Effects of shading and nitrogen application levels on growth and photosynthesis characteristics of Coffea arabica
-
摘要:目的
探明小粒咖啡Coffea arabica 幼树最佳的光照和施氮耦合模式。
方法试验设置3个遮光水平:不遮光(S0,自然光照)、轻度遮光(S1,65%自然光照)、重度遮光(S2,30%自然光照) , 3个施氮水平:无氮(N0,0 g·kg−1)、中氮(N1,0.20 g·kg−1)、高氮(N2,0.40 g·kg−1),研究不同遮光和施氮水平对小粒咖啡生长、日均光合特性和生物量累积的影响。
结果随遮光度的增加叶绿素总量呈上升趋势。与S0处理相比,S1处理小粒咖啡叶片净光合速率、气孔导度、表观光能利用效率和总生物量分别提高13.54%、18.54%、127.77%和12.41%;S2处理总生物量减少11.55%。与N0处理相比,N1处理叶片净光合速率、气孔导度、表观光能利用效率和总生物量分别增加27.25%、20.77%、10.80%和18.47%,N2处理的上述性状分别增加14.85%、25.99%、41.65%和21.02%。与S0N0相比,随遮光度和施氮量的增加叶片蒸腾速率和表观光能利用效率增大,叶片水分利用效率呈先增后减趋势。
结论小粒咖啡最优的遮光和施氮耦合模式为轻度遮光下高氮组合(S1N2),该组合有利于获得较高的叶片水光利用效率和生物量。
Abstract:ObjectiveTo explore the optimal coupled management mode of light intensity and nitrogen application for Coffea arabica seedlings.
MethodWe set three shading levels: No shade (S0, natural light), light shade (S1, 65% natural light) and severe shade (S2, 30% natural light), and three nitrogen levels: No nitrogen (N0,0 g·kg−1), medium nitrogen (N1, 0.20 g·kg−1), high nitrogen (N2, 0.40 g·kg−1). The effects of shading and nitrogen levels on growth, daily photosynthetic characteristics and biomass accumulation of C. arabica seedlings were studied.
ResultWith the increase of shading degree, the total chlorophyll content increased. Compared with S0 treatment, the net photosynthetic rate, stomatal conductance, light radiation use efficiency and total biomass of C. arabica in S1 treatment increased by 13.54%, 18.54%, 127.77% and 12.41%, respectively. The total biomass decreased by 11.55% in S2 treatment. Compared with N0 treatment, the net photosynthetic rate, stomatal conductance, light radiation use efficiency and total biomass of C. arabica in N1 treatment increased by 27.25%, 20.77%, 10.80% and 18.47%, respectively, and these traits in N2 treatment increased by 14.85%, 25.99%, 41.65% and 21.02%, respectively. Compared with S0N0, with the increases of shading and nitrogen levels, leaf transpiration rate and light radiation use efficiency increased, leaf water use efficiency firstly increased and then decreased.
ConclusionThe optimal mode of light and nitrogen management of C. arabica is the combination of light shade and high nitrogen (S1N2). This mode is suitable for obtaining high leaf water-radiation use efficiency and biomass.
