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猪BMSCs成脂分化中细胞膜钙离子通道、钙敏感受体及成脂定向相关基因表达研究

叶晶晶, 张枫琳, 艾玮, 朱晓彤, 束刚, 王丽娜, 高萍, 江青艳, 王松波

叶晶晶, 张枫琳, 艾玮, 朱晓彤, 束刚, 王丽娜, 高萍, 江青艳, 王松波. 猪BMSCs成脂分化中细胞膜钙离子通道、钙敏感受体及成脂定向相关基因表达研究[J]. 华南农业大学学报, 2016, 37(5): 7-12. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.05.002
引用本文: 叶晶晶, 张枫琳, 艾玮, 朱晓彤, 束刚, 王丽娜, 高萍, 江青艳, 王松波. 猪BMSCs成脂分化中细胞膜钙离子通道、钙敏感受体及成脂定向相关基因表达研究[J]. 华南农业大学学报, 2016, 37(5): 7-12. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.05.002
YE Jingjing, ZHANG Fenglin, AI Wei, ZHU Xiaotong, SHU Gang, WANG Lina, GAO Ping, JIANG Qingyan, WANG Songbo. Expression of plasma membrane calcium channel, calcium-sensing receptor and adipogenic determination genes during the adipogenesis of porcine bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Journal of South China Agricultural University, 2016, 37(5): 7-12. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.05.002
Citation: YE Jingjing, ZHANG Fenglin, AI Wei, ZHU Xiaotong, SHU Gang, WANG Lina, GAO Ping, JIANG Qingyan, WANG Songbo. Expression of plasma membrane calcium channel, calcium-sensing receptor and adipogenic determination genes during the adipogenesis of porcine bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Journal of South China Agricultural University, 2016, 37(5): 7-12. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.05.002

猪BMSCs成脂分化中细胞膜钙离子通道、钙敏感受体及成脂定向相关基因表达研究

基金项目: 

国家自然科学基金 31372397

广东省特支计划项目 2014TQ01N260

详细信息
    作者简介:

    叶晶晶(1988—),男,硕士研究生,E-mail:542006686@qq.com

    张枫琳(1993—),女,硕士研究生,E-mail:771896317@qq.com

    通讯作者:

    王松波(1980—),男,副教授,博士,E-mail:songbowang@scau.edu.cn

    †:对本文贡献相同

  • 中图分类号: S831

Expression of plasma membrane calcium channel, calcium-sensing receptor and adipogenic determination genes during the adipogenesis of porcine bone marrow mesenchymal stem cells

  • 摘要:
    目的 

    研究猪骨髓间充质干细胞(Bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)定向分化为脂肪细胞过程中细胞膜上钙离子通道、钙敏感受体(Calcium-sensing receptor, CaSR)基因及成脂定向相关基因的表达。

    方法 

    从5~7日龄仔猪骨髓中分离纯化出猪BMSCs,诱导猪BMSCs成脂分化。油红O法和三酰甘油法检测细胞分化聚酯状况。在成脂分化不同时间(0、1、2、5和10 d)收集细胞,利用荧光定量PCR检测锌指蛋白423(Zinc finger protein 423, Zfp423)、脂肪前体细胞因子(Preadipocyte factor 1, Pref-1)、骨形态发生蛋白2(Bone morphogenetic protein 2, BMP2)、骨形态发生蛋白4(Bone morphogenetic protein 4, BMP4)、细胞膜钙离子通道及CaSR基因的mRNA表达变化。

