• 《中国科学引文数据库(CSCD)》来源期刊
  • 中国科技期刊引证报告(核心版)期刊
  • 《中文核心期刊要目总览》核心期刊
  • RCCSE中国核心学术期刊

青枯菌侵染不同抗病烟草品种的防御性酶活性及代谢组分差异分析

周星洋, 张功营, 董丽红, 杨恩兰, 万树青

周星洋, 张功营, 董丽红, 杨恩兰, 万树青. 青枯菌侵染不同抗病烟草品种的防御性酶活性及代谢组分差异分析[J]. 华南农业大学学报, 2016, 37(3): 73-81. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.03.011
引用本文: 周星洋, 张功营, 董丽红, 杨恩兰, 万树青. 青枯菌侵染不同抗病烟草品种的防御性酶活性及代谢组分差异分析[J]. 华南农业大学学报, 2016, 37(3): 73-81. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.03.011
ZHOU Xingyang, ZHANG Gongying, DONG Lihong, YANG Enlan, WAN Shuqing. Differences of defensive enzyme activities and metabolites between resistant and susceptible tobacco cultivars infected by Ralstonia solanacearum[J]. Journal of South China Agricultural University, 2016, 37(3): 73-81. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.03.011
Citation: ZHOU Xingyang, ZHANG Gongying, DONG Lihong, YANG Enlan, WAN Shuqing. Differences of defensive enzyme activities and metabolites between resistant and susceptible tobacco cultivars infected by Ralstonia solanacearum[J]. Journal of South China Agricultural University, 2016, 37(3): 73-81. DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2016.03.011

青枯菌侵染不同抗病烟草品种的防御性酶活性及代谢组分差异分析

基金项目: 

广东省烟草专卖局(公司)科技项目 粤烟[2009]17号

详细信息
    作者简介:

    周星洋(1989—),男,硕士研究生,E-mail: 569056710@qq.com

    通讯作者:

    万树青(1953—),男,教授,博士,E-mail: wanshuqing@scau.edu.cn

  • 中图分类号: S432.42

Differences of defensive enzyme activities and metabolites between resistant and susceptible tobacco cultivars infected by Ralstonia solanacearum

  • 摘要:
    目的 

    为烟草抗病育种和抗性鉴定提供生化代谢指标。

    方法 

    采用茎部注射法对抗病品种粤烟97和感病品种长脖黄接种青枯雷尔菌Ralstonia solanacearum,并采用比色法和GC-MS法分别进行相关防御性酶活性及代谢物质的测定。

    结果 

    抗病品种粤烟97的PAL、SOD、POD、PPO活性,接菌组与对照组均分别高于感病品种长脖黄的接菌组与对照组;抗病品种粤烟97和感病品种长脖黄分别在接菌后第7天和第5天,PAL活性高于对照组,其余时间酶活性接菌组均低于对照组;抗病品种粤烟97和感病品种长脖黄在受青枯雷尔菌侵染前期,SOD、POD、PPO酶活性均提高,随着时间延长酶活性均低于对照组。POD和PPO同工酶凝胶电泳表明:抗病品种粤烟97同工酶类型多于感病品种长脖黄;接菌后第3天,粤烟97的同工酶谱带宽度与色度增强,而长脖黄无增强现象。说明抗病品种能快速应对外界刺激,加速相关抗病物质的形成。代谢物检测表明:抗病品种粤烟97接菌组中肌肉肌醇、烟碱、苹果酸、L-苏氨酸等物质的相对质量分数高于对照组,而感病品种长脖黄接菌组中这些物质均低于对照组,反映品种间抗青枯病能力的强弱可能与上述物质有关。

    结论 

    烟草不同抗病品种叶片中PAL、SOD、POD、PPO酶活性的高低,以及上述代谢物质含量的变化,可作为反映烟草抗青枯病的生化指标。

    Abstract:
    Objective 

    In order to provide the biochemical and metabolic basis of tobacco breeding for disease resistance and resistance identification.

    Method 

    Resistant (Yueyan 97) and susceptible (Changbohuang) tobacco cultivars were inoculated with Ralstonia solanacearum by trunk injection. Defensive enzyme activities and metabolites were measured by using colorimetric method and GC-MS.