-
Keywords:
- Coffea arabica /
- shading /
- nitrogen /
- photosynthetic characteristic /
- biomass
-
植物不能运动,也没有声音语言,植物间以及植物与其他生物之间如何进行通信一直是个未解之谜。面对动物和病原微生物等天敌的侵袭,植物如何开展防御一直是科学家们非常感兴趣的问题。植物能够进行光合作用,擅长合成各种各样的有机化合物。截止2019年5月,从植物中分离鉴定出的天然有机化合物已超过20万种,这些化合物中有部分是挥发性有机化合物(Volatile organic compounds,VOCs),它们是一类相对分子质量小的亲脂性化合物,在常温下容易从植物中释放出来散发到周围环境中,介导植物与周围环境中同种和不同种生物间的相互作用,从吸引传粉和种子传播媒介,到保护自己免受植食性动物、病原菌和寄生生物的侵害。植物通过释放挥发物将植物与周围其他生物连接形成一个化学通信网络,调控着种内与种间关系,进而影响生态系统的结构与功能。近年来,植物挥发物介导的生态学功能又有很多新的发现与进展,本文重点对植物挥发物介导的种内与种间关系的研究进展进行综述。
1. 植物挥发物的基本特征
植物在生长发育过程中能够源源不断地向环境中释放VOCs,特异性的VOCs不仅能表明植物的身份特征,还能反映出植物在不同生长发育时期和不同环境条件的生理状态,甚至能细化到不同器官[1]。目前已从超过90科的植物中分离出1 700种以上的VOCs[2],主要包括萜类化合物、脂肪酸衍生物、苯环型和苯丙素类化合物、C5-支链化合物、含氮和含硫化合物等[3]。健康植株未受侵害时合成的挥发物为基础性的,而在遭受外界环境胁迫,尤其是植食性昆虫攻击后,植物释放的挥发物无论是在种类上还是在数量上都会明显增加[4]。植物虫害诱导挥发物(Herbivore-induced plant volatiles,HIPVs)是植食性昆虫为害而促使植物产生一系列代谢和生理生化变化,诱导植物合成并有规律释放的挥发性化学信号物质,是植物与周围生物进行化学通信与信息交流的重要媒介[5-6]。HIPVs的化学组分因植物与植食性昆虫种类的不同而有很大差异,目前研究较为深入的主要包括萜类化合物、绿叶性挥发物和芳香族化合物[3, 7]。绿叶性挥发物是植物挥发物中含有6个碳原子的醛、醇和酯类。正常情况下植株不释放或仅释放少量的绿叶性挥发物,而当受到虫害胁迫后植株能在数秒内迅速诱导释放此类物质。
植物挥发物在植物的繁衍以及防御病虫为害中具有多重生态学功能,农业生产实践中已经有一些利用植物挥发物进行田间害虫防治的案例[8-10]。尽管植物挥发物的田间应用在某些作物中获得了一定成效,但对植物挥发物在田间释放后的生态学效应还缺乏全面深入的了解。深入研究挥发物如何影响生态系统中生物种内和种间关系,尤其是对植食性害虫及其天敌的影响,对于植物挥发物的进一步应用非常重要。
2. 植物挥发物的生态学功能
植物挥发物释放到环境中,如何对生态系统产生影响从而有益于植物的生长与繁衍,一直以来是备受关注的问题。
在植物繁殖方面,一般认为植物通过花朵和花蜜释放挥发物来吸引传粉昆虫[3, 11];通过植物果实释放挥发物来吸引种子传播媒介[12](图1)。这方面的研究很多,但是目前只鉴定出少数的能够吸引特定传粉昆虫的化合物[3]。
图 1 植物挥发物介导的植物与周围环境相互作用的概述[12]Figure 1. An overview of plant volatiles-mediated interactions between plants and their surroundings在植物抗性方面,植物挥发物的生态学功能被广泛报道,植物组织释放的挥发物能够抑制病原菌分生孢子的萌发,能保护植物不受病原菌的侵染[13-14]。在植物防御昆虫方面,对于植物HIPVs的功能研究比较深入。在直接防御方面,HIPVs可以抑制鳞翅目昆虫的生长、使幼虫麻痹或导致昆虫中毒,从而减少昆虫取食植物或趋避害虫[15-17];间接防御方面,HIPVs不但可以作为互利素引诱捕食性或寄生性天敌来减轻害虫对植物的危害[18-20],而且在同一生态系统中,HIPVs可作为植物间通信信号,被同一植株的健康部位和邻近植株识别,诱发邻近植物增强对害虫的防御反应[21-23](图1)。
植物挥发物的释放对于植物来说也可能是一把双刃剑[24]。植物与植食性昆虫在长期的协同进化过程中形成了一系列防御与反防御的机制。随着植物–昆虫相互关系研究的深入以及昆虫分子生物学的发展,越来越多植食性昆虫适应宿主植物的反防御策略逐步被认识[25-28]。挥发物作为植物强大的防御武器,植食性昆虫自然也有相对应的反防御策略[29-32]。本文将结合最新的研究结果对以上几个方面进行综述。
2.1 植物挥发物介导植物与传粉媒介的关系