    结果 

    油红O染色和三酰甘油检测结果表明,成功诱导猪BMSCs成脂分化;定量PCR结果显示,在猪BMSCs成脂分化第5天,成脂定向标志基因Zfp423、脂肪前体细胞标志基因Pref-1及促进成脂分化基因BMP2BMP4的mRNA相对表达量显著提高(P < 0.05),说明第5天是猪BMSCs成脂定向形成脂肪前体细胞的关键时期;同时,细胞膜上的电压门控钙离子通道亚基电压依赖型α/δ亚型1(Voltage-dependentalpha-2/delta subunit 1, CACNA2D1)、钙释放激活钙通道调节分子1 (Calciumr elease-activated calcium channel modulator 1, Orai1)、瞬时受体电位通道传统型1(Transient receptor potential canonical type 1, TRPC1)、瞬时受体电位通道M型7(Transient receptor potential melastatin 7, TRPM7)、瞬时受体电位通道香草素受体亚型1(Transient receptor potential vanilloid receptor1, TRPV1)基因和CaSR基因在诱导成脂第5天mRNA相对表达量也显著提高(P < 0.05),提示细胞膜钙离子通道及CaSR基因可能参与了猪BMSCs成脂分化过程。

    结论 

    揭示了猪BMSCs成脂分化过程中细胞膜钙离子通道、钙敏感受体及成脂定向相关基因的表达模式。

    Abstract:
    Objective 

    To investigate the mRNA expression of plasma membrane calcium channel, calcium-sensing receptor (CaSR) and adipogenic determination genes during the adipogenesis of porcine bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs).

    Method 

    The porcine BMSCs, isolated and purified from 5-7 d piglet, were induced to adipogenic differentiation. Oil red O staining and triglyceride assay were used to detect the formation of adipocytes. The cells were collected at various time points (0, 1, 2, 5, and 10 d) during the adipogenic differentiation of porcine BMSCs. The mRNA expression patterns of zinc finger protein (Zfp423), preadipocyte factor 1 (Pref-1), bone morphogenetic protein 2 (BMP2), bone morphogenetic protein 4 (BMP4), plasma membrane calcium channel and CaSR genes were detected by real-time quantitative PCR.

    Result 

    The results of oil red O staining and triglyceride assay indicated that porcine BMSCs were successfully induced to adipogenic differentiation. The findings of real-time quantitative PCR demonstrated that the mRNA expression of Zfp423, Pref-1, BMP2 and BMP4 significantly increased at day 5(P < 0.05), suggesting that day 5 is the key time for the adipogenic determination of porcine BMSCs. Meanwhile, the mRNA expression of voltage-dependent alpha-2/delta subunit 1 (CACNA2D1), calcium release-activated calcium channel modulator 1 (Orai1), transient receptor potential canonical type 1 (TRPC1), transient receptor potential melastatin 7 (TRPM7), transient receptor potential vanilloid receptor 1 (TRPV1) and CaSR also significantly increased at day 5, implying that calcium channels and CaSR gene might be involved in the adipogenesis of porcine BMSCs.

    Conclusion 

    Our data reveal the expression patterns of plasma membrane calcium channel, CaSR and adipogenic determination genes.

  • 劳氏黏虫Leucania loreyi (Duponchel)属鳞翅目夜蛾科,在我国分布广泛,是黏虫Mythimna separata (Walker)的近缘种,常与其混杂发生,主要为害玉米Zea mays、水稻Oryza sativa等禾谷类作物[1]。劳氏黏虫幼虫取食禾本科作物叶片、玉米苞叶及籽实,劳氏黏虫发生严重地块的叶片被食成缺刻甚至仅留叶脉,严重影响作物的产量和品质[2]。由于劳氏黏虫与黏虫形态、为害状相似,在田间调查时易将两者混淆。现已有学者对黏虫和劳氏黏虫的形态特征进行了比较[3-5],对黏虫的生物学特性、发生规律、危害特点等进行了较为广泛、系统地研究[6-9],对劳氏黏虫在玉米和水稻上的生物学特性也进行了初步研究[10-11]

