入侵的植株上。植食性昆虫的天敌可以利用寄主植物和植食性昆虫释放的化学信息物质对寄主进行定位[73]。大量的研究表明,许多植食性昆虫的天敌能够被HIPVs吸引并能有效利用植物HIPVs对为害昆虫进行更迅速和准确的捕食或寄生[7]。目前的研究表明,HIPVs中发挥引诱天敌作用的组分主要包括萜类化合物、绿叶性挥发物、酚类化合物(如水杨酸甲酯)和吲哚等[7, 74]。通过遗传改良技术在拟南芥Arabidopsis thaliana中引入的倍半萜合酶,可以产生2种新的萜烯挥发物,使植物吸引捕食性天敌智利小植绥螨Phytoseiulus persimilis来控制害虫为害[75]。利用气相色谱–触角电位技术可以对HIPVs混合物中引诱天敌的主要有效成分进行筛选鉴定。有意思的是,含量最多的挥发物组分不一定主要起到引诱天敌的功能[18]。很多含量很低的挥发物在植物–昆虫互作中却起关键作用[76]

    植物挥发物除了介导植物–害虫–天敌三营养级间的关系外,近年来发现植物挥发物也参与和微生物的互作,包括植物病原菌、昆虫病原真菌和菌根真菌等[10, 13-14, 77]。很多植物花朵释放的挥发物具有抗菌或抗真菌活性,从而保护植物生殖器官免受病原菌的侵害[78-80](图1)。在拟南芥中沉默绿叶性挥发物合成途径中的脂氢过氧化物裂解酶基因(HPL),可导致拟南芥对灰霉病病原菌Botrytis Cinerea的敏感度提高,而过表达HPL可显著提高拟南芥对病原菌的抗性[13]。在对利马豆Phaseolus lunatus的研究中发现,经过抗性诱导挥发物处理过的利马豆健康植株,可提前进入防御警备状态,从而在不影响其正常生长发育的情况下增强对植物病原菌的抗性[81]。拟南芥释放的绿叶性挥发物中的(Z)−3−己烯醇、(E)−2−己烯醛和(Z)−3−己烯醛等能诱导植物中多个抗性基因的表达,从而提高拟南芥对灰霉病菌的抗性[82]。植物在遭受虫害后,还能通过释放挥发物促进昆虫病原真菌的菌丝蔓延、孢子萌发、致病、毒力作用等过程,帮助植物提高对昆虫的防御能力[83-84]

    在农业生产中,农作物与害虫之间的相互关系研究是植物保护学家关注的焦点。在认识植物挥发物,尤其是HIPVs在植物与昆虫互作以及植物防御中重要的生态学功能的同时,植物挥发物在田间害虫控制中的应用也从以下几个方面展开:直接利用人工合成的挥发物作为天敌或害虫的引诱剂,或害虫趋避剂[9, 85]。中国农业科学院郭予元院士团队在棉田应用挥发物引诱天敌,发现(Z)−3−乙酸叶醇酯对七星瓢虫Coccinella septempunctata等天敌有显著引诱作用,水杨酸甲酯(Methyl salicylate,MeSA)能显著引诱草间小黑蛛Hylyphantes graminicola和食蚜蝇[86];诱导植物合成与释放更多挥发物控制害虫[87-88],经茉莉酸处理后的冬小麦,不但能显著排斥4 种蚜虫,还吸引到更多的七星瓢虫和蚜茧蜂[87];将植物挥发物应用在“推–拉”策略(Push-pull strategy)中[8, 10, 89],获得巨大成效的是在肯尼亚对玉米螟Ostrinia nubilalis和玉米茎蛀褐夜蛾Helotropha leucostigma的防治[90];应用挥发物突变体植物或基因改良植物[77, 91],例如,将草莓萜烯合成酶在拟南芥中过表达,使转基因植株释放大量的芳樟醇趋避蚜虫[92]