    Result 

    The activities of phenylanine ammonia lyase (PAL), superoxide dismutase (SOD), peroxidase (POD) and polyphenol oxidase (PPO) in the resistant cultivar 'Yueyan 97' were higher than those in the susceptible cultivar 'Changbohuang' with the same inoculation treatment. The PAL activities of Yueyan 97 and Changbohuang were higher than that in control on the seventh and fifth days after inoculation, respectively. The PAL activities of both cultivars were lower compared to control at any other time. For both cultivars, SOD, POD and PPO activities increased compared to control in the earlier days, but were lower compared to control during the later time period. The types of POD and PPO isozymes in the resistant cultivar 'Yueyan 97' were higher than those in the susceptible cultivar 'Changbohuang'. The width and color of isozyme bands of Yueyan 97 were enhanced at 3 d after inoculation, while those of Changbohuang were not enhanced. It suggested that the resistant cultivar could quickly respond to external stimuli and accelerate the formation of defense-related substances. Detection of metabolites showed that the relative contents of some substances in Yueyan 97 such as myo-inositol, nicotine, malic acid, and L-threonine were higher compared to control, but in Changbohuang were lower compared to control, suggesting that cultivar differences in resistance against R. solanacearum might be related to these substances.

    Conclusion 

    These four defensive enzyme activities and the contents of the above metabolites could be used as biochemical indexes for evaluating tobacco resistance against R. solanacearum.

  • 普通野生稻Oryza rufipogon Griff.是亚洲栽培稻O. sativa L.的祖先种, 经过长期的自然选择,蕴藏着大量可供育种利用的基因资源[1]。因此,保护和利用普通野生稻是该领域科研工作者关注的重点。许多研究表明,我国普通野生稻遗传多样性丰富且地域特性明显[2]。王美兴等[3]利用36对SSR引物对889份中国普通野生稻进行遗传多样性分析,平均多态性指数为0.782 7,提出广东和广西的普通野生稻具有较高的遗传多样性。韩东飞[4]按照纬度高低对中国境内20个居群的628份野生稻材料进行遗传多样性研究, 发现我国普通野生稻具有较高的遗传多样性并提出两广南部北回归线以南的居群遗传多样性较高。对全国不同省份普通野生稻遗传多样性的估值也表明,广西普通野生稻具有丰富的遗传多样性[5-10]。近年来,一些学者对广西普通野生稻遗传多样性有不同程度的研究[11-17]。余萍等[11]利用34对SSR引物对中国普通野生稻初级核心种质中223份广西普通野生稻进行遗传多样性分析,平均等位变异数为24.91。黄娟等[12]利用36对SSR引物对广西27个居群690份普通野生稻材料进行遗传多样性分析,平均等位基因数为9.86,并把广西区域的普通野生稻划分为3个类群4个特征区域。但由于所研究群体的规模、分布及材料代表性等的不同, 导致不同学者对广西普通野生稻遗传多样性的评价各异。在遗传多样性评价的基础上建立普通野生稻核心种质的研究鲜见报道。2012年Huang等[18]比较了世界各国和我国各省区的普通野生稻资源,认为广西是我国普通野生稻遗传多样性中心和栽培稻的起源中心,但广西的普通野生稻多样性中心具体在哪里没有进行追踪。

    本研究对来自广西的郁江流域、红水河流域、南流江域以及桂北山区的9个居群进行遗传多样性分析,并在此基础上构建了广西普通野生稻的核心种质。以期对广西野生稻遗传多样性进行有效的保护和利用, 为普通野生稻遗传多样性形成机制的研究、以及优异基因资源的发掘和利用提供理论依据和核心材料。

    从郁江流域、红水河流域、南流江域和桂北山区的9个居群收集623份材料(表 1)。

    表  1  来自广西4个区域的普通野生稻材料
    Table  1.  Materials of common wild rice from four regions in Guangxi
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    从水稻基因组SSR图谱中,挑选出均匀分布在水稻12条染色体上的且能扩增出多态性的24对引物(表 2)进行PCR分析。SSR标记引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。