    植食性昆虫与寄主植物间存在相互作用的关系[12]。研究表明,植食性昆虫通过视觉、嗅觉、触觉一系列行为来确定寄主植物,寄主植物内存在不同的营养物质和次生代谢产物,这使得植食性昆虫对不同的寄主植物有不同的趋性反应,也影响着昆虫的生长发育和繁殖[13-15]。张勇等[16]研究发现棉铃虫Helicoverpa armigera (Hübner)在取食不同寄主植物后,幼虫发育历期、蛹质量、成虫繁殖力和寿命等都会发生改变。尹娇等[17]研究表明取食不同寄主植物不仅影响草地螟Loxostege sticticalis L.的生长发育,还影响其产卵量和交配率。相似的,斜纹夜蛾Prodenia litura (Fabricius)、小地老虎Agrotis ypsilon (Rottemberg)取食不同的寄主植物对幼虫或成虫的生物学特性都存在或多或少的影响[18-19]。然而,有关劳氏黏虫取食不同寄主植物的生物学特性在国内外鲜见有关报道。本研究以禾本科主要作物玉米、水稻和甘蔗Saccharum officinarum,禾本科杂草稗草Echinochloa crusgalli为食料,系统地研究不同寄主植物对劳氏黏虫生长发育及繁殖的影响,为劳氏黏虫的预测预报及防治提供理论依据。

    水稻采用感虫水稻品种‘TN1’,由广西农业科学院植物保护研究所提供;甘蔗采用杂交品种‘桂糖29号’,由广西农业科学院甘蔗研究所提供;玉米采用杂交玉米品种‘桂单0810’,由广西农业科学院玉米研究所提供。稗草采自广西农业科学院田间。

    劳氏黏虫幼虫采自广西农业科学院水稻田,室内饲养条件为温度(24±1)℃,湿度(75±5)%,光周期为12 h光∶12 h暗。劳氏黏虫幼虫用玉米叶饲养繁殖1代后,将初孵化的幼虫分别用供试寄主植物饲养,以建立各个寄主植物上的试验种群。各寄主植物上的劳氏黏虫试验种群在繁殖1代后,分别取出一定量的初孵幼虫作为供试虫源。

    取生长发育状况一致的劳氏黏虫初孵幼虫,分别用4种寄主植物新鲜叶片单头饲养于养虫杯中(直径4.5 cm、高4 cm),用纸巾和纱布封口,于人工气候箱内饲养,温度为(24±1)℃,湿度为(75±5)%,光照周期为12 h光∶12 h暗,每天更换足量新鲜叶片,每组(1种寄生植物即1组)接虫40头,重复3次。每天09:00和15:00观察记录各养虫杯内幼虫蜕皮情况和存活情况。幼虫化蛹后第2天辨别雌、雄并称取蛹质量。

    取不同寄主植物上初羽化的雌、雄虫各1头置于塑料杯中(直径7.5 cm、高9 cm),杯中放蘸有φ为10%蜂蜜水的棉花球供成虫取食,聚丙烯塑料绳供其产卵,用纱布及皮筋封口,每组重复10次,每天更换新鲜蜂蜜水及产卵绳,观察并记录其产卵前期、产卵量及成虫寿命,期间若雄虫死亡补充雄虫,直至雌虫死亡。同时,在产卵期间取出一定量的卵块,以观察卵的发育历期与孵化率。

    取“1.2.1”和“1.2.2”中寄主植物上雌成虫所产的卵,每株寄主植物取200粒左右,参照“1.2.1”记录卵历期及存活率,待卵孵化后每天记录各个虫期的发育历期和存活率,成虫期交配后参照“1.2.2”每天记录雌成虫产卵量和成虫寿命,通过以上资料参照张孝羲[20]的方法,组建劳氏黏虫在各个寄主植物上的试验种群生命表。

    数据处理和分析参照文献[21]的方法,用Microsoft Office Excel 2007和DPS 7.05软件处理数据,百分数数据先反正弦平方根后再进行比较,各处理平均数经过方差分析后采用Duncan’s法进行多重比较。