    尽管挥发物的田间应用在某些作物中已获得一定成效,但是,对于植物挥发物在田间释放后的生态学效应还缺乏深入、全面的了解[93]。比如,通过挥发物引诱天敌数量增加能否有效控制害虫的种群数量仍然存在疑问;对目标天敌有吸引作用的往往是几种挥发物在特定比例下的共同作用,当前应用主要是挥发物单组分,而对混合组分的研究明显不足;另外,更加重要的是,除天敌外,植食性昆虫也可以利用挥发物寻找合适的食物资源和产卵宿主,现有的研究主要关注天敌,而忽略了其对害虫的潜在影响[69]。以上问题使得将挥发物应用于调控昆虫种群依然存在无法预测和难以控制的结果。

    过去30年,对植物挥发物,尤其是HIPVs的研究不断深入,我们对于植物挥发物介导的生物种内和种间关系有了许多新的认识。农业工作者也积极尝试将植物挥发物应用到田间病虫害等有害生物的防治中。但植物释放挥发物是一个复杂的生理生化过程,在田间环境中同时受到多重因素的制约与影响。人们对植物挥发物的生态学功能了解仍然有限,利用植物挥发物进行农业害虫和病原菌的防治仍然存在很大争议。今后应该加强以下几个方面的研究:在野外自然条件下研究植物挥发物的生态学功能,目前关于挥发物介导种内与种间关系的分子机制研究大多是在实验室条件下进行的,其生态学意义有待进一步验证;植物挥发物受体蛋白的鉴定,植物挥发物介导的化学通信最直接的分子证据就是受体蛋白的存在,除了乙烯受体蛋白外,还没有鉴定到其他植物挥发物的受体蛋白[94],鉴定受体蛋白可为植物挥发物在植物体内或者在物种间信号转导的研究奠定基础[95];阐明植物挥发物的合成与释放机制;评估植物挥发物在田间环境中对整体生态系统的影响以及植食性昆虫演化的各种反防御机制。

  • 图  1   引物phi022、phi027、phi061在甜玉米自交系和糯玉米自交系之间的多态性筛选

    Figure  1.   The polymorphism screenings between sweet corn line (M01) and wax corn lines (L33, L35 and L38) by phi022, phi027 and phi061 primers

    图  2   利用引物phi061鉴定L35×M01得到的F2群体中的双隐性植株

    1~21为以L35×M01得到的F2群体全基因组DNA为模板的PCR扩增产物,其中1、8、11和12为双隐性纯合单株;M01:甜玉米亲本,L35:糯玉米亲本

    Figure  2.   The identifications of double recessive sweet-waxy plants by primer phi061 in F2 populations obtained from L35×M01

    From one to 21 indicate the PCR amplification products from F2 population genomic DNA obtained from L35 × M01. 1, 8, 11 and 12 indicate their corresponded plants with double recessive sweet-waxy genotype; M01: Sweet corn parental line, L35: Waxy corn parental line

    表  1   鉴定wxwx基因型的3个SSR引物序列

    Table  1   The sequences of three SSR primers for wxwxgenotype identification

    引物名称
    Primer name
    序列(5′→3′)
    Primer sequence
    phi022 F-TGCGCACCAGCGACTGACC
    R-GCGGGCGACGCTTCCAAAC
    phi027 F-GCGTACGTACGACGAAGACAC
    R-CACAGCACGTTGCGGATTTCTCT
    phi061 F-AAACAAGAACGGCGGTGCTGATTC
    R-GACGTAAGCCTAGCTCTGCCAT
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    表  2   引物phi061在F2代群体中的χ2分析

    Table  2   The chi-square analysis of primer phi061 in F2 populations

    杂交组合
    Hybrid combination
    植株总数量
    Total plant number
    甜糯双隐性植株数量
    No. of plants with wxwxsh2sh2
    非甜糯双隐性植株数量
    No. of plants with Wx_sh2sh2
    χ2 P
    L33×M01 11 3 8 0.03 0.86
    L35×M01 21 4 17 0.40 0.53
    L38×M01 33 8 25 0.01 0.92
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    表  3   11份甜糯双隐性自交系材料与甜、糯质亲本可溶性糖含量

    Table  3   Soluble sugar contents in 11 double recessive sweet-waxy inbred lines and their parents