    表  2  广西普通野生稻遗传多样性参数1)
    Table  2.  Parameters of genetic diversity of common wild rice in Guangxi
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    PCR体系20 μL:10×PCR Buffer(含15 mmol·L-1 MgCl2) 2.0 μL,10 mmol·L-1dNTP 0.4 μL,15 μmol·L-1正反引物各1.0 μL,5 U·μL-1Taq酶0.2 μL, 25 ng ·μL-1 DNA 1.0 μL, ddH2O 14.4 μL。PCR反应程序:94 ℃预变性5 min, 94 ℃变性30 s,(50~57) ℃退火45 s, 72 ℃延伸30 s, 共40个循环, 72 ℃延伸5 min。扩增产物在60 g·L-1的非变性聚丙烯酰胺凝胶上恒压电泳, 用银染法染色后拍照。用图形处理软件Photoshop中的标尺工具和参考工具分析图片中的DNA片段,扩增谱带均以“0”或“1”建立数据库,扩增带存在时记为“1”,不存在时记为“0”,最后将条带数据转换为基因型数据。

    根据每个个体产生的条带位置确定基因型,采用Popgene统计各居群的平均等位基因数(A), 有效等位基因数(Ae),Shannon信息指数(I),平均期望杂合度(He),实际观察杂合度(Ho),平均多态信息含量(PIC)。运用Popgen软件进行了遗传距离和遗传一致度分析。采用Upgma方法运行Ntsys2.10软件的Shan程序进行聚类分析。

    核心种质构建参考Hu等[20]提出的逐步聚类法。在利用24对SSR标记对623份材料进行遗传多样性分析的基础上,进行第1次聚类分析,遗传距离相同或极相近的同类材料只选1个代表编号,得到初次聚类核心样本;利用96对SSR标记对初次核心样本进行第2次聚类分析,得到10%核心样本,构建出10%核心聚类图;对第2次的10%核心样本进行第3次聚类分析,得到5%核心样本,构建出5%核心聚类图。进一步分析核心样本的遗传多样性特征、地理分布、来源等。

    利用筛选出的24对SSR引物对623份材料进行遗传多样性分析,相关结果列于表 2。从表 2可以看出,24个SSR位点共检测到114个等位变异,每个位点的平均等位基因数(A)最高为7(RM586),最低为3(RM537),平均为4.75;有效等位基因数(Ae)最高为4.476 3(RM257),最低为1.161 7(RM330A),平均为3.000 1;Shannon信息指数(I)最高为1.544 3 (RM257),最低为0.313 0 (RM330A),平均为1.180 1;实际观察杂合度(Ho)最高为0.566 6(RM257),最低为0.041 7(RM528),平均为0.175 8;平均期望杂合度(He)最高为0.777 2(RM257),最低为0.139 3(RM330A),平均为0.638 8。

    9个居群的遗传多样性和地理分布见图 1表 3。从图 1可以看出:邕宁、扶绥、贵港和平南属于郁江流域,临桂属于桂北山区,古棚和五里塘属于红水河流域,博白和容县属于南流江域。从表 3可以看出,9个普通野生稻居群的遗传多样性指数大小顺序为:邕宁居群(YN) > 临桂居群(LG) > 扶绥居群(FS) > 容县居群(RX) > 贵港居群(GG) > 平南居群(PN) > 古棚居群(GP) > 五里塘居群(WLT) > 博白居群(BB)。不同流域居群A的变化范围为2.946 7(HSH)~4.010 8(YJ),Ae的变化范围为0.139 3(HSH)~9.512 1(YJ),He的变化范围0.001 3(HSH)~2.053 9(YJ)。A最大的为郁江流域(YJ),最小的为红水河流域(HSH),表明郁江流域(YJ)是广西普通野生稻的遗传多样性中心(表 2)。

    图  1  广西普通野生稻9个主要居群的地理分布
    Figure  1.  Geographic distributions of nine main regional populations of common wild rice in Guangxi
    表  3  广西普通野生稻9个居群的遗传多样性1)
    Table  3.  Genetic diversities of nine regional populations of common wild rice in Guangxi
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    采取逐步聚类的方法,构建了10%和5%的核心样本,其遗传多样结果见表 4、聚类分析结果见图 2图 3。从表 4图 2可以看出,10%的核心样本材料间遗传距离较近,为0.38,其A能保持原始样本的92%以上,AeIHe和平均多态信息含量(PIC)等4个参数比原始样本的分别高3.70%、2.86%、3.22%和2.46%。图 3表明,5%核心样本的材料间遗传距离较远,达到了0.54,其A保持原始样本的89%以上,AeI比10%的核心样本有较大的下降,但仍分别比原始样本高2.12%和1.79%, He比原始样本高3.40%,比10%的核心样本也有所提高(表 4)。说明5%的核心样本所取材料间的位点重复性小,但仍能保持原始样本极高的遗传多样性。