自然界中有超过87%的开花植物是通过昆虫媒介授粉的,这些植物产生花香和其他信号吸引传粉媒介[33]。在植物所有器官中,花释放的挥发物种类和数量最多,这些挥发物被用以吸引传粉媒介从而确保植物能成功授粉和繁殖[34]。花释放的挥发物具有物种特异性,能吸引相应的传粉者[35]。由鳞翅目蛾类昆虫授粉的植物通常释放出大量的苯类化合物,并且较少释放萜类化合物和含氮化合物[35],而蝙蝠授粉的花主要释放含硫挥发物[36]。另一方面,传粉者能够区分具有独特比例和浓度的复杂的多组分挥发性物质,并产生对特定混合物的偏好。这些偏好调节着传粉者的觅食行为,并促进花的恒定性(即反复访问具有特定挥发性特征的花的倾向),从而使得花粉向同种植物雌蕊转移增加并防止异种花粉堵塞柱头[37]。更有意思的是,已经授粉的花朵会改变释放的挥发物,驱逐传粉媒介的进一步访问,并将其引导至尚未授粉的花朵[38]。
花释放的挥发物在植物生殖隔离中具有重要作用,特定物种的花吸引特定的传粉者。挥发性混合物的性质,包括浓度、成分比例和特异性的化合物等,可能有助于亲缘关系很近的植物物种间的生殖隔离。兰科一些属的每种兰花只吸引一种传粉动物协助传粉[39]。某些兰花花朵释放的挥发物与雌性传粉者的性信息素相似,从而欺骗性地吸引雄性传粉者[40]。一些植物花的挥发性具有抗菌活性,或对食花者具有威慑作用,从而保护植物的花器官[41]。
此外,最近的研究表明食叶动物会改变花释放的挥发物,进而对吸引传粉昆虫产生负面影响[42]。夜间开花的野生烟草Nicotiana attenuata花中的倍半萜(E)−α−香柠檬烯的释放有助于烟草天蛾Manduca sexta成虫介导的授粉,而叶片中虫害诱导的相同化合物可以吸引烟草天蛾幼虫的天敌。这个化合物在花和叶片中的合成由同一个倍半萜合成酶基因(NaTPS38)控制,这个基因的组织和时间差异表达使烟草白天吸引害虫天敌,夜间吸引传粉者,有助于植物解决传粉昆虫也是食草害虫的困境[43]。苄基丙酮(Benzylacetone,BA)是野生烟草的主要花香成分,它吸引夜间传粉者,如烟草天蛾。对于这种传粉媒介,BA不仅对于同种植物之间的花粉运输至关重要,而且对于蛾在夜间对花的短距离处理中也是必不可少的。同时,BA又是植食性昆虫十一星黄瓜甲虫Diabrotica undecimpunctata的取食抑制剂,有重要的防御功能[42]。花香中关键成分β−反式−香柠檬烯决定了斑点沟酸浆Mimulus guttatus的传粉者大黄蜂Bombus impatiens的喜好,近亲繁殖的沟酸浆释放的香柠檬烯少,远缘杂交的沟酸浆释放的香柠檬烯多,对传粉者的吸引力强[44],远缘杂交品种通过释放更多挥发物提高繁殖能力。
2.2 植物挥发物对邻近植物的影响
植物挥发物在一株植物不同器官、同种植物不同个体以及不同种植物间的化学通信现象一直存在争议,但随着植物分子生物学及试验方法的发展与完善,越来越多的研究证明植物挥发物在植物间通信中发挥着重要的信号传递作用[45-47]。
植物遭受植食性昆虫为害时,受害部位产生的挥发物可以作为系统损伤信号进行传递,引发植物系统免疫反应从而抵御昆虫为害[48]。玉米在遭受灰翅夜蛾Spodoptera littoralis侵害时可通过合成吲哚快速将防御信号传递到整株植物而提高对害虫的系统抗性,同时还可防御警备邻近玉米植株提高抗虫性[49]。植物挥发物介导同种植物间的通信功能已有大量相关研究。已经发现萜类化合物、顺−3−己烯醇、水杨酸甲酯、茉莉酸甲酯、顺式茉莉酮和吲哚等多种挥发物在同种植物间的信号传递中发挥着关键作用[47, 49-53]。健康番茄植株在察觉到邻近受虫害番茄释放的绿叶性挥发物顺−3−己烯醇后,在体内将挥发物转化成对昆虫有毒性的糖苷,从而提高自身的抗虫性[23]。植物在胁迫环境(如虫害)下产生的挥发物可通过两种主要的机制诱导提高邻近植株的抗性。第一种是直接启动防御,包括诱导防御害虫相关基因的表达[54],诱导合成防御性物质(如酚类、蛋白酶抑制剂)[55- 56]和防御酶(如苯丙氨酸解氨酶、多酚氧化酶和过氧化物酶等)[57],诱导分泌蜜露[58]或者释放HIPVs吸引昆虫的天敌[59]等。第二种机制是产生防御警备[60],接收到挥发物信号后,健康植株没有立即启动直接防御,而是进入防御警备状态,当受到类似胁迫(如虫害)时,受挥发物警备的植物会更快地产生更强烈的防御反应[12, 21, 55, 61](图1)。植物通过挥发物进行胁迫信号的传递现象也发生在不同种的植物之间[62-64],受害的山艾树Artemisia tridentata释放的挥发性物质能诱导附近烟草植株产生对蚱蜢和夜蛾的抗性[62-64]。即使在野外自然条件下,山艾树与烟草间的化学通信也能被检测到。
2.3 植物挥发物对植食性昆虫的影响
植物挥发物在植物与昆虫神奇的协同进化中扮演着重要角色,其介导的植物–昆虫互作是化学生态学与植物保护学研究的一个热点。植物在感受到植食性昆虫爬行、取食、产卵等多种信号时,都可被诱导合成并释放HIPVs,进而对昆虫的迁移、取食、交配和产卵等行为产生影响[7, 65-67]。
从植物防御角度来看,HIPVs可以直接使昆虫中毒从而抑制其生长,这可能是HIPVs在最初的进化中主要的功能[15];HIPVs也可以通过趋避昆虫从而保护植物[17, 68],趋避效应的产生可能是HIPVs本身对于昆虫就具有忌避效应[68],也可能是植食性昆虫为了避开潜在的竞争者或者为了躲避天敌产生的结果[69-70]。