    生命表参数种群净增殖率(R0)、平均世代周期(T)、内禀增长率(rm)、周限增长率(λ)、种群加倍时间(td)的计算公式分别为:

    $${R_{_0}} = \sum {l_x}{m_x}\text{,}$$ (1)
    $$T = \sum {l_x}{m_x}x/{R_{_0}}\text{,}$$ (2)
    $${r_{\rm m}} = \ln {R_{_0}}/T\text{,}$$ (3)
    $$\lambda = {{\rm e}^{r_{\rm m}}}\text{,}$$ (4)
    $${t_{\rm d}} = \ln 2/{r_m} = 0.693\;1/{r_{\rm m}}\text{,}$$ (5)

    式中,lx是在x期开始时的存活概率,mx表示x期间平均每雌产雌数。

    采用Weibull方程[22]描述雌成虫特定年龄存活率,方程公式为:

    $${S_{\rm p}}\left(t \right) = {{\rm e}^{ - \left({t/b} \right)c}}\text{,}$$ (6)

    式中,Sp (t)为年龄t时的存活率,b为尺度参数,c为形状参数,bc均大于0。

    劳氏黏虫取食4种寄主植物均能完成整个生活史(表1)。不同寄主植物对劳氏黏虫的幼虫发育历期有明显影响(F=39.25,df=3、103,P=0.000),幼虫发育历期为取食玉米(20.18 d)<取食水稻(21.29 d)<取食稗草(24.84 d)<取食甘蔗(25.24 d),除取食稗草和甘蔗之间差异不显著外(P>0.05),其他两两之间均存在显著差异(P<0.05)。劳氏黏虫幼虫期取食不同寄主植物对其预蛹期、蛹期、雌成虫寿命和雄成虫寿命影响不显著(P>0.05),但取食不同寄主植物后劳氏黏虫育出的卵的发育历期存在差异(F=4.67,df=3、800,P=0.034),其中以取食玉米所育出的劳氏黏虫卵历期最短,为3.92 d,取食甘蔗的卵历期最长,为5.09 d。因劳氏黏虫在取食不同寄主植物后,卵历期和幼虫历期的差异,导致该虫在全世代周期存在差异(F=6.34,df=3、96,P=0.000 6),在玉米和水稻上的全世代周期无显著差异(P>0.05),但显著短于取食甘蔗和稗草(P<0.05),且在甘蔗组和稗草组之间差异不显著(P >0.05)。

    表  1  劳氏黏虫在4种寄主植物上的发育历期1)
    Table  1.  Development durations of Leucania loreyi on four host plants
    发育期 玉米 水稻 甘蔗 稗草
    卵期 3.92±0.19b 4.27±0.27ab 5.09±0.37a 4.40±0.27ab
    1龄幼虫 4.68±0.13b 4.89±0.14b 5.61±0.15a 5.41±0.15a
    2龄幼虫 2.37±0.08b 2.67±0.12b 3.26±0.12a 3.25±0.13a
    3龄幼虫 2.62±0.13b 2.72±0.13b 3.17±0.15a 3.26±0.17a
    4龄幼虫 2.47±0.09b 2.58±0.11b 3.34±0.17a 3.07±0.17a
    5龄幼虫 2.58±0.11c 3.00±0.17bc 3.50±0.15a 3.39±0.19ab
    6龄幼虫 5.33±0.19b 5.28±0.24b 6.15±0.28a 5.81±0.25ab
    全幼虫期 20.18±0.24c 21.29±0.45b 25.24±0.28a 24.84±0.32a
    预蛹期 2.07±0.05a 2.11±0.06a 2.20±0.08a 2.08±0.06a
    蛹期 11.59±0.22a 11.62±0.25a 12.08±0.35a 11.83±0.32a
    产卵前期 3.83±0.32b 4.18±0.35ab 5.00±0.30a 4.90±0.35a
    雌成虫寿命 11.42±0.78a 11.18±0.30a 10.55±0.39a 10.10±0.43a
    雄成虫寿命 12.27±0.36a 12.33±0.51a 11.46±0.57a 11.08±0.50a
    全世代 45.67±0.59b 46.85±0.70b 50.58±0.44a 51.35±2.13a
     1)同行数据后凡具有一个相同字母者,表示不同寄主植物间差异不显著(P>0.05,Duncan’s 法)
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    劳氏黏虫整个卵期、幼虫期和蛹期的存活率以在稗草和甘蔗上的较低(图1),但仍分别有58%和60%的卵能发育成成虫,在玉米和水稻上分别有68%和65%的卵能发育为成虫。并且从图1中还可看出,在各寄主植物上从卵到发育成成虫期间的死亡主要发生在卵期和低龄幼虫期。