    表  4  不同核心样本的遗传多样性比较1)
    Table  4.  Comparisons of genetic diversities of different core samples
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    图  2  广西普通野生稻10%核心样本的UPGMA聚类图
    Figure  2.  UPGMA dendrograms of 10% core collections of common wild rice in Guangxi
    图  3  广西普通野生稻5%核心样本的UPGMA聚类图
    Figure  3.  UPGMA dendrograms of 5% core collections of common wild rice in Guangxi

    表 5可以得出:在10%的核心样本中,邕宁居群的核心样本比例是本居群分析样本的10.29%,与全体材料的总平均数一致,表明邕宁居群的核心样本数多的原因是该群供试样本数占总样本数的比例大;扶绥居群的核心样本比例是本居群分析样本的31.25%,远高于总平均数,表明扶绥居群的核心样本数多的原因是该群供试样本的遗传多样性特别丰富。5%的核心样本构成的变化趋势也一样。相比之下,博白居群、容县居群和五里塘居群占核心样本数均极低,表明其遗传多样性差。

    表  5  各居群占核心样本的比例1)
    Table  5.  Ratios of core samples from each original populations
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    本研究对郁江流域,红水河流域,南流江流域和桂北山区623份普通野生稻材料的遗传多样性分析结果(A=4.75、Ae=3.000 1、He=0.638 8)高于前人[5-9]对江西、湖南、福建、海南、云南等省区普通野生稻遗传多样性的估值,表明广西普通野生稻具有丰富的遗传多样性。本研究结果与任民等[14]对桂东南地区普通野生稻的研究和盖红梅等[13]对武宣濠江流域普通野生稻的遗传多样性研究的结果基本相符。但低于余萍等[11]和黄娟等[12]的研究结果,主要原因可以归纳为3点;一是由于所研究群体的规模、分布及材料代表性等的不同。余萍等[11]研究的材料是中国普通野生稻初级核心种质中的材料,因此遗传多样性相对较高。黄娟等[12]研究的材料主要来自玉林博白区和福棉区,北海银海区、合浦县和铁山港区,防城区,贺州钟山县,来宾上林、武宣及桂林雁山区等区域。均与本研究的取材地域不同。二是由于检测位点不同。不同检测位点对多样性的影响不同,在供试个体中分配的均匀性和多样性也不一样。余萍等[11]使用34对引物,黄娟等[12]使用36对引物但未平均分配在12条染色体上,因此遗传多样性相对较高。本研究使用平均分配于12条染色体的24对SSR引物,试验结果能更客观地反映广西普通野生稻的遗传多样性。三是取材时间不同。近年来,普通野生稻及其栖息地遭受严重破坏。据调查,广西野生稻分布点有31%已经完全毁灭,覆盖面积也急剧减少[21],这也可能造成遗传多样性的降低。

    广西是我国普通野生稻遗传多样性丰富的省区之一。2012年Huang等[18]比较了世界各国和我国各省的普通野生稻资源,认为广西是我国普通野生稻遗传多样性中心和栽培稻的起源中心。黄娟等[12]将广西普通野生稻分布分为桂北山区、百色区、红水河-浔江流域和南流江流域4大区域。但广西的普通野生稻多样性中心究竟在哪里没有跟踪报道。本研究对郁江流域、桂北山区、南流江流域和红水河流域的9个居群623份材料进行遗传多样性分析,9个居群遗传多样性指数大小为:邕宁居群(YN) > 临桂居群(LG) > 扶绥居群(FS) > 容县居群(RX) > 贵港居群(GG) > 平南居群(PN) > 古棚居群(GP) > 五里塘居群(WLT) > 博白居群(BB)。区域的多样性指数大小为:郁江流域(YJ) > 桂北山区(GB) > 南流江流域(NLJ) > 红水河流域(HSH)。表明普通野生稻遗传多样性异常丰富的郁江流域是广西普通野生稻的多样性中心。