    株系
    Strain
    材料来源
    Material source
    w(可溶性糖)1)/%
    Soluble sugar content
    标准差/%
    Standard deviation
    变异系数
    Coefficient of variation
    变幅/%
    Range
    L1 L33×M01 13.44±1.63 2.82 0.21 11.03~16.54
    L2 L33×M01 9.74±0.55 0.94 0.10 8.65~10.30
    L3 L33×M01 12.04±1.02 1.76 0.15 10.00~13.08
    L4 L35×M01 13.76±1.91 3.31 0.24 9.96~15.97
    L5 L35×M01 10.73±1.01 1.74 0.16 8.95~12.43
    L6 L35×M01 14.15±0.48 0.84 0.06 13.43~15.07
    L7 L38×M01 13.88±1.45 2.51 0.18 12.27~16.77
    L8 L38×M01 10.07±0.30 1.05 0.10 9.25~11.25
    L9 L38×M01 12.42±0.29 0.50 0.04 11.89~12.87
    L10 L38×M01 11.11±0.61 1.06 0.10 9.89~11.81
    L11 L38×M01 13.59±0.69 1.19 0.09 11.25~14.49
    M01 甜质亲本 9.72±0.39 0.67 0.07 9.25~10.49
    L33 糯质亲本 3.76±0.35 0.60 0.16 3.08~4.19
    L35 糯质亲本 5.13±0.85 1.48 0.29 3.97~6.78
    L38 糯质亲本 1.64±0.51 0.51 0.31 1.15~2.18
     1) 该列数据为平均值 ± 标准误
     1) Data in this column are average value ± standard error
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    表  4   11份甜糯双隐性自交系材料与甜、糯质亲本可溶性糖含量差异t检验1)

    Table  4   The t test of differences in soluble sugar contents between 11 double recessive sweet-waxy inbred lines and their parents

    株系
    Strain
    甜质亲本 Sweet parent 糯质亲本 Waxy parent
    t P t P
    L1 3.14* 0.02 8.23** <0.01
    L2 0.04 0.97 13.07** <0.01
    L3 3.02* 0.02 7.37** <0.01
    L4 2.93* 0.03 5.84** <0.01
    L5 1.33 0.23 6.01** <0.01
    L6 10.12** <0.01 31.23** <0.01
    L7 3.91** <0.01 11.69** <0.01
    L8 0.68 0.52 17.69** <0.01
    L9 7.91** <0.01 36.88** <0.01
    L10 2.72* 0.03 19.74** <0.01
    L11 6.94** <0.01 22.57** <0.01
     1) “*” 和 “**” 分别表示在 0.05 和 0.01 水平差异显著
     1) “*” and “**” indicate significant differences at 0.05 and 0.01 levels, respectively
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    表  5   11份甜糯双隐性自交系材料与甜、糯质亲本淀粉含量

    Table  5   Starch contents in 11 double recessive sweet-waxy inbred lines and their parents

    株系
    Strain
    材料来源
    Material source
    w(淀粉)1)/%
    Starch content
    标准差/%
    Standard deviation
    变异系数
    Coefficient of variation
    变幅/%
    Range
    L1 L33×M01 21.97±1.07 1.86 0.08 19.92~23.51
    L2 L33×M01 19.03±0.84 1.46 0.08 17.42~20.20
    L3 L33×M01 21.13±1.18 2.04 0.10 18.89~22.88
    L4 L35×M01 21.80±1.63 2.83 0.13 19.82~23.78
    L5 L35×M01 17.90±0.78 1.35 0.08 16.77~23.04
    L6 L35×M01 22.50±0.42 0.72 0.03 21.92~23.30
    L7 L38×M01 19.23±1.05 1.81 0.09 17.33~20.88
    L8 L38×M01 16.60±0.47 0.82 0.05 15.70~18.32
    L9 L38×M01 20.63±0.75 1.31 0.06 18.60~22.11
    L10 L38×M01 18.47±0.52 0.91 0.05 15.67~19.24
    L11 L38×M01 17.80±0.79 1.37 0.08 16.30~19.01
    M01 甜质亲本 23.50±0.99 1.71 0.07 21.92~25.31
    L33 糯质亲本 50.20±4.10 7.11 0.14 42.92~57.08
    L35 糯质亲本 46.33±1.86 3.22 0.07 42.88~49.03
    L38 糯质亲本 45.50±3.13 5.43 0.12 41.59~51.72
     1) 该列数据为平均值 ± 标准误
     1) Data in this column are average value ± standard error
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    表  6   11份甜糯双隐性自交系材料与甜、糯质亲本淀粉含量差异t检验1)