    图  1  劳氏黏虫在寄主植物上的存活率
    Figure  1.  Survival rates of Leucania loreyi on four host plants

    对雌成虫的存活率采用Weibull模型进行拟合(图2),各寄主植物上雌成虫实际存活率均能与Weibull模型较好拟合,且其形状参数(c)均大于1,这表明雌成虫在4种寄主植物上大多能实现平均寿命。

    图  2  雌成虫特定年龄存活率和繁殖力
    图中bc分别为Weibull模型的尺度参数、形状参数
    Figure  2.  Survival rate and reproductive capacity of Leucania loreyi females at different age

    从雌成虫特定年龄产雌率曲线可以看出每日平均产雌数的动态变化(图2),以玉米为寄主的劳氏黏虫雌虫mx曲线高峰来的最早,在第5天达到高峰,而在其余3种寄主植物上的mx曲线都会出现1个以上的高峰,这表明雌虫在产卵时间分布上存在较大的个体差异。并且,以稗草和甘蔗为寄主时,雌成虫的产卵历期较以玉米和水稻为寄主的短。

    表2可知,幼虫期食物对雌成虫产卵量(F=5.53,df=3、40,P=0.003)和卵孵化率(F=12.46,df=3、962,P=0.000)有显著影响。幼虫期取食玉米的雌虫,其单雌产卵量最多(1019.42粒),卵孵化率最高(93.59%),均显著高于甘蔗组和稗草组(P<0.05),但与水稻组差异不显著(P>0.05)。取食不同寄主植物的幼虫化蛹后,其雌、雄虫蛹质量均表现为玉米>水稻>甘蔗>稗草,并且存在显著差异(P<0.05),其中在稗草上雌成虫蛹质量最低,为22.61 mg。

    表  2  劳氏黏虫取食4种寄主植物对产卵量、孵化率及蛹质量的影响
    Table  2.  Effects of four host plants on the fecundity, hatching rate and pupal weight of Leucania loreyi
    寄主植物 单雌产卵量/粒 孵化率/% m/mg
    雌虫 雄虫
    玉米 1 019.42±95.22a 93.59±0.93a 32.43±0.36a 35.49±0.39a
    水稻 999.73±52.01ab 92.54±0.85a 28.82±0.67b 31.84±0.82b
    甘蔗 665.27±60.71c 86.98±1.61b 25.40±0.84c 28.14±0.62c
    稗草 790.50±71.03bc 87.56±1.56b 22.61±0.69d 24.46±0.62d
     1)同列数据后凡具有一个相同字母者,表示差异不显著(P>0.05,Duncan’s 法)
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    在温度为(24±1)℃,湿度为75%±5%,光照周期为12 h光∶12 h暗的饲养条件下,劳氏黏虫分别取食玉米、水稻、甘蔗和稗草后,得到表3的生命表参数。从表3中可以看出,劳氏黏虫取食玉米叶时,净增殖率(R0)、内禀增长率(rm)和周限增长率(λ)最高,分别为226.54、0.13和1.13,世代平均周期和种群加倍时间最短(td),分别为43.14和5.51,取食水稻叶次之,接下来是稗草,最后是甘蔗。劳氏黏虫在4种寄主植物上的内禀增长率(rm)都大于0,表明种群均能够快速增长。在甘蔗上的净增殖率(R0)最低,但每经过1个世代种群仍能增殖153.71倍。