    邓国富等[21]和徐志健等[22]年对广西野生稻自然资源开展第2次全面调查发现,由于原生地消失、原生地环境恶化和外来物种的入侵,广西野生稻自然资源濒危现状严重,31%的原生态分布点已经完全毁灭,覆盖面积也急剧减少。因此,核心种质构建的工作需要进一步加强。本研究使用逐步聚类法构建了10%和5%的核心样本。其平均等位基因数(A)能保持原始样本的92%和89%以上。邕宁居群和扶绥居群是核心样本的主要组成来源。邕宁居群的核心样本数多的原因主要是由于收集资源量多和遗传多样性较丰富,而扶绥居群的收集资源量相对较少但遗传多样性异常丰富,也表明扶绥居群是普通野生稻遗传多样性的特殊地区。郁江流域作为广西普通野生稻遗传多样的新中心,其分布分散、范围广,这使野生稻的保存及保护困难更大,且目前的野生稻保护区域都未涉及到这些地方,应当引起重视。

    本研究构建了较完整和较有代表性的普通野生稻遗传多样性核心种质,普通野生稻(AA基因组)是栽培稻的近缘祖先,在长期的逆境生长中具有优异的育种基因资源,对水稻基础研究和水稻育种有巨大的贡献。Zhang等[23]和章琦等[24]通过抗谱评价、抗性类型比较以及遣传分析,鉴定出一个来自普通野生稻的抗白叶枯病新基因 Xa-23 , 并将其进行了精细定位。Huang等[25]利用广西普通野生稻GX2183挖掘出抗褐飞虱基因 Bph27 。Wang等[26]利用广西普通野生稻转育后代RBPH54精细定位并克隆了抗褐飞虱基因Bph29 。广西的2个优质“三系”杂交水稻恢复系“桂99”和“测253”都是利用野生稻资源培育出来的[27-28]。利用广西普通野生稻培育基于优良栽培稻遗传背景的染色体片段代换系也获得丰富的特异类型[29-30]。由此可以肯定,广西普通野生稻核心种质的构建将进一步加速普通野生稻遗传多样性在水稻育种上的利用。

  • 图  1   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后叶片PAL活性(以鲜质量计)的变化

    相同时间同一烟草品种不同柱子上方凡是有一个相同小写字母者,表示该品种对照组和接菌组间差异不显著(P>0.05,Duncan's法)。

    Figure  1.   Changes of PAL activities (based on fresh mass) in leaves of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    图  2   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后SOD活性(以鲜质量计)的变化

    相同时间同一烟草品种不同柱子上方凡是有一个相同小写字母者,表示该品种对照组和接菌组间差异不显著(P>0.05,Duncan's法)。

    Figure  2.   Changes of SOD activities (based on fresh mass) in leaves of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    图  3   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后POD活性(以鲜质量计)的变化

    相同时间同一烟草品种不同柱子上方凡是有一个相同小写字母者,表示该品种对照组和接菌组间差异不显著(P>0.05,Duncan's法)。

    Figure  3.   Changes of POD activities (based on fresh mass) in leaves of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    图  4   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后PPO活性(以鲜质量计)的变化

    相同时间同一烟草品种不同柱子上方凡是有一个相同小写字母者,表示该品种对照组和接菌组间差异不显著(P>0.05,Duncan's法)。

    Figure  4.   Changes of PPO activities (based on fresh mass) in leaves of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    图  5   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后叶片POD同工酶谱带

    CK:对照组,TR:接菌组;A:抗病品种粤烟97,B:感病品种长脖黄。

    Figure  5.   Electrophoretic isoenzyme patterns of POD in leaves of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    图  6   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后叶片PPO同工酶谱带

    CK:对照组, TR:接菌组;A:抗病品种粤烟97, B:感病品种长脖黄。

    Figure  6.   Electrophoretic isoenzyme patterns of PPO in leaves of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    图  7   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后代谢组分的GS-MS总离子流图

    1:感病品种长脖黄对照组;2:感病品种长脖黄接菌组;3:抗病品种粤烟97对照组;4:抗病品种粤烟97接菌组。

    Figure  7.   Total ion chromatograms of metabolites of resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    表  1   不同抗病烟草品种接种青枯雷尔菌后品种间代谢物差异比较1)

    Table  1   Comparison of metabolites from resistant and susceptible tobacco cultivars after inoculation of Ralstonia solanacearum

    下载: 导出CSV
  • [1]

    HAYWARD A C. Biology and epidemiology of bacterial wilt caused by Pseudomonas solanacearum[J]. Annu Rev Phytopathol, 1991, 29: 65-87. doi: 10.1146/annurev.py.29.090191.000433

