Over-expression of rabies virus G protein and its inhibitory effect on the virus in neuroblastoma cells
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摘要:目的
探究G蛋白在狂犬病病毒(Rabies virus,RABV)复制中的作用,以揭示携带双G基因的重组RABV的Hep-dG与亲代毒株rHep-Flury在神经母细胞瘤(NA)细胞中滴度差异的原因,为RABV致病机制的研究奠定基础。
方法通过病毒吸附、入侵、荧光定量PCR、Western-blot以及中和抗体阻断等试验,检测G蛋白过表达对IFN-β以及相关因子转录的影响。
结果Hep-dG感染能显著上调NA细胞中IFN-β mRNA的表达,激活了下游因子STAT1的表达与磷酸化,在较低的感染复数(MOI=0.01)下,Hep-dG感染后24 h即可显著促进IFN-β 基因的表达,36 h达到最高水平(P<0.001)。该病毒进入细胞后,产生了更多的病毒Leader RNA和RIG-I mRNA,且与IFN-β mRNA的表达高度一致。抗体阻断IFN-β后,Hep-dG在NA细胞中的病毒滴度显著上升(P<0.01),约为阻断前的7.9倍,且与亲代毒株rHep-Flury无显著差异。与阴性对照比较,5 μg的pH-G质粒转染能刺激IFN-β的转录(P<0.05),表明真核表达RABV G蛋白能在一定程度上刺激IFN-β的转录。
结论本研究初步揭示了G蛋白激活先天性免疫应答的原因和作用。RABV G蛋白的过表达,通过促进病毒Leader RNA的转录,激活了RIG-I介导的IFN-β通路,进而抑制了Hep-dG在NA细胞的繁殖。G蛋白的过表达也对干扰素通路起到一定的作用。
Abstract:ObjectiveTo explore the role of G protein in rabies virus (RABV) replication, reveal the reason for the difference of virus titer in neuroblastoma (NA) cells between the recombinant RABV Hep-dG with dual copy of G gene and the parental strain rHep-Flury, and lay a foundation for the study of RABV pathogenesis.
MethodThe effects of G protein over-expression on transcriptions ofIFN-β and related factors were examined by the virus binding assay, virus entry assay, fluorescence quantitative PCR, Western-blot and neutralizing antibody blocking assay.
ResultHep-dG infection significantly increased the expression of IFN-β mRNA and activated the expression of the downstream factor STAT1 in NA cells. Under the low multiplicity of infection (MOI=0.01), the expression of IFN-β gene significantly increased at 24 h after Hep-dG infection and reached the highest level at 36 h. After the virus entered the cells, there were more viral Leader RNA and RIG-I mRNA, which were highly consistent with the expression of IFN-β mRNA. The block of IFN-β expression by neutralizing antibody in NA cells significantly increased the virus titer of Hep-dG in cell culture supernatant(P<0.01), which was 7.9 times before blocking. Meanwhile the virus titer of Hep-dG had no significant difference with the parental strain rHep-Flury. Compared with the negative control, transfection of 5 μg pH-G plasmid could stimulate the transcription ofIFN-β(P<0.05), which showed that eukaryotic expression of RABV G protein could stimulateIFN-β transcription to a certain extent.
ConclusionThis study preliminarily reveals the cause and role of G protein in activating innate immune response. Over-expression of RABV G protein activates the RIG-I-mediated IFN-β pathway by promoting transcription of the viral Leader RNA, which in turn inhibits Hep-dG replication in NA cells and finally results in the lower virus titer in NA cells.