    表  3  不同寄主植物上劳氏黏虫的生命表参数
    Table  3.  The life table parameters of Leucania loreyi on different host plants
    寄主植物 净增殖率(R0) 世代平均周期(T) 内禀增长率(rm) 周限增长率(λ) 种群加倍时间(td)
    玉米 226.54 43.14 0.13 1.13 5.51
    水稻 211.48 46.30 0.12 1.12 5.99
    甘蔗 153.71 52.83 0.10 1.10 7.27
    稗草 171.83 49.20 0.10 1.11 6.63
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    田间调查发现劳氏黏虫在广西地区分布广泛。姜玉英等[23]研究认为黏虫的发生面积与黏虫优异寄主小麦、玉米、水稻3种作物的种植面积有直接关系。从广西作物的种植情况来看,2016年禾本科作物种植面积居前3位的分别是水稻(198.39×104 hm2)、甘蔗(97.37×104 hm2)和玉米(62.26×104 hm2)[24]。因此,本研究选取水稻、甘蔗和玉米以及田间常见的禾本科杂草稗草作为劳氏黏虫的食料,研究劳氏黏虫在这4种寄主植物上的生长发育及繁殖能力。

    食物营养对昆虫的生长发育及生殖能力产生很大影响[25-26]。本试验结果表明,劳氏黏虫取食不同寄主植物后其幼虫历期和成虫繁殖力均表现出一定的差异。在3种禾本科作物之间,劳氏黏虫取食玉米后,其幼虫发育历期最短,非成虫期存活率最高、雌成虫寿命最长、单雌产卵量最大,其次是取食水稻,最后是甘蔗,这一结果与吴荣宗[27]研究基本一致。田间调查时也发现,当有玉米和水稻种植的季节,劳氏黏虫常见于玉米和水稻上,偶尔危害甘蔗,与本试验结果相吻合。郭松景等[11]研究报道,劳氏黏虫取食玉米后雌成虫寿命为7 d,平均产卵量为266粒。而本试验中雌成虫平均寿命为11.42 d,单雌平均产卵量1 019.42粒,结果出现较大差异可能是由于采用的劳氏黏虫种群不同,郭松景等[11]试验中采用的劳氏黏虫为田间种群,而本试验中采用的是田间采集的幼虫经过室内繁殖饲养1代后的种群。以稗草为寄主植物时,劳氏黏虫除了雌、雄虫蛹质量低于甘蔗组外,其幼虫发育历期、雌成虫寿命、单雌产卵量等与甘蔗组差异均不显著,并且在稗草上的单雌平均产卵量为790.50粒,高于甘蔗组(665.27粒),可见劳氏黏虫取食稗草不仅能够正常的生长发育,还具有较强的繁殖能力,稗草是劳氏黏虫合适的中间寄主。吴荣宗[27]认为龄期数目与幼虫食料有关,当劳氏黏虫取食小麦时幼虫期均为6龄,而以高粱饲养时为7龄,本试验中取食4种寄主植物劳氏黏虫幼虫期均以6龄为主,但均有个别幼虫蜕皮至7龄却不能顺利化蛹的现象,具体原因还有待进一步分析。从研究结果可以看出,与取食稗草和甘蔗相比,取食玉米和水稻的劳氏黏虫不仅在幼虫期发育较快、存活率较高,在蛹质量及产卵量上也相对较重(高),可见,劳氏黏虫幼虫期的食物不仅对幼虫期生长发育有一定影响,对其种群的增殖也有重要影响。

    在昆虫生命表参数中,内禀增长率反映了种群在特定环境下的数量增长能力[28]。劳氏黏虫在玉米、水稻、甘蔗和稗草上的内禀增长率分别为0.13、0.12、0.10和0.10,净增殖率分别为226.54、211.48、153.71和171.83,因此在适宜的条件下劳氏黏虫种群均能够在4种寄主植物上增殖,其中在玉米上增长最快,其次是水稻。田间调查发现,在冬季,劳氏黏虫常发现于禾本科杂草、稻桩上,待早春宿根蔗发芽开始为害并繁殖,这势必给翌年的农业生产造成威胁。可见,虽然相比之下取食水稻、甘蔗和稗草的种群增长潜能不如玉米,但它们却为劳氏黏虫越冬提供了丰富的食料。因此,建议在收割农作物的同时应及时清理秸秆并清除田边杂草,冬季时深耕勤耙,在春耕时节再翻耕整畦可有效消除越冬的幼虫和蛹,并在宿根蔗萌芽发苗时注意防治劳氏黏虫。