    [2] 刘雅婷, 张世光.烟草青枯病的研究进展[J].云南农业大学学报, 2001, 16(1): 72-76. doi: 10.3969/j.issn.1004-390X.2001.01.021
    [3] 宋瑞芳, 丁永乐, 宫长荣, 等.烟草抗病性与防御酶活性间的关系研究进展[J].中国农学通报, 2007, 23(5): 309-314. doi: 10.3969/j.issn.1000-6850.2007.05.072
    [4]

    WALTERS D, WALSH D, NEWTON A, et al. Induced resistance for plant disease control: Maximizing the efficacy of resistance elicitors[J]. Phytopathology, 2005, 95(12): 1368-1373. doi: 10.1094/PHYTO-95-1368

    [5]

    NANDAKUMAR R, BABU S, VISWANATHAN R, et al. Induction of systemic resistance in rice against sheath blight disease by Pseudomonas fluorescens[J]. Soil Biol Biochem, 2001, 33(4/5): 603-612. doi: 10.1016-S0038-0717(00)00202-9/

    [6]

    JUNG W J, JIN Y L, KIM Y C, et al. Inoculation of Paenibacillus illinoisensis alleviates root mortality, activates of lignification-related enzymes, and induction of the isozymes in pepper plants infected by Phytophthora capsici[J]. Biol Control, 2004, 30(3): 645-652. doi: 10.1016/j.biocontrol.2004.03.006

    [7]

    TORRES A M, SATOVIC Z, CANOVAS J, et al. Genetics and mapping of new isozyme loci in Vicia faba L. using trisomics[J]. Theor Appl Genet, 1995, 91(5): 783-789. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24169917

    [8]

    WARNKE S E, DOUCHES D S, BRANHAM B E. Isozyme analysis supports allotetrapoloid inheritance in tetraploid creeping bluegrass (Agrostis palustris Huds.)[J]. Crop Sci, 1998, 38(3): 801-805. doi: 10.2135/cropsci1998.0011183X003800030030x

    [9]

    HUANG H, LAYNE D R, PETERSON R N. Using isozyme polymorphisms for identifying and assessing genetic variation in cultivated pawpaw (Asimina triloba (L.) Dunal)[J]. J Am Soc Hortic Sci, 1997, 122(4): 504-511. http://journal.ashspublications.org/content/122/4/504.abstract

    [10] 匡传富, 罗宽.烟草品种对青枯病抗病性及抗性机制的研究[J].湖南农业大学学报(自然科学版), 2002, 28(5): 395-398. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/hunannydx200205010
    [11] 黎定军, 周清明.烟草品种(系)对青枯病菌的抗性鉴定与分析[J].湖南农业大学学报, 1996, 22(3): 275-277. http://kns.cnki.net/KCMS/detail/detail.aspx?filename=HNND603.012&dbname=CJFD&dbcode=CJFQ
    [12] 薛应龙, 欧阳光察, 澳绍根.植物苯丙氨酸解氨酶的研究:Ⅳ:水稻幼苗中PAL活性的动态变化[J].植物生理学报, 1983, 9(3): 301-306. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/gskx200305004
    [13] 邹琦.植物生理学实验指导[M].北京:中国农业出版社, 2003.
    [14] 张志良.植物生理学试验指导[M].北京:高等教育出版社, 2003: 268-271.
    [15] 李靖, 利容千, 袁文静.黄瓜感染霜霉病菌叶片中一些酶活性的变化[J].植物病理学报, 1991, 21(4): 39-45. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10193-2009162676.htm
    [16]

    TIKUNOV Y, LOMMEN A, DE VOS C R, et al. A novel approach for nontargeted data analysis for metabolomics. Large-scale profiling of tomato fruit volatiles[J]. Plant Physiol, 2005, 139(3): 1125-1137. doi: 10.1104/pp.105.068130

    [17]

    ROESSNER U, WAGNER C, KOPKA J, et al. Simultaneous analysis of metabolites in potato tuber by gas chromatography-mass spectrometry[J]. Plant J, 2000, 23(1): 131-142. doi: 10.1046/j.1365-313x.2000.00774.x

    [18]

    ADAMKOVA S, LUHOVA L, PETRIVALSKY M, et al. Characterization of enzyme phenylalanine ammonia-lyase and its role in activation of defensive mechanisms in plants[J]. Chem Listy, 2006, 100(7): 486-494.