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Keywords:
- rabies virus /
- glycoprotein /
- IFN-β pathway /
- interferon-β /
- virus titer
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链式开沟机是一种连续开沟设备,具有结构简单、作业效率高以及开沟深度便于调节的优点,广泛应用于管道、线缆铺设以及农田水利建设和市政工程等开沟作业[1-2]。但链式开沟机作业时容易受地表不平影响,导致开沟深度波动大,严重地影响了作业质量[3]。因此,实现链式开沟机开沟深度的精确控制具有重要意义。赵金辉等[4]采用延迟时间补偿法构建了开沟深度数学模型,利用PLC控制系统实现了开沟深度的有效调节;蔡国华等[5]基于ATmega128单片机,设计了一种播种机开沟器深度自控系统试验台,实现了开沟深度的跟踪控制;Weatherly等[6]设计了一种主动式播种深度控制系统,利用DFS传感器检测土壤含水率,实现了开沟深度自动调节;黄东岩等[7]利用压电薄膜传感器获取播种单体与地面的压力,通过控制空气弹簧实现了播种深度的自适应调整。上述研究主要针对播种机的改良,对于链式开沟机开沟深度控制方面的研究鲜有报道。为此,本文设计了一种基于激光传感器的开沟深度控制系统,以期实现开沟深度的闭环控制,为链式开沟机开沟深度控制问题提供一种解决方法。
1. 系统结构与工作原理
1.1 系统结构
开沟深度控制系统结构框图如图1所示。系统主要由主控单元、液压系统和执行机构组成,其中主控单元由可编程控制器、激光传感器、交互设置界面和电源模块等组成,液压系统由电磁阀组、液压缸和拖拉机液压输出等组成,执行机构由开沟链组合和升降架等组成。链式开沟机结构图如图2所示。链式开沟机通过挂接机构与拖拉机3点悬挂,2个激光传感器对称安装在升降架两侧,电磁阀组安装在机架上,液压缸安装在机架两侧,升降架与机架两侧铰接,开沟链组合通过U型螺栓固定在升降架上。
1.2 系统设计
1.2.1 执行机构
沟深调节执行机构由机架、液压缸、升降架和开沟链组合等构成(图2)。其中,液压缸上端与机架铰接,下端与升降架铰接;升降架两侧与机架铰接;开沟链组合固定在升降架上。当液压缸上侧(下侧)进油时,活塞伸出(收缩),带动升降架及固定其上的开沟链组合绕升降架铰接点向下(向上)转动,实现开沟深度调节。研究选用耳环型液压缸,工作行程0~400 mm,开沟深度调节范围0~500 mm。
1.2.2 液压系统
如图3所示,为了实现开沟深度闭环控制,在拖拉机液压输出和液压缸之间加装电磁阀组。电磁阀组包括电液比例控制阀和两位三通电磁阀,电液比例控制阀起到控制液压油流量与流向的作用,两位三通电磁阀用于链式开沟机未切削土壤前的空程快进[8]。具体工作过程:链式开沟机未切削土壤前,电液比例控制阀处于中位,两位三通电磁阀失电右位接入系统,液压缸有杆腔与无杆腔相连形成差动连接,液压缸活塞快速伸出,推动开沟链组合快速到达工作位置。到达工作位置后,两位三通电磁阀得电一直处于左位接入系统的状态,当误差(e)≤最大允许误差(e′)时,电液比例控制阀处于中位,无液压油进入,液压缸无动作;当e>e′且传感器获取的开沟深度(h)<设定目标开沟深度(h′)时,电液比例控制阀处于右位,液压油进入无杆腔,液压缸活塞伸出;当e>e′且h>h′时,电液比例控制阀处于左位,液压油进入有杆腔,液压缸活塞收缩。
研究选用的拖拉机为东方红LX754,其液压泵型号为CBN-G316,液压泵额定压力为25 MPa,额定流量为50 L·min–1。据此电液比例控制阀选择VTOZ公司生产的MA-DHZO-A型,两位三通电磁阀选择Huade公司生产的4WRE10M16-10B/6AG24NETZ4/M型。
1.2.3 控制系统
系统采用的控制器为STC12C5A60S2系列单片机,完全兼容传统8051,内部集成MAX810专用复位电路,2路PWM,8路高速10位A/D转换(250 K/S),I/O端口丰富;采用LM2576HVT-5.0集成电路将拖拉机12 V直流转化成5 V直流[6],为单片机供电[9-10];驱动器选用东驰ET-HX型电子放大器。控制器连接示意图见图4。控制器在固定频率下输出PWM信号,根据开沟深度检测值与目标值的差值,调节PWM波的占空比,获得对应输出电流,经驱动器放大后加载到电液比例控制阀,控制电液比例控制阀阀芯的移动方向和阀口开度,实现对液压系统流方向和流量的比例控制。
根据臧盛超[11]的方法,使用Keil uvision 5编译器进行程序编写与编译。主流程图如图5所示。
1.3 测距原理
激光三角法测距技术是光电检测技术的一种,与其他非接触测量方法相比,具有结构简单,使用灵活,测量迅速,对待测表面要求较低等优点[12-13]。本研究采用激光三角反射式位移传感器,其测距原理如图6所示,半导体激光器 (Laser diode,LD)[1]发出的光束经会聚透镜垂直投射并聚焦到被测物体表面上形成光斑,由于物体表面具有一定粗糙度,引起光斑在物体表面发生漫反射,其中一部分散射光经过接收透镜成像于光电探测器件 (Charge coupled device,CCD)[2]上。当被测物体发生微小位移或表面高低发生变化,光点将沿激光束的方向产生微小移动,致使CCD上像点随之移动[14-15]。系统采集像点移动信号,经调理电路处理反馈给控制器计算求出物体产生的位移。若像点在CCD上移动的距离为N,被测物体表面移动的距离为M,由相似三角形得出:
$$ \frac{{L'}}{N} = \frac{{L + M\cos \alpha }}{{M\sin \alpha }} , $$ (1) 整理后有:
$$ M = \frac{{NL}}{{L'\sin \alpha - N\cos \alpha }} , $$ (2) 式中:L′为接收透镜后主面到成像面中心点的距离;L为激光束光轴的交点到接收透镜前主面的距离;α为激光束光轴与接收透镜光轴之间的夹角[4]。
本研究采用的激光传感器型号为德国MICRO-EPSILON公司的1700BL型,测距范围为2~1 000 mm,分辨率为0.03 μm,波长为405 nm (可视/红色),最大输出功率1 mW,能够满足开沟深度检测的要求。
1.4 工作原理
在升降架两侧相同位置安装2个激光传感器,形成双激光检测模块,安装位置与开沟链组合底部的垂直距离为h1。当链式开沟机工作时,双激光检测模块同步检测对地距离为h2和h3,为有效地减少因地表不平造成的检测误差,取h2和h3的平均值作为最终检测结果。根据以上参数计算开沟深度检测值(h):
$$ h = {h_1} - \left( {\frac{{{h_2} + {h_3}}}{2}} \right) , $$ (3) 设定e为链式开沟深度的检测值(h)与目标值(h′)之差的绝对值:
$$ e = \left| {h - h'} \right| , $$ (4) 系统工作前,首先在交互设置界面中设定开沟深度目标值(h′)和开沟深度最大允许误差(e′),当e≤e′,开沟深度符合设定要求,控制器无信号输出,液压缸不动作;当e>e′,开沟深度不符合设定要求,控制器输出响应信号驱动电磁阀组动作,通过液压缸推动执行机构,调节开沟深度直到符合设定的最大允许误差,控制器将停止信号输出,电磁阀组失电,停止深度调节。
2. 试验结果
2.1 静态响应试验
静态响应试验在南京农业大学工学院控制系统综合试验台上进行。分别在升降架两侧安装激光传感器,然后连接传感器、控制器和电磁阀组,完成控制系统的组装;根据蔡国华等[5]的方法,在传感器下方放置可上下移动的平板用于模拟地表;选用NI USB-6009数据采集卡采集激光传感器检测的开沟深度(h),采样频率设定为100 Hz。
在交互设置界面设置h1=700 mm、h′=300 mm、e′=5 mm,调整平板与传感器的距离分别为350和450 mm,即模拟开沟深度过深或过浅50 mm。启动系统,静态响应曲线如图7所示。由静态响应曲线可知,当开沟深度比目标开沟深度深50 mm时,响应时间0.19 s,控制误差2 mm;浅50 mm时,响应时间0.31 s,控制误差3 mm。表明开沟深度控制系统响应迅速,控制误差能够满足设置要求。
2.2 田间试验
田间试验于2017年8月在南京市高淳区桠溪镇禾田坊家庭农场进行,试验地块长74.3 m、宽52.6 m,土壤类型为水稻土[16-17],试验前测定0~400 mm土壤容重、含水量和坚实度,结果如表1所示。根据秸秆集中沟埋还田对开沟深度的要求[18-19],选定开沟深度分别为200、300和400 mm;根据链式开沟机常用作业速度范围[20-21]和当地实际作业情况,选择在机具前进速度为3 km·h–1的条件下进行试验。链式开沟机沿田块长边进行开沟作业,每个开沟深度重复作业10个行程,前5个行程不启用控制系统,后5个行程在机具启动后,行进前启用控制系统。根据《田间开沟机械作业质量》标准[22],每个行程的作业距离均大于50 m。同一开沟深度条件下,系统启用前后各随机选取2个作业行程,每个行程内等距(10 m)取5点,共10点,用卷尺测量实际开沟深度,每个点重复测量3次,取平均值进行数据分析,测量结果见表2。
表 1 田间试验的土壤参数Table 1. Parameters of soil in the field experiment深度/mm 容重/(g·cm–3) 含水量(w)/% 坚实度/MPa 0~100 1.31 21.63 0.91 100~200 1.48 18.45 1.89 200~300 1.55 16.83 2.34 300~400 1.58 15.97 2.87 表 2 不同的选定开沟深度下系统启用前后的实际测量结果Table 2. The measurement results of different selected trenching depths before and after enabling the system mm试验点 200 mm 300 mm 400 mm 关闭 启动 关闭 启动 关闭 启动 1 156 213 351 296 422 366 2 181 172 269 319 353 421 3 233 166 344 271 371 396 4 165 187 278 288 353 373 5 178 191 353 323 465 425 6 189 209 286 262 356 376 7 233 196 336 271 449 428 8 239 179 245 322 386 386 9 196 189 329 289 331 389 10 206 216 347 311 418 438 平均值 184.6 191.8 313.8 295.2 390.4 399.8 根据实际开沟深度测量结果,计算开沟深度稳定性系数,结果如图8所示。