从昆虫反防御角度来看,植食性昆虫可以巧妙地利用多营养级之间的化学通信与相互作用来提高自身对环境的适应。植食性昆虫可利用植物HIPVs寻找与定位寄主[71]。玉米蚜虫Rhopalosiphum maidis可通过感知植物HIPVs来寻找合适的食物资源[29];美洲烟草天蛾等可借助烟草植株的HIPVs选择宿主产卵[30-31];在侵害宿主植物时,豌豆蚜Adalia bipunctata体内的共生菌可以协助抑制植物HIPVs的释放,降低豌豆蚜被天敌寄生的危险,从而增强植食性昆虫的适应性[32]。近期研究发现灰翅夜蛾Spodoptera mauritia幼虫在接触寄主植物的HIPVs吲哚后,可以通过改变自身体味,降低寄生蜂对幼虫的定位与寄生能力[72]。
2.4 植物挥发物对植食性昆虫天敌的影响
植物、植食性昆虫及其天敌相互之间的营养作用是所有陆地生态系统的组成部分,HIPVs在三者相互作用中起关键作用,因为它们可以吸引捕食者和寄生性天敌到植食性昆虫入侵的植株上。植食性昆虫的天敌可以利用寄主植物和植食性昆虫释放的化学信息物质对寄主进行定位[73]。大量的研究表明,许多植食性昆虫的天敌能够被HIPVs吸引并能有效利用植物HIPVs对为害昆虫进行更迅速和准确的捕食或寄生[7]。目前的研究表明,HIPVs中发挥引诱天敌作用的组分主要包括萜类化合物、绿叶性挥发物、酚类化合物(如水杨酸甲酯)和吲哚等[7, 74]。通过遗传改良技术在拟南芥Arabidopsis thaliana中引入的倍半萜合酶,可以产生2种新的萜烯挥发物,使植物吸引捕食性天敌智利小植绥螨Phytoseiulus persimilis来控制害虫为害[75]。利用气相色谱–触角电位技术可以对HIPVs混合物中引诱天敌的主要有效成分进行筛选鉴定。有意思的是,含量最多的挥发物组分不一定主要起到引诱天敌的功能[18]。很多含量很低的挥发物在植物–昆虫互作中却起关键作用[76]。
2.5 植物挥发物对微生物的影响
植物挥发物除了介导植物–害虫–天敌三营养级间的关系外,近年来发现植物挥发物也参与和微生物的互作,包括植物病原菌、昆虫病原真菌和菌根真菌等[10, 13-14, 77]。很多植物花朵释放的挥发物具有抗菌或抗真菌活性,从而保护植物生殖器官免受病原菌的侵害[78-80](图1)。在拟南芥中沉默绿叶性挥发物合成途径中的脂氢过氧化物裂解酶基因(HPL),可导致拟南芥对灰霉病病原菌Botrytis Cinerea的敏感度提高,而过表达HPL可显著提高拟南芥对病原菌的抗性[13]。在对利马豆Phaseolus lunatus的研究中发现,经过抗性诱导挥发物处理过的利马豆健康植株,可提前进入防御警备状态,从而在不影响其正常生长发育的情况下增强对植物病原菌的抗性[81]。拟南芥释放的绿叶性挥发物中的(Z)−3−己烯醇、(E)−2−己烯醛和(Z)−3−己烯醛等能诱导植物中多个抗性基因的表达,从而提高拟南芥对灰霉病菌的抗性[82]。植物在遭受虫害后,还能通过释放挥发物促进昆虫病原真菌的菌丝蔓延、孢子萌发、致病、毒力作用等过程,帮助植物提高对昆虫的防御能力[83-84]。
3. 植物挥发物在生产实践中应用的进展与挑战
在农业生产中,农作物与害虫之间的相互关系研究是植物保护学家关注的焦点。在认识植物挥发物,尤其是HIPVs在植物与昆虫互作以及植物防御中重要的生态学功能的同时,植物挥发物在田间害虫控制中的应用也从以下几个方面展开:直接利用人工合成的挥发物作为天敌或害虫的引诱剂,或害虫趋避剂[9, 85]。中国农业科学院郭予元院士团队在棉田应用挥发物引诱天敌,发现(Z)−3−乙酸叶醇酯对七星瓢虫Coccinella septempunctata等天敌有显著引诱作用,水杨酸甲酯(Methyl salicylate,MeSA)能显著引诱草间小黑蛛Hylyphantes graminicola和食蚜蝇[86];诱导植物合成与释放更多挥发物控制害虫[87-88],经茉莉酸处理后的冬小麦,不但能显著排斥4 种蚜虫,还吸引到更多的七星瓢虫和蚜茧蜂[87];将植物挥发物应用在“推–拉”策略(Push-pull strategy)中[8, 10, 89],获得巨大成效的是在肯尼亚对玉米螟Ostrinia nubilalis和玉米茎蛀褐夜蛾Helotropha leucostigma的防治[90];应用挥发物突变体植物或基因改良植物[77, 91],例如,将草莓萜烯合成酶在拟南芥中过表达,使转基因植株释放大量的芳樟醇趋避蚜虫[92]。
尽管挥发物的田间应用在某些作物中已获得一定成效,但是,对于植物挥发物在田间释放后的生态学效应还缺乏深入、全面的了解[93]。比如,通过挥发物引诱天敌数量增加能否有效控制害虫的种群数量仍然存在疑问;对目标天敌有吸引作用的往往是几种挥发物在特定比例下的共同作用,当前应用主要是挥发物单组分,而对混合组分的研究明显不足;另外,更加重要的是,除天敌外,植食性昆虫也可以利用挥发物寻找合适的食物资源和产卵宿主,现有的研究主要关注天敌,而忽略了其对害虫的潜在影响[69]。以上问题使得将挥发物应用于调控昆虫种群依然存在无法预测和难以控制的结果。
4. 植物挥发物的研究前景
