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籼稻半矮秆新突变体的遗传分析及对外源赤霉素的反应

饶得花,郭涛,王慧,刘永柱,张建国,陈志强

饶得花,郭涛,王慧,刘永柱,张建国,陈志强. 籼稻半矮秆新突变体的遗传分析及对外源赤霉素的反应[J]. 华南农业大学学报, 2009, 30(1). DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2009.01.006
引用本文: 饶得花,郭涛,王慧,刘永柱,张建国,陈志强. 籼稻半矮秆新突变体的遗传分析及对外源赤霉素的反应[J]. 华南农业大学学报, 2009, 30(1). DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2009.01.006
RAO De-hua,GUO Tao,WANG Hui,LIU Yong-zhu,ZHANG Jian-guo,CHEN Zhi-qiang. Genetic Analysis of a Semidwarf Mutant in Indica Rice and the Response to Gibberellin[J]. Journal of South China Agricultural University, 2009, 30(1). DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2009.01.006
Citation: RAO De-hua,GUO Tao,WANG Hui,LIU Yong-zhu,ZHANG Jian-guo,CHEN Zhi-qiang. Genetic Analysis of a Semidwarf Mutant in Indica Rice and the Response to Gibberellin[J]. Journal of South China Agricultural University, 2009, 30(1). DOI: 10.7671/j.issn.1001-411X.2009.01.006

籼稻半矮秆新突变体的遗传分析及对外源赤霉素的反应

基金项目: 国家自然科学基金,国家高技术研究发展计划(863计划),国家科技支撑计划重点项目,广东省科技计划,广东省自然科学基金

Genetic Analysis of a Semidwarf Mutant in Indica Rice and the Response to Gibberellin

  • 摘要: 对空间诱变矮秆突变体CHA-2的遗传分析表明,其矮生性状是由2对隐性半矮秆基因控制的,分别为sd1和1个新的半矮秆基因,该基因初步定名为iga-1.从CHA-2与惠阳珍珠早杂交F2群体中选择半矮秆株与矮脚南特进行测交和自交,鉴定获得由半矮秆基因iga-1控制的新半矮秆株系H2.赤霉素敏感性试验表明,半矮秆株系H2对赤霉素敏感性下降,推测H2是属于赤霉素弱敏感矮化突变体.
    Abstract: Genetic analysis of the dwarf rice mutant CHA-2 by space mutation was studied.The results indicated that its dwarf trait was controlled by two recessive semi-dwarf genes without linkage,sd1 and a new nonallelic to sd1 gene named as iga-1.The new semidwarf plant H2 with the new iga-1 gene from a cross between Huiyangzhenzhuzao and CHA-2 was insensitive to exogenous gibberellin,so it was speculated that the H2 semi-dwarf mutant was the gibberellin insensitive dwarf mutant.
  • 马大杂种相思Acacia mangium×A. auriculiformis属含羞草科Mimosaceae金合欢属Acacia[1],主要分布在气温12~35 ℃, 年降水量1 200~1 850 mm和海拔50~350 m的地区[2].马大杂种相思具速生、固氮、涵养水源、极度抗瘠薄等优点,且树干通直、分枝细小,是城市绿化、营造高效生态混交林的优良种植材料,近年来在我国南方逐渐受到重视.

    目前,对马大杂种相思离体快繁技术研究已有报道,但这些研究对选择具有优良性状的母株作为外植体来源缺乏重视[3];且有效增殖倍数低、芽苗质量较差、增殖芽可用于生根诱导的数量极少[4];移栽存活率仅80.4%[5].本试验从马大杂种相思多年生试验林中进行单株选优,对其离体快繁技术进行了系统研究,成功建立了高效、高质的快繁体系,可应用于工厂化育苗,为马大杂种相思的良种选育及推广种植奠定基础.

    选取马大杂种相思16年生抗风直杆型优良单株(AMA12001),先通过扦插繁殖获得较多的无性系材料,然后以其当年新生枝条的带腋芽茎段为外植体进行研究.

    最佳消毒时间的确定:于质量分数为0.1%的升汞溶液中分别处理外植体9、12、15 min, 再分别用体积分数为75%的乙醇处理5、15、30 s,无菌水冲洗4~6次.

    最佳外植体部位的确定:分别将枝条的第1~2节嫩茎(上)、第3~5节嫩茎(中)、第7~8节嫩茎(下)剪成长1.0~2.0 cm带腋芽茎段.