设定开沟深度为200、300和400 mm时,关闭开沟深度控制系统,实际测量的开沟深度平均值分别为184.6、313.8和390.4 mm,开沟深度稳定性系数为86.8%、87.2%和88.3%;启动系统后,平均值分别为191.8、295.2和399.8 mm,稳定性系数分别为91.1%、92.3%和93.5%。表明启动开沟深度控制系统后,链式开沟机开沟深度的控制精度和稳定性得到提高,控制精度提高2.3%,稳定性系数提高4.3%。
3. 结论
基于激光三角反射式测距原理,设计了针对链式开沟机的开沟深度控制系统,通过双激光检测模块实时采集开沟深度,实现开沟深度自适应实时调节。静态响应试验表明,当开沟深度与目标值相差±50 mm时,系统响应时间分别为0.19和0.31 s,最大控制误差3 mm,系统响应迅速,控制误差在设定范围内。田间试验表明,启动系统后,控制精度提高了2.3%,稳定性系数提高了4.3%。本研究结果为链式开沟机开沟深度控制问题提供了一种解决方法。
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图 6 阻断IFN-β通路对狂犬病病毒复制的影响
a.抗体阻断IFN-β的表达,CK:空白对照,1:rHep-Flury,2:Hep-dG,3:rHep-Flury+IgG,4:Hep-dG+IgG,5:rHep-Flury+Anti,6:Hep-dG+Anti,图中“*”和“**”分别表示直线两端所对应的样本达0.05和0.01的显著水平(t检验);b.病毒滴度的检测,1:rHep-Flury,2:Hep-dG,3:rHep-Flury+IgG,4:Hep-dG+IgG,5:rHep-Flury+Anti,6:Hep-dG+Anti
Figure 6. Effect of blocking IFN-β pathway on rabies virus replication
表 1 荧光定量PCR检测引物
Table 1 Primers used for fluorescence quantitative PCR detection
被检基因 引物序列 引物名称 产物长度/bp Leader RNA Leader-F 5'-CCAGATGCTTGGCGTCCT-3' 67 Leader-R 5'-ACGCTTAACAACAAAACC-3' vRNA vRNA-F 5'-GGAAAAGGGACATTTGAAAGAA-3' 130 vRNA-R 5'-AGTCCTCGTCATCGGAGTTGAC-3' RIG-I RIGI-F 5'-GCAAGTGCTTCCTCCTGACC-3' 142 RIGI-R 5'-ATGCGGTGAACCGTCTTTCC-3' GAPDH GAPDH-F 5'-AGAGTGTTTCCTCGTCCCGT-3' 199 GAPDH-R 5'-CTGTGCCGTTGAATTTGCCG-3' -
[1] 王朝, 周明, 傅振芳, 等. 狂犬病病毒逃逸宿主天然免疫反应的研究进展[J]. 生命科学, 2017(3): 237-244. [2] 张旭, 纪森林, 赵雯, 等. 狂犬病病毒致病机制的最新研究进展[J]. 中国兽医科学, 2018, 48(3): 295-304. [3] MEBATSION T, KONIG M, CONZELMANN K K. Budding of rabies virus particles in the absence of the spike glycoprotein[J]. Cell, 1996, 84(6): 941-951.
[4] MEBATSION T, WEILAND F, CONZELMANN K K. Matrix protein of rabies virus is responsible for the assembly and budding of bullet-shaped particles and interacts with the transmembrane spike glycoprotein G[J]. J Virol, 1999, 73(1): 242-250.
[5] MACFARLAN R I, DIETZSCHOLD B, WIKTOR T J, et al. T cell responses to cleaved rabies virus glycoprotein and to synthetic peptides[J]. J Immunol, 1984, 133(5): 2748-2752.