过去30年,对植物挥发物,尤其是HIPVs的研究不断深入,我们对于植物挥发物介导的生物种内和种间关系有了许多新的认识。农业工作者也积极尝试将植物挥发物应用到田间病虫害等有害生物的防治中。但植物释放挥发物是一个复杂的生理生化过程,在田间环境中同时受到多重因素的制约与影响。人们对植物挥发物的生态学功能了解仍然有限,利用植物挥发物进行农业害虫和病原菌的防治仍然存在很大争议。今后应该加强以下几个方面的研究:在野外自然条件下研究植物挥发物的生态学功能,目前关于挥发物介导种内与种间关系的分子机制研究大多是在实验室条件下进行的,其生态学意义有待进一步验证;植物挥发物受体蛋白的鉴定,植物挥发物介导的化学通信最直接的分子证据就是受体蛋白的存在,除了乙烯受体蛋白外,还没有鉴定到其他植物挥发物的受体蛋白[94],鉴定受体蛋白可为植物挥发物在植物体内或者在物种间信号转导的研究奠定基础[95];阐明植物挥发物的合成与释放机制;评估植物挥发物在田间环境中对整体生态系统的影响以及植食性昆虫演化的各种反防御机制。
-
表 1 遮光和施氮处理下小粒咖啡叶绿素含量1)
Table 1 Chlorophyll content of Coffea arabica under different shading and nitrogen levels
遮光水平(S)
Shading level施氮水平(N)
Nitrogen levelw/(mg·g−1) 叶绿素a
Chlorophyll a叶绿素b
Chlorophyll b总叶绿素
Total chlorophyll类胡萝卜素
CarotenoidS0 N0 7.09±0.66f 3.20±0.48e 10.29±1.14g 1.81±0.39cde N1 10.65±1.17e 5.06±0.97d 15.71±2.14f 2.08±0.22cd N2 15.55±0.70d 7.94±1.48bc 23.49±0.78de 3.27±0.53ab $\bar x $ 11.07 5.40 16.50 2.39 S1 N0 15.20±0.44d 6.31±0.54cd 21.51±0.98e 1.37±0.30de N1 17.84±0.95c 7.66±0.82bc 25.50±0.13cd 2.79±0.49abc N2 18.81±0.39bc 8.94±0.36b 27.75±0.75bc 3.73±0.21a $\bar x $ 17.28 7.64 24.92 2.63 S2 N0 18.36±0.70bc 7.80±0.38bc 26.16±1.08c 0.82±0.21e N1 19.91±1.22ab 9.05±0.72b 28.96±0.50b 2.38±0.42bcd N2 21.01±0.85a 11.36±0.81a 32.37±1.66a 3.53±0.91a $\bar x $ 19.76 9.40 29.16 2.24 P S <0.001 <0.001 <0.001 0.378 N <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 S×N 0.006 0.463 0.010 0.248 1) 同列数据后不同小写字母表示差异显著 (P<0.05, Duncan’s 法)
1) Different lowercase letters in the same column indicated significant difference (P<0.05, Duncan’s test)表 2 不同遮光和施氮处理下小粒咖啡生长1)
Table 2 Coffea arabica growth under different shading and nitrogen levels
遮光水平(S)
Shading level施氮水平(N)
Nitrogen level株高/cm
Plant height茎粗/mm
Stem diameter冠幅/cm
Crown width叶片数
Leaf number枝条数
Branch number新枝长度/cm
Shoot lengthS0 N0 55.95±1.91f 9.61±1.00de 60.50±3.54cde 301±15.56e 22±2.83a 14.48±0.74c N1 58.05±2.90e 9.29±0.11e 55.50±2.83e 324±5.66de 23±1.41a 17.05±1.34ab N2 62.95±1.48d 10.81±0.58de 62.75±1.06cd 345±16.97bcd 26±4.24a 15.54±0.65abc $\bar x $ 58.98 9.90 59.71 323 24 15.69 S1 N0 66.90±2.69c 12.59±0.71bc 57.00±1.41de 338±14.14cd 25±2.83a 15.85±0.73abc N1 69.65±1.20bc 13.11±0.35ab 64.00±0.71c 358±15.56abc 27±1.41a 18.08±1.17a N2 72.50±3.54b 14.59±0.26a 66.25±3.18bc 376±16.97ab 26±2.83a 17.66±1.83ab $\bar x $ 69.68 13.43 62.33 357 26 17.20 S2 N0 70.90±1.27b 10.97±0.74cde 71.25±6.01b 349±7.07bcd 23±1.41a 15.33±0.94bc N1 72.05±1.34b 