    将消毒后的外植体接种在MS培养基上,每个处理接种60瓶,每瓶接种1株芽,重复3次,15 d后统计存活率和出芽率.

    6-BA、NAA单因子对增殖的影响:6-BA选择0.5、1.0、1.5、2.0 mg·L-1 4个质量浓度,探讨细胞分裂素对增殖的影响;NAA选择0.05、0.10、0.50 mg·L-1 3个质量浓度,附加6-BA 1.0 mg·L-1,探讨生长素对增殖的影响.

    6-BA、NAA不同质量浓度组合对增殖的影响:设置培养基中的6-BA与NAA质量比例为40:1、30:1、20:1、15:1、10:1、5:1、3:1、2:1,探讨细胞分裂素与生长素不同质量浓度比例组合对增殖的影响.

    基本培养基、活性炭质量浓度、糖浓度单因子对增殖的影响:基本培养基类型选择MS、1/2MS、改良MS; 糖质量浓度选择20、30和40 g·L-1;活性炭选择0.1、0.5和1.0 mg·L-1.以上培养基均附加上一步骤筛选出的最佳激素浓度配比.

    每处理均接种20瓶,每瓶接种3株芽,重复3次,35 d后调查增殖倍数.

    高质量浓度激素浸泡法:将长2~3 cm的增殖芽在添加IBA 200、400、600、800和1 000 mg·L-15个质量浓度的固体培养基上分别预培养4和8 h后,转接入1/2MS培养基中继续培养.

    低质量浓度激素诱导法:将长2~3 cm的增殖芽接入含不同类型基本培养基、不同质量浓度活性炭及蔗糖、不同低质量浓度激素的培养基中进行不定根的诱导.

    每个处理均接种20瓶,每瓶接种3株芽,重复3次,培养15 d后统计生根率、生根条数.

    生根培养10~15 d后,炼苗5~10 d,洗净根部的培养基后移栽到经消毒过的营养袋中,移栽基质选择黄心土.

    以上试验除特殊说明外,增殖培养以MS为基本培养基,生根培养以1/2MS为基本培养基,均添加琼脂7 g·L-1、蔗糖30 g·L-1,控制pH为5.5~6.5,培养基均在121 ℃高压灭菌15 min,培养温度为(25±2) ℃,每日光照12 h,光照度2 500 lx.

    使用Excel、SPSS18.0对数据进行处理和方差分析,以最小显著差数法(LSD)评价差异的显著性.

    带腋芽茎段是最理想的组培外植体材料,其诱导的芽遗传变异小,能保持亲本的优良性状[6].本试验以带腋芽茎段为外植体,消毒效果见表 1.处理1至处理3(升汞消毒9 min)的消毒时间偏短,导致污染率偏高,存活率偏低;随着升汞消毒时间的增加,污染率逐渐降低,存活率逐渐上升,当选用15 min升汞配合30 s乙醇(处理9)消毒时,其褐化率虽然较高,但污染率仅6.67%,存活率达78.33%,是最适宜的消毒方案.

    表  1  升汞及乙醇不同处理时间对初代培养的影响1)
    Table  1.  Effects of sterilization time on initial culture
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    外植体污染率、褐化率和芽诱导率受枝条的木质化程度影响较大.木质化程度越高,污染率越高,新生顶芽内生菌含量少,但材质娇嫩,容易被消毒剂杀死.枝条中上部半木质化的茎段出芽率高[7],且污染率低[8],本试验(表 2)也发现中段(第3~5个腋芽)半木质化茎段污染率和褐化率都较低,且出芽率较高,因而当年生新枝第3~5个腋芽茎段是理想的外植体材料.

    表  2  不同外植体来源及部位对初代培养的影响1)
    Table  2.  Effects of different sampling positions on initial culture
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    综上所述,剪取枝条的中部(第3~5个腋芽)作为外植体,用体积分数为75%的乙醇和质量分数为0.1%的升汞分别消毒30 s、15 min,是获得马大杂种相思无菌材料的最佳途径.将无菌茎段接入MS基本培养基初代培养10 d后,腋芽开始萌动,30 d调查时新芽长约为2~4 cm(图 1A),可用于增殖培养.