  • 图  1   猪BMSCs成脂分化过程中油红O染色结果

    Figure  1.   The oil red O staining result of porcine BMSCs during the adipogenic differentiation

    图  2   猪BMSCs成脂分化过程中三酰甘油(TG)质量摩尔浓度的变化

    图中数据为平均值±标准误,***表示差异极显著(独立样本t检验分析,P < 0.001)。

    Figure  2.   Triacylglycerol(TG) assay of porcine BMSCs during the adipogenic differentiation

    图  3   猪BMSCs成脂分化过程中细胞膜钙离子通道(A-E)与CaSR(F)基因的mRNA表达模式

    图中数据为平均值±标准误,同一分图中不同诱导时间的柱上凡是有一个相同小写字母者,表示差异不显著(单因素方差分析,P > 0.05)。

    Figure  3.   The mRNA expression patterns of calcium channel and CaSR genes in plasma membrane during the adipogenic differentiation of porcine BMSCs

    图  4   猪BMSCs成脂分化中成脂定向相关基因的mRNA表达模式

    图中数据为平均值±标准误,同一分图中不同诱导时间柱上凡是有一个相同小写字母者,表示差异不显著(单因素方差分析,P > 0.05)。

    Figure  4.   The mRNA expression patterns of adipogenic determination genes during the adipogenic differentiation of porcine BMSCs

    表  1   荧光定量PCR所用引物序列

    Table  1   Primer sequences used for real-time quantitative PCR

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  • [1]

    DU M, HUANG Y, DAS A K, et al. Meat science and muscle biology symposium: Manipulating mesenchymal progenitor cell differentiation to optimize performance and carcass value of beef cattle[J]. J Anim Sci, 2013, 91(3): 1419-1427. doi: 10.2527/jas.2012-5670

    [2]

    TANG Q Q, LANE M D. Adipogenesis: From stem cell to adipocyte[J]. Annu Rev Biochem, 2012, 81: 715-736. doi: 10.1146/annurev-biochem-052110-115718

    [3]

    WEI S J, ZHANG L F, ZHOU X, et al. Emerging roles of zinc finger proteins in regulating adipogenesis[J]. Cell Mol Life Sci, 2013, 70(23): 4569-4584. doi: 10.1007/s00018-013-1395-0

    [4]

    GESTA S, TSENG Y H, KAHN C R. Developmental origin of fat: Tracking obesity to its source[J]. Cell, 2007, 131(2): 242-256. doi: 10.1016/j.cell.2007.10.004

    [5] 王松波, 束刚, 朱晓彤, 等.骨形态发生蛋白在脂肪生成中的作用[J].中国生物化学与分子生物学报, 2009, 25(11): 997-1002. http://www.cqvip.com/Main/Detail.aspx?id=32211300
    [6]

    WANG S, ZHOU G, SHU G, et al. Glucose utilization, lipid metabolism and BMP-Smad signaling pathway of porcine intramuscular preadipocytes compared with subcutaneous preadipocytes[J]. Cell Physiol Biochem, 2013, 31(6): 981-996. doi: 10.1159/000350116

    [7]

    BRINI M, CALI T, OTTOLINI D, et al. Intracellular calcium homeostasis and signaling[J]. Met Ions Life Sci, 2013, 12: 119-168. doi: 10.1007/978-94-007-5561-1

    [8]