11.26±1.28cd 71.50±0.71b 364±8.49abc 24±1.41a 16.48±0.73abc N2 75.35±1.63a 13.05±0.38ab 79.00±2.12a 386±9.90a 27±1.41a 17.10±0.19ab $\bar x $ 72.77 11.76 73.92 366.33 24.67 16.30 P S <0.001 <0.001 <0.001 0.001 0.290 0.086 N <0.001 0.003 <0.001 0.002 0.151 0.020 S×N 0.448 0.864 0.077 0.990 0.737 0.681 1) 同列数据后不同小写字母表示差异显著 (P<0.05, Duncan’s 法)
1) Different lowercase letters in the same column indicated significant difference (P<0.05, Duncan’s test)表 3 不同遮光和施氮水平下小粒咖啡单株生物量累积1)
Table 3 Biomass accumulation of Coffea arabica under different shading and nitrogen levels
遮光水平(S)
Shading level施氮水平(N)
Nitrogen level各器官生物量/g Biomass of organs 总生物量/g
Total biomass根冠比/%
Root/crown ratio根 Root 茎 Stem 叶 Leaf 杆 Rod S0 N0 29.05±1.30g 13.16±0.64cde 61.93±2.64de 28.75±1.73cd 132.89±3.70f 28.04±2.60cd N1 34.46±0.74d 14.09±1.19bcd 75.61±0.91c 33.76±0.96b 157.92±0.40c 27.92±0.85cd N2 39.24±0.64c 16.12±0.91b 87.84±1.85a 30.86±2.85bc 174.05±0.54b 29.10±0.50bcd $\bar x $ 34.25 14.46 75.13 31.12 154.59 28.35 S1 N0 31.95±0.79ef 11.82±2.32de 80.90±1.45b 31.16±1.16bc 155.83±1.82c 25.80±1.18d N1 42.74±0.14b 15.01±0.40bc 81.87±0.64b 42.20±3.87a 181.81±2.97a 30.74±0.52abc N2 45.87±0.11a 20.06±0.85a 84.56±2.64ab 34.44±0.85b 184.93±2.75a 32.99±0.54a $\bar x $ 40.19 15.63 82.44 35.93 174.19 29.84 S2 N0 29.89±1.02fg 10.88±0.89e 57.26±2.26e 25.23±1.24d 123.26±1.15g 32.01±1.04ab N1 31.37±1.72ef 14.19±1.34bcd 71.65±4.50c 31.14±1.68bc 148.34±2.45d 26.86±2.43d N2 32.84±0.27de 15.17±0.49bc 63.65±1.62d 27.94±1.05cd 139.59±2.45e 30.77±0.38abc $\bar x $ 31.37 13.41 64.19 28.1 137.06 29.88 P S <0.001 0.025 <0.001 <0.001 <0.001 0.143 N <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 S×N <0.001 0.054 <0.001 0.258 <0.001 0.004 1) 同列数据后不同小写字母表示差异显著 (P<0.05, Duncan’s 法)
1) Different lowercase letters in the same column indicated significant difference (P<0.05, Duncan’s test) -
[1] EHRENBERGEROVÁ L, CIENCIALA E, KUČERA A, et al. Carbon stock in agroforestry coffee plantations with different shade trees in Villa Rica, Peru[J]. Agroforest Syst, 2016, 90(3): 433-445. doi: 10.1007/s10457-015-9865-z
[2] 刘小刚, 万梦丹, 齐韵涛, 等. 不同遮阴下亏缺灌溉对小粒咖啡生长和水光利用的影响[J]. 农业机械学报, 2017, 48(1): 191-197. [3] FRANCK N, VAAST P. Limitation of coffee leaf photosynthesis by stomatal conductance and light availability under different shade levels[J]. Trees, 2009, 23(4): 761-769. doi: 10.1007/s00468-009-0318-z