    Table  6   The t test of differences in starch contents between 11 double recessive sweet-waxy inbred lines and their parents

    株系
    Strain
    甜质亲本 Sweet parent 糯质亲本 Waxy parent
    t P t P
    L1 –1.05 0.35 –6.65** <0.01
    L2 –3.44* 0.03 –7.44** <0.01
    L3 –1.54 0.20 –11.45** <0.01
    L4 –0.83 0.45 –10.84** <0.01
    L5 –4.46* 0.01 –14.11** <0.01
    L6 –0.93 0.40 –7.27** <0.01
    L7 –2.96* 0.04 –7.95** <0.01
    L8 –3.96* 0.02 –9.42** <0.01
    L9 –2.31 0.08 –7.71** <0.01
    L10 –4.51* 0.01 –8.51** <0.01
    L11 –4.50* 0.01 –8.56** <0.01
     1) “*” 和 “**” 分别表示在 0.05 和 0.01 水平差异显著
     1) “*” and “**” indicate significant differences at 0.05 and 0.01 levels, respectively
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    表  7   11份甜糯双隐性自交系与甜、糯质亲本籽粒冠部和背胚侧果皮厚度1)

    Table  7   The pericarp thickness on the crown and dorsal embryo side of the grain in 11 double recessive sweet-waxy inbred lines and their parents

    株系
    Strain
    材料来源
    Material Source
    冠部 Crown 背胚侧 Dorsal embryo side
    果皮厚度/μm
    Pericarp thickness
    变幅/μm
    Range
    果皮厚度/μm
    Pericarp thickness
    变幅/μm
    Range
    L1 L33×M01 46.93±1.98 40.59~52.01 58.08±2.61 52.20~66.22
    L2 L33×M01 35.29±0.81 33.09~37.53 43.07±1.51 39.32~46.86
    L3 L33×M01 32.48±0.83 29.95~34.22 43.30±0.85 41.34~46.23
    L4 L35×M01 43.02±1.19 39.49~46.77 52.56±0.63 50.26~53.94
    L5 L35×M01 39.17±0.85 37.08~42.18 78.33±0.62 76.80~80.22
    L6 L35×M01 39.04±0.31 38.06~40.03 61.04±0.92 58.29~63.37
    L7 L38×M01 34.08±1.44 31.48~39.33 66.87±0.83 64.62~68.73
    L8 L38×M01 46.75±1.60 41.97~51.20 64.23±0.66 62.53~66.17
    L9 L38×M01 40.98±0.91 38.94~44.31 61.01±1.10 58.68~64.38
    L10 L38×M01 43.17±2.46 38.66~49.35 60.23±2.49 52.98~65.81
    L11 L38×M01 48.17±1.99 40.60~51.52 67.76±1.84 61.53~73.06
    M01 甜质亲本 28.07±1.56 24.19~32.89 38.02±0.45 37.02~39.24
    L33 糯质亲本 62.69±0.68 61.24~64.76 82.91±3.70 75.56~95.81
    L35 糯质亲本 63.87±0.76 62.12~65.93 95.63±1.86 89.29~100.35
    L38 糯质亲本 54.45±1.43 50.71~57.60 64.98±1.68 59.95~69.55
     1) 表中数据为平均值 ± 标准误
     1) Data in the table are average value ± standard error
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出版历程
  • 收稿日期:  2018-06-11
  • 网络出版日期:  2023-05-17
  • 刊出日期:  2019-03-09

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