[6] 汪孟航, 朱洪伟, 何民辉, 等. 狂犬病病毒糖蛋白生物学功能研究进展[J]. 中国畜牧兽医, 2016(12): 3349-3355. [7] FISHER C R, STREICKER D G, SCHNELL M J. The spread and evolution of rabies virus: Conquering new frontiers[J]. Nat Rev Microbiol, 2018, 16(4): 241-255.
[8] LIU X, YANG Y, SUN Z, et al. A recombinant rabies virus encoding two copies of the glycoprotein gene confers protection in dogs against a virulent challenge[J]. PLoS One, 2014, 9(2): e87105.
[9] PREHAUD C, LAY S, DIETZSCHOLD B, et al. Glycoprotein of nonpathogenic rabies viruses is a key determinant of human cell apoptosis[J]. J Virol, 2003, 77(19): 10537-10547.
[10] FABER M, PULMANAUSAHAKUL R, HODAWADEKAR S S, et al. Overexpression of the rabies virus glycoprotein results in enhancement of apoptosis and antiviral immune response[J]. J Virol, 2002, 76(7): 3374-3381.
[11] YANG Y, LIU W, YAN G, et al. iTRAQ protein profile analysis of neuroblastoma (NA) cells infected with the rabies viruses rHep-Flury and Hep-dG[J/OL]. Front Microbiol, 2015, 6: 691. doi: 10.3389/fmicb.2015.00691.
[12] HABJAN M, PENSKI N, SPIEGEL M, et al. T7 RNA polymerase-dependent and -independent systems for cDNA-based rescue of Rift Valley fever virus[J]. J Gen Virol, 2008, 89(9): 2157-2166.
[13] YANG Y, HUANG Y, GNANADURAI C W, et al. The inability of wild-type rabies virus to activate dendritic cells is dependent on the glycoprotein and correlates with its low level of the de novo-synthesized leader RNA[J]. J Virol, 2015, 89(4): 2157-2169.
[14] WU J, MA C, WANG H, et al. A MyD88-JAK1-STAT1 complex directly induces SOCS-1 expression in macrophages infected with Group A Streptococcus[J]. Cell Mol Immunol, 2015, 12(3): 373-383.
[15] OGINO T, YADAV S P, BANERJEE A K. Histidine-mediated RNA transfer to GDP for unique mRNA capping by vesicular stomatitis virus RNA polymerase[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2010, 107(8): 3463-3468.
[16] GERLIER D, LYLES D S. Interplay between innate immunity and negative-strand RNA viruses: Towards a rational model[J]. Microbiol Mol Biol Rev, 2011, 75(3): 468-490.
[17] MOYER S A, ABRAHAM G, ADLER R, et al. Methylated and blocked 5' termini in vesicular stomatitis virus in vivo mRNAs[J]. Cell, 1975, 5(1): 59-67.
[18] BRZOZKA K, FINKE S, CONZELMANN K K. Identification of the rabies virus alpha/beta interferon antagonist: Phosphoprotein P interferes with phosphorylation of interferon regulatory factor 3[J]. J Virol, 2005, 79(12): 7673-7681.
[19] RIEDER M, CONZELMANN K K. Interferon in rabies virus infection[J]. Adv Virus Res, 2011, 79: 91-114.
[20] 王林栋, 张守峰, 刘晔, 等. 基于RIG-I的狂犬病病毒免疫逃逸机制[J]. 中国生物制品学杂志, 2013(10): 1517-1521. [21] VIDY A, CHELBI-ALIX M, BLONDEL D. Rabies virus P protein interacts with STAT1 and inhibits interferon signal transduction pathways[J]. J Virol, 2005, 79(22): 14411-14420.
[22] VIDY A, EL B J, CHELBI-ALIX M K, et al. The nucleocytoplasmic rabies virus P protein counteracts interferon signaling by inhibiting both nuclear accumulation and DNA binding of STAT1[J]. J Virol, 2007, 81(8): 4255-4263.
[23] PLUMET S, HERSCHKE F, BOURHIS J M, et al. Cytosolic 5'-triphosphate ended viral leader transcript of measles virus as activator of the RIG I-mediated interferon response[J]. PLoS One, 2007, 2(3): e279.
[24] FAUL E J, WANJALLA C N, SUTHAR M S, et al. Rabies virus infection induces type I interferon production in an IPS-1 dependent manner while dendritic cell activation relies on IFNAR signaling[J]. PLoS Pathog, 2010, 6(7): e1001016.
[25] KATZ I, GUEDES F, FERNANDES E R, et al. Immunological aspects of rabies: A literature review[J]. Arch Virol, 2017, 162(11): 3251-3268.