[4] ARAUJO W L, DIAS P C, MORAES G A B K, et al. Limitations to photosynthesis in coffee leaves from different canopy positions[J]. Plant Physiol Biochem, 2008, 46(10): 884-890. doi: 10.1016/j.plaphy.2008.05.005
[5] BOSSELMANN A S, DONS K, OBERTHUR T, et al. The influence of shade trees on coffee quality in small holder coffee agroforestry systems in Southern Colombia[J]. Agric Ecosyst Environ, 2009, 129(1/2/3): 253-260.
[6] CHAVES A R M, TEN-CATEN A, PINHEIRO H A, et al. Seasonal changes in photoprotective mechanisms of leaves from shaded and unshaded field-grown coffee (Coffea arabica L.) trees[J]. Trees, 2008, 22(3): 351-361. doi: 10.1007/s00468-007-0190-7
[7] 张岩, 刘小刚, 万梦丹, 等. 小粒咖啡光合特性和抗氧化物酶对有限灌溉和氮素的响应[J]. 排灌机械工程学报, 2015, 33(11): 991-1000. doi: 10.3969/j.issn.1674-8530.15.0173 [8] 李建明, 潘铜华, 王玲慧, 等. 水肥耦合对番茄光合、产量及水分利用效率的影响[J]. 农业工程学报, 2014, 30(10): 82-90. doi: 10.3969/j.issn.1002-6819.2014.10.010 [9] 谭娟, 郭晋川, 吴建强, 等. 不同灌溉方式下甘蔗光合特性[J]. 农业工程学报, 2016, 32(11): 150-158. doi: 10.11975/j.issn.1002-6819.2016.11.022 [10] 刘小刚, 郝琨, 韩志慧, 等. 水氮耦合对干热区小粒咖啡产量和品质的影响[J]. 农业机械学报, 2016, 47(2): 143-150. [11] NAZARENO R B, OLIVEIRA C A D, SANZONOWICZ C, et al. Initial growth of Rubi coffee plant in response to nitrogen, phosphorus and potassium and water regimes[J]. Pesqui Agropecu Bras, 2003, 38(8): 903-910. doi: 10.1590/S0100-204X2003000800002
[12] FENILLI T A B, REICHARDT K, BACCHI O O S, et al. The N-15 isotope to evaluate fertilizer nitrogen absorption efficiency by the coffee plant[J]. An Acad Bras Cienc, 2007, 79(4): 767-776. doi: 10.1590/S0001-37652007000400015
[13] 蔡传涛, 蔡志全, 解继武, 等. 田间不同水肥管理下小粒咖啡的生长和光合特性[J]. 应用生态学报, 2004, 15(7): 1207-1212. doi: 10.3321/j.issn:1001-9332.2004.07.021 [14] 李合生. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京: 高等教育出版社, 2000. [15] 张亚琦, 李淑文, 付巍, 等. 施氮对杂交谷子产量与光合特性及水分利用效率的影响[J]. 植物营养与肥料学报, 2014, 20(5): 1119-1126. [16] 朱巧玲, 冷佳奕, 叶庆生. 黑毛石斛和长距石斛的光合特性[J]. 植物学报, 2013, 48(2): 151-159. [17] REN B, CUI H, CAMBERATO J J, et al. Effects of shading on the photosynthetic characteristics and mesophyll cell ultrastructure of summer maize[J]. Sci Nat, 2016, 103: 67. doi: 10.1007/s00114-016-1392-x.