    图  1  马大杂种相思快繁体系
    A:初代培养;B:增殖培养;C:生根培养;D:移栽.
    Figure  1.  Processes of in vitro propagation of Acacia mangium×A. auriculiformis

    增殖培养10 d左右从基部腋芽处开始冒出新芽,且茎段基部逐渐变粗.第35天时调查可知(表 3),增殖倍数随6-BA浓度的增加而增加,当6-BA质量浓度为1.0~1.5 mg·L-1时,增值倍数均达到3以上,且6-BA质量浓度为1.5 mg·L-1时,增殖倍数较高,芽长势较好;但当质量浓度达到2.0 mg·L-1时,芽玻璃化现象严重,有效芽减少.而NAA对芽生长起主要作用,随着NAA质量浓度的升高,芽体长势变好,当NAA质量浓度为0.5 mg·L-1时,芽生长健壮,生长速度快,但增值倍数低;而NAA质量浓度为0.1 mg·L-1时的增殖倍数最高,芽的长势也较好.

    表  3  不同比例的6-BA、NAA对增殖的影响
    Table  3.  Effects of various concentrations of 6-BA and NAA on proliferation
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    腋芽的增殖不只受6-BA和NAA的绝对值影响,还受二者的比值影响[9],试验结果经方差分析表明,6-BA与NAA的质量比对马大杂种相思增殖倍数的影响达到极显著水平,增殖倍数随着二者比值的增加呈先上升后下降的趋势,m(6-BA):m(NAA)在2:1至10:1范围时,增殖倍数普遍较低,但芽的长势健壮,生长速度快.m(6-BA):m(NAA)为20:1至40:1时,腋芽处萌发出大量的丛生芽,但芽丛矮小,玻璃化现象严重,有效芽数目随比值的增加而减少,因此,在此质量比范围时,增殖倍数呈现下降趋势,且芽品质变差.而当m(6-BA):m(NAA)为15:1时(即6-BA为1.5 mg·L-1、NAA为0.10 mg·L-1),诱导的增殖芽一方面具有长势健壮的特点,又具有较高增殖倍数的优势,是试验筛选出较适宜的激素浓度比例.

    表  4  6-BA与NAA不同质量浓度组合对增殖的影响
    Table  4.  Effects of different combinations of 6-BA and NAA on proliferation
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    表 5可知,活性炭、蔗糖质量浓度对增殖的影响达极显著水平,而培养基类型对增殖的影响不显著.随着活性炭质量浓度的增加,增殖倍数明显下降,但芽生长情况越来越好,甚至有部分芽开始生根,因此,当发现增殖芽出现玻璃化现象时,可将芽转移至添加有较低质量浓度活性炭(0.04 g·L-1)的培养基中进行增殖培养,从而改善增殖芽质量;随着蔗糖质量浓度的增加,玻璃化现象也会得到缓解,有效芽数增多,芽的健壮程度也提升,当蔗糖质量浓度为30和40 g·L-1时显著优于蔗糖为20 g·L-1时的增殖效果,不仅增殖倍数较高,芽长势也较好;试验发现,虽然培养基类型对增殖倍数影响不大,但改良MS上的芽叶片更绿,生长也更健壮.

    表  5  不同添加剂对增殖的影响
    Table  5.  Effects of different additives on proliferation
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    综合以上试验结果,马大杂种相思比较适宜的增殖培养基为改良MS+6-BA 1.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1+蔗糖30~40 g·L-1,培养35 d可获得3.97的有效增殖倍数,且芽体较健壮(图 1B).在工厂化生产中,多次继代需要添加适量的Ac来改善芽苗生长情况,减小玻璃化现象发生.

    将在含有高质量浓度IBA的MS培养基预培养4、8 h的芽接入无激素的MS培养基后,第5天即可见白色圆点冒出,第10天时调查结果见表 6.两步生根法生根效果普遍较好,不仅生根率高,平均生根数也较多.虽然不同质量浓度的IBA对生根率的影响达显著、极显著水平,但IBA200~800 mg·L-14个组诱导的生根效果总体差异不显著,芽长势也无明显区别;随着IBA质量浓度的升高,生根率呈先上升后下降趋势,而生根数逐渐增多,当IBA为1 000 mg·L-1时,基部形成大量愈伤组织,根系过于发达,导致苗长势较差(表 6).比较发现,4和8 h的预培养时间对生根效果并无显著差别,但预培养8 h的芽生根数略多,总体的生根率也较高.当选择IBA 600 mg·L-1预培养4~8 h后再转接至MS中,生根率可达100%,且苗较健壮,是较好的处理方法.