    [19] 寿森炎, 冯壮志, 殷一平, 等.番茄抗感青枯病品种的生理生化差异[J].浙江大学学报(农业与生命科学版), 2005, 31(5): 550-554. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/zjdxxb-nyysm200505010
    [20] 刘家忠, 龚明.植物抗氧化系统研究进展[J].云南师范大学学报(自然科学版), 1999, 19(6): 1-11. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/ahnykx201736001
    [21] 胡青平, 徐建国, 薄芳芳, 等.烟草感染青枯菌前后POD及同工酶的变化[J].中国农学通报, 2007, 23(6): 497-500. doi: 10.3969/j.issn.1000-6850.2007.06.108
    [22] 宋凤鸣, 郑重, 葛秀春.活性氧及膜脂过氧化在植物-病原物互作中的作用[J].植物生理学通讯, 1996, 32(5): 377-385. http://kns.cnki.net/KCMS/detail/detail.aspx?filename=ZWSL199605023&dbname=CJFD&dbcode=CJFQ
    [23]

    JOSEPH L M, KOON T T, MAN W S. Antifungal effects of hydrogen peroxide and peroxidase on spore germination and mycelial growth of Pseudocercospora species[J]. Can J Bot, 1998, 76(12): 2119-2124. https://www.mendeley.com/research-papers/antifungal-effects-hydrogen-peroxide-peroxidase-spore-germination-mycelial-growth-pseudocercospora-s/

    [24]

    PATEL S J, SUBRAMANIAN R B, JHA Y S. Biochemical and molecular studies of early blight disease in tomato[J]. Phytoparasitica, 2011, 39(3): 269-283. doi: 10.1007/s12600-011-0156-6

    [25]

    YUBEDEE A G. Role of polyphenol oxidase, peroxidase and total phenol content in differential resistance of Dioscorea species to Fusarium moniliforme[J]. Indian J Agr Sci, 1998, 68(10): 644-646.

    [26]

    GULSEN O, EICKHOFF T, HENG-MOSS T, et al. Characterization of peroxidase changes in resistant and susceptible warm-season turfgrasses challenged by Blissus occiduus[J]. Arthropod-Plant Inte, 2010, 4(1): 45-55. doi: 10.1007/s11829-010-9086-3

    [27] 张树生, 胡蕾, 刘忠良, 等.植物体内抗病相关酶与植物抗病性的关系[J].安徽农学通报, 2006, 12(13): 48-49. doi: 10.3969/j.issn.1007-7731.2006.13.021
    [28] 崔彦玲, 张环.番茄叶霉病抗性与苯丙氨酸解氨酶的相关性[J].华北农学报, 2003, 18(1): 79-82. doi: 10.3321/j.issn:1000-7091.2003.01.022
    [29] 蒋选利, 李振岐, 康振生.过氧化物酶与植物抗病性研究进展[J].西北农林科技大学学报(自然科学版), 2001, 29(6): 124-129. doi: 10.3321/j.issn:1671-9387.2001.06.031
    [30] 张梦, 谢益民, 杨海涛, 等.肌醇在植物体内的代谢概述:肌醇作为细胞壁木聚糖和果胶前驱物的代谢途径[J].林产化学与工业, 2013, 33(5): 106-114. http://d.old.wanfangdata.com.cn/Periodical/lchxygy201305021
    [31] 沈嘉, 程新胜.植物抗虫性物质烟碱的研究进展[J].热带亚热带植物学报, 2007, 15(5): 459-464. doi: 10.3969/j.issn.1005-3395.2007.05.018
    [32] 宋超, 张立军, 贾永光, 等.植物的苹果酸代谢和转运[J].植物生理学通讯, 2009, 45(5): 419-428. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-ZWSL200905003.htm
    [33]

    DEBOLT S, MELINO V, FORD C M. Ascorbate as a biosynthetic precursor in plants[J]. Ann Bot-London, 2007, 99(1): 3-8. doi: 10.1093/aob/mcl236

图(7)  /  表(1)
计量
  • 文章访问数:  1373
  • HTML全文浏览量:  2
  • PDF下载量:  1961
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2015-09-23
  • 网络出版日期:  2023-05-17
  • 刊出日期:  2016-05-09

目录

/

返回文章
返回