[18] 张元帅, 冯伟, 张海艳, 等. 遮阴和施氮对冬小麦旗叶光合特性及产量的影响[J]. 中国生态农业学报, 2016, 24(9): 1177-1184. [19] 万梦丹, 刘小刚, 徐航, 等. 不同灌水和光强条件下小粒咖啡叶片光响应及光合生理特征[J]. 排灌机械工程学报, 2016, 34(9): 795-803. [20] LI H, JIANG D, WOLLENWEBER B, et al. Effects of shading on morphology, physiology and grain yield of winter wheat[J]. Eur J Agron, 2010, 33(4): 267-275. doi: 10.1016/j.eja.2010.07.002
[21] 郭翠花, 高志强, 苗果园. 花后遮阴对小麦旗叶光合特性及籽粒产量和品质的影响[J]. 作物学报, 2010, 36(4): 673-679. [22] 郝琨, 刘小刚, 张岩, 等. 干旱胁迫–复水与氮肥耦合对小粒咖啡生长和水氮生产力的影响[J]. 应用生态学报, 2017, 28(12): 4034-4042. [23] 彭晓邦, 蔡靖, 姜在民, 等. 光能竞争对农林复合生态系统生产力的影响[J]. 生态学报, 2009, 29(1): 545-552. doi: 10.3321/j.issn:1000-0933.2009.01.065 [24] 赵育民, 牛树奎, 王军邦, 等. 植被光能利用率研究进展[J]. 生态学杂志, 2007, 26(9): 1471-1477. [25] 张岁岐, 山仑. 植物水分利用效率及其研究进展[J]. 干旱地区农业研究, 2002, 20(4): 1-5. doi: 10.3321/j.issn:1000-7601.2002.04.001 [26] 肖生春, 肖洪浪, 段争虎. 干旱沙漠地区春小麦的水分与氮肥利用效率研究[J]. 中国沙漠, 2004, 24(3): 360-364. doi: 10.3321/j.issn:1000-694X.2004.03.018 [27] 王林, 王琦, 张恩和, 等. 间作与施氮对秸秆覆盖作物生产力和水分利用效率的影响[J]. 中国生态农业学报, 2014, 22(8): 955-964. [28] HAO K, LIU X, HAN Z, et al. Effects of drip irrigation modes on growth and physiological characteristics of Arabica coffee under different N levels[J]. J Drain Irrig Machine Engineer, 2017, 35(10): 912-920.
-
期刊类型引用(5)
1. 李扬,谷战英,冯楠可,熊荟璇,邓黎明,卢雨析,罗彪. 不同混作模式下施氮对花椒光合特性及养分吸收的影响. 经济林研究. 2024(01): 159-167 . 百度学术
2. 金梦然,刘雅兰,赵丹,袁航,刘煜光,史宝胜. 吲哚-3-乙酸对不同遮光条件下红丁香幼苗生长及光合的影响. 东北林业大学学报. 2023(05): 48-54 . 百度学术
3. 朱颖墨,窦小东,王瑞芳,解明恩,黄玮,李蒙. 气候变化对云南省小粒咖啡适生区的影响. 气象学报. 2021(05): 878-887 . 百度学术
4. 章宇阳,刘小刚,余宁,赵志浩,杨启良,高燕俐,范诚,董建华. 不同遮荫条件下施肥量对西南干热区小粒咖啡产量和肥料利用的影响. 应用生态学报. 2020(02): 515-523 . 百度学术
5. 王佳佳,张明如,高磊,金迪,何云核. 遮荫和氮素添加对芒萁光合特性与抗氧化酶活性的影响. 西南林业大学学报(自然科学). 2019(06): 24-32 . 百度学术
其他类型引用(7)