    表  6  两步生根法结果1)
    Table  6.  Results of the two-step rooting method
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    将2~3 cm长的增殖芽接入Ⅰ型至Ⅵ型生根培养基中,4~5 d后基部出现白点,6~7 d开始生根,15 d根最长, 可达6.5 cm.由表 7可知,Ⅰ型、Ⅴ型和Ⅵ型这3种培养基的生根效果均极显著高于另3种培养基,而添加了0.1和0.5 mg·L-1活性炭的Ⅱ型和Ⅲ型培养基虽然平均根长要远高于其他组,但生根率却比不添加活性炭的低17.07%和40.50%;此外,蔗糖质量浓度为30 g·L-1的生根效果(Ⅰ)要优于10 g·L-1(Ⅳ);1/2 MS(Ⅴ)比MS(Ⅰ)更利于不定根的诱导;IBA 1.5 mg·L-1(Ⅵ)比IBA 1.0 mg·L-1(Ⅴ)诱导的根数要多,但根系太发达反而会抑制苗的生长;由此可见,不添加活性炭的Ⅴ型培养基诱导马大杂种相思不定根效果最好,不仅生根率达99.4%,且根系较长,有须根,苗健壮.

    表  7  不同培养基的生根效果1)
    Table  7.  Effects of different media on rooting
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    综上所述,马大杂种相思增殖苗生根可采用2种办法.方法1,用两步生根法,将增殖苗接入含IBA600 mg·L-1的固体培养基上预培养4-8 h后接种到1/2MS基本培养基上,15 d即可全部生根.方法2,直接将较健壮的增殖苗接入1/2 MS + IBA 1.0 mg·L-1 + NAA 0.5 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1培养基上,第15天时生根率可达99.43%(图 1C).从节约成本,缩减操作程序的角度出发,方法2更利于工厂化生产.

    生根培养10~15 d后,苗长至2~4 cm,根长达2~3 cm,在自然条件下炼苗5~10 d后,将苗根部的培养基洗净,移植于经高锰酸钾消毒过的5种基质的营养袋中,5种基质分别为:黄心土、黄心土:沙(体积比分别为3:1、2:1、1:1)、沙,盖膜保湿.1周后揭开薄膜,1个月后调查其存活率分别为94.67%、94.00%、96.00%、96.00%、93.33%,均在90%以上(图 1D),以黄心土:沙(体积比为2:1、1:1)生根率最高,在实际生产过程中,含沙量较多的营养杯在上山造林的运输过程中,容易松散,使得造林存活率低,因而,移栽基质应尽可能考虑黄心土.至此,马大杂种相思的组培快繁体系基本建立(图 1).

    外植体消毒成功与否,不仅与消毒剂的处理时间有关,也与外植体采集时间、外植体部位等因素有关,本试验发现半木质化枝条的中上部节段是最理想的外植体部位,春末夏初的晴朗天气采条可以降低污染.与赵建萍等[10]、张玮等[11]的研究结果一致.

    想要获得高增殖倍数和短增殖时间,必须选择合适的细胞分裂素和生长素质量浓度[12].本试验发现6-BA 1.5 mg·L-1、NAA 0.1 mg·L-1是最佳的适宜马大杂种相思增殖的激素质量浓度,不仅增殖倍数较高,芽体也较健壮.

    较高的激素质量浓度易使芽玻璃化,且外源调节剂对植物作用的时效较长[13],多次继代会使芽苗增殖缓慢、质量变差,可通过改变基本培养基类型、适当提高蔗糖质量浓度、适当降低激素质量浓度、添加低质量浓度的活性炭解决.

    IBA与NAA组合使用可明显提高生根率,改善根的质量和苗的生长情况[14],本研究也证明,用IBA 1.0 mg·L-1 + NAA 0.5 mg·L-1可获得较好的生根效果.

    Otroshy等[15]认为合适质量浓度的活性炭可提供暗环境、吸附激素和其他有害物质,利于植株生长.本试验发现,活性炭的存在确实能促进苗的生长,但一定程度上抑制了马大杂种相思不定根的形成,导致生根率下降,具体机理还有待相关研究证明.

    蔗糖是生根培养基的重要组成部分,对维持培养基的渗透压具有重要作用.本试验还发现降低蔗糖质量浓度对根的生长影响较大,10 g·L-1的蔗糖质量浓度对根的生长不利,且苗生长缓慢,在生根培养基中添加30 g·L-1的蔗糖生根效果更佳.

    从节约生产成本、简化操作程序的角度来说,即使两步生根法可使马大杂种相思组培苗的生根率达到100%,却不宜采用,但对其他生根较困难的相思树种来说,是值得尝试的生根方法.

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出版历程
  • 刊出日期:  2009-01-09

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