    BISHNOI M, KONDEPUDI K K, BABOOTA R K, et al. Role of transient receptor potential channels in adipocyte biology[J]. Expert Rev Endocrinol Metabol, 2013, 8(2): 173-182. doi: 10.1586/eem.13.4

    [9]

    GRAHAM S J, BLACK M J, SOBOLOFF J, et al. Stim1, an endoplasmic reticulum Ca2+ sensor, negatively regulates 3T3-L1 preadipocyte differentiation[J]. Differentiation, 2009, 77(3): 239-247. doi: 10.1016/j.diff.2008.10.013

    [10]

    CHEN K H, XU X H, LIU Y, et al. TRPM7 channels regulate proliferation and adipogenesis in 3T3-L1 preadipocytes[J]. J Cell Physiol, 2014, 229(1): 60-67. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=JJ0232076228

    [11]

    VILLARROEL P, REYES M, FUENTES C, et al. Adipogenic effect of calcium sensing receptor activation[J]. Mol Cell Biochem, 2013, 384(1/2): 139-145. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=JJ0231449368

    [12]

    DU M Q, HUANG Y Q, LU N S, et al. Characterization and differentiation into adipocytes and myocytes of porcine bone marrow mesenchymal stem cells[J]. J Integr Agr, 2014, 13(4): 837-848. doi: 10.1016/S2095-3119(13)60497-9

    [13]

    CHEN M H, TONG Q. An update on the regulation of adipogenesis[J]. Drug Discov Today, 2013, 10(1/2): e15-e19. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=JJ0231019854

    [14]

    GUPTA R K, ARANY Z, SEALE P, et al. Transcriptional control of preadipocyte determination by Zfp423[J]. Nature, 2010, 464(7288):619-623. doi: 10.1038/nature08816

    [15] 谢在春, 陈琼玉, 杨松海, 等. BMP2具有诱导C3H10T1/2细胞成脂肪分化的能力[J].中国生物化学与分子生物学报, 2008, 24(2): 142-147. doi: 10.3969/j.issn.1007-7626.2008.02.010
    [16]

    HUANG H, SONG T J, LI X, et al.BMP signaling pathway is required for commitment of C3H10T12 pluripotent stem cells to the adipocyte lineage[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2009, 106(31):12670-12675. doi: 10.1073/pnas.0906266106

    [17]

    HAMMARSTEDT A, HEDJAZIFAR S, JENNDAHL L, et al. WISP2 regulates preadipocyte commitment and PPAR gamma activation by BMP4[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2013, 110(7): 2563-2568. doi: 10.1073/pnas.1211255110

    [18]

    SUN C, QI R, WANG L, et al. p38 MAPK regulates calcium signal-mediated lipid accumulation through changing VDR expression in primary preadipocytes of mice[J]. Mol Biol Rep, 2012, 39(3): 3179-3184. doi: 10.1007/s11033-011-1084-8

    [19]

    HU R, HE M L, HU H, et al. Characterization of calcium signaling pathways in human preadipocytes[J]. J Cell Physiol, 2009, 220(3): 765-770. doi: 10.1002/jcp.v220:3

    [20]

    JOO J I, KIM D H, CHOI J W, et al. Proteomic analysis for antiobesity potential of capsaicin on white adipose tissue in rats fed with a high fat diet[J]. J Proteome Res, 2010, 9(6): 2977-2987. doi: 10.1021/pr901175w

    [21]

    CHEN K H, XU X H, LIU Y, et al. TRPM7 channels regulate proliferation and adipogenesis in 3t3-l1 preadipocytes[J]. J Cell Physiol, 2014, 229(1): 60-67. http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=perio&id=JJ0232076228

    [22]

    HE Y H, HE Y, LIAO X L, et al. The calcium-sensing receptor promotes adipocyte differentiation and adipogenesis through PPAR gamma pathway[J]. Mol Cell Biochem, 2012, 361(1/2): 321-328.

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出版历程
  • 收稿日期:  2016-01-26
  • 网络出版日期:  2023-05-17
  • 刊出日期:  2016